Методы моделирования in vitro чрескожного всасывания лекарственных средств из лекарственных форм местного действия

Обложка


Цитировать

Полный текст

Аннотация

Чрескожное всасывание лекарственных веществ (Л В) протекает как двухэтапный процесс, состоящий из пенетрации Л В из лекарственных форм (ЛФ) в кожу и собственно абсорбции [4]. В биофармацевтических исследованиях при выборе оптимального состава дермальных ЛФ и изучении роли фармацевтических факторов, влияющих на высвобождение Л В из ЛФ, широко используют методы диализа (равновесного и проточного), призванные имитировать оба этапа чрескожного всасывания. К модельным мембранам, являющимся диффузионным барьером, предъявляется ряд требований: они должны иметь незначительную толщину и небольшой внутренний объем, чтобы количество остающегося в нем Л В было минимальным; быть достаточно стойкими к механическим нагрузкам, чтобы во время эксперимента не нарушалась ее целостность; должны обеспечивать корреляцию результатов опытов in vivo и in vitro [5, 6, 10].

 

Полный текст

Чрескожное всасывание лекарственных веществ (Л В) протекает как двухэтапный процесс, состоящий из пенетрации Л В из лекарственных форм (ЛФ) в кожу и собственно абсорбции [4]. В биофармацевтических исследованиях при выборе оптимального состава дермальных ЛФ и изучении роли фармацевтических факторов, влияющих на высвобождение Л В из ЛФ, широко используют методы диализа (равновесного и проточного), призванные имитировать оба этапа чрескожного всасывания. К модельным мембранам, являющимся диффузионным барьером, предъявляется ряд требований: они должны иметь незначительную толщину и небольшой внутренний объем, чтобы количество остающегося в нем Л В было минимальным; быть достаточно стойкими к механическим нагрузкам, чтобы во время эксперимента не нарушалась ее целостность; должны обеспечивать корреляцию результатов опытов in vivo и in vitro [5, 6, 10].

При изучении фармацевтической доступности Л В методами диализа применяются как искусственные, так и биологические мембраны.

В качестве модели кожного барьера предложена мембрана из 2-гидроксиэтил-метакрил/полидиметилсилоксан-метакрилового сополимера [26]. Используются тефлоновые мембраны [12], мембраны из силиконов [11], полиуретана, 2-полигидроксиэтиленметакрилата [17], которые Realdon N. и соавт. рекомендуют пропитывать липофильной фазой (н-додеканолом или изопропилмиристатом) [20]. Наиболее распространено использование мембран из производных целлюлозы, в частности из ацетата целлюлозы [18] и целлофана.

Однако результаты, полученные с использованием всех искусственных мембран по ряду причин дают весьма относительное представление о проникновении ЛВ из ЛФ через кожу. Во-первых, кожа является активным метаболизирующим барьером, что не моделирует ни один синтетический материал [4]. Кроме того, высвобождение ЛВ из ЛФ местного действия традиционно описывают уравнениями пассивной диффузии. В работах R. Guy et al. и М. Ропес, J. Kempenaar, посвященных чрескожному всасыванию ЛВ у человека, процесс перкутанной абсорбции рассматривается как многостадийный, включающий проникновение ЛВ с кожной поверности в stratum corneum, распределение между эпидермисом и кровью и выведение с мочой, каждый этап которого описывается уравнением пассивной диффузии и характеризуется своим значением константы скорости. Фактически же Л В проникает через кожу посредством не только пассивной диффузии под действием градиента концентрации, но и активного переноса, катализированного транспорта и пиноцитоза, в частности интраклеточным (через роговые клетки) и интерклеточным (по интерклеточным канальцам рогового слоя) путями, через волосяные мешочки, сальные и потовые железы. На чрескожный транспорт Л В влияют факторы, связанные с состоянием кожи, — ее целостность, содержание кожного сала и веществ липоидной природы, значение pH кожного слоя (от 4 до 7), температура, возраст.

Методы in vitro с использованием искусственных мембран позволяют учесть преимущественно влияние факторов, связанных с природой и физическим состоянием ЛВ и свойствами основы (вязкость, pH, растворяющая способность в отношении Л В и др.). Так, Р. Mura et al. сопоставлена диффузия клоназепама из мазей через искусственные мембраны из нитрата целлюлозы, импрегнированные лауриловым спиртом, или изопропилмиристатом, или вазелиновым маслом, и всасывание через кожу уха кролика; установлено отсутствие корреляции данных опытов in vivo и in vitro [16].

В отечественных работах по токсикологической оценке всасывания химических веществ через кожу преобладают ссылки на расчетный метод [1]. Для предварительной оценки скорости всасывания (V, мг/см2/час), предложены следующие формулы:

  • = 3,8 0,072 (М-149),
  • = 4,6 9,9 (П 1,307),
  • = 16,034 (0,036 М + 4,95 П),

где М — молекулярная масса, а П — плотность вещества при 20°С [1].

Приведенные формулы были выведены на основании анализа экспериментальных данных по чрескожному всасыванию ряда органических растворителей, поэтому они могут быть использованы только в пределах изученных соединений и не могут быть аппроксимированы на вещества других классов.

С целью унификации методов биофармацевтического изучения мягких ЛФ in vitro предложено использовать модифицированный фармакопейный прибор “вращающаяся корзинка”, причем, в отличие от традиционных методов оценки высвобождения ЛВ из твердых пероральных ЛФ, для создания диффузионного барьера корзинку предложено обтягивать целлофаном МС АТ-100 [2]. Для количественной оценки высвобождения авторы рекомендуют использовать параметры, рассчитанные по уравнениям пассивной диффузии, общепринятые для пероральных форм — константу скорости высвобождения и период полувысвобождения Л В [2]. Предложенный метод целесообразен для сопоставления параметров высвобождения ЛВ из различных составов. В определенной степени он характеризует всасывание in vivo и может рассматриваться как вариант метода диализа, пограничный между равновесным и проточным. Нерешенным техническим вопросом в рассматриваемом методе является гарантия равномерности нанесения точной навески мази на внутреннюю поверхность натягиваемой целлофановой пленки.

J.L. Zatz et al. [27] при изучении высвобождения бетаметазона использовали стандартные для пероральных форм ячейки Franz-type и для оценки различий фармацевтической доступности составов экспериментально выбирали метод, позволяющий линеаризовать кривые высвобождения, однако остался открытым вопрос о том, с какими показателями фармакокинетики или фармакодинамики коррелируют параметры высвобождения Л В из ЛФ.

В биофармацсвтичсских исследованиях для приближения экспериментальных моделей к условиям in vivo широко используются в качестве диализных мембран биологические объекты. E.J. Lien, Н. Gao [14] изучали проникновение нестсроидных противовоспалительных Л В через обезволошенную кожу мыши и установили взаимосвязь пенетрирующей способности, которая описывается общим уравнением пассивной диффузии и коэффициента распределения октанол/ вода. Н.Н. Lin et al. [15] оценивали влияние вспомогательных веществ на биодоступность норфлоксацина по оценке его высвобождения из мази через кожу крысы. T.J. Franz et al. [8] для уменьшения риска возможного нейротоксического эффекта при применении лосьона линдана и крема перметрина исследовали процесс проникновения Л В через кожу морской свинки. С.М. Heard et al. [9]. определялии скорость проникновения in vitro рацематов и энантиомеров пропранолола в модельных опытах через тонкие лоскуты кожи человека, взятой в процессе хирургического вмешательства. Для изучения пенетрации флутримазола из крема J. Ramis et al. применяли кожу человека после пластических операций [18]. P.P. Sarpotdar et al. [22] в качестве диффузионной мембраны использовали кожу трупа человека, Sieh Hearan, H.W. Jun — сброшенную кожу змеи [23], N.M. Volpato et al. — кожу мыши [25]. Однако указанные модельные мембраны, изменяющие свойства в течение эксперимента вследствие нарушенного кровои лимфообращения и активно протекающих процессов биологического распада, также не могут выступать в качестве унифицированной модели. Наиболее стабильной из описанных биологических мембран является сброшенная кожа змеи, однако, кроме недоступности ее для серийных экспериментов, применение этой модели сдерживается отсутствием сведений о возможности аппроксимации полученных данных на человека. Отмечается возможность использования подскорлуповой оболочки куриного яйца, устойчивой к процессам гниения и другой деструкции, сохраняющей целостность и пропускающую способность в условиях биофармацевтическоо эксперимента [3].

Важным параметром при выборе метода оценки фармацевтической доступности ЛВ из дермальных ЛФ является температурный режим эксперимента [10]. Нередко в экспериментальных работах описываются биофармацевтические исследования дерматологических препаратов, проводимые при 37°С, как и пероральных ЛФ. Однако при этом следует иметь в виду, что температура поверхности кожи в норме составляет 32°С [9, 21], а в полости рта — 38°С, что было учтено при изучении транспорта ЛВ через слизистую ротовой полости свиньи [7]. Если для жидких ЛФ (растворов, суспензий) изменение температуры в пределах 5°C не влечет сущственных изменений вязкости, то температурное разжижение мягких ЛФ (мазей, гелей, кремов) может привести к получению неадекватного представления о фармацевтической доступности Л В.

При выборе условий изучения фармацевтической доступности имеет значение также обоснование диффузионной среды. С этими целями описано использование воды, изотонического фосфатного буфера с pH 6,0 [21], фосфатного буфера с pH 7,4 с добавлением целлюлозотрис (3,5-диметилфенилкарбамата) [9], 5%-го раствора гексана в ацетонитриле [27].

В зарубежных источниках представлены результаты биофармацсвтичсских исследований ЛФ местного действия, выполненных на здоровых добровольцах. A. Kecsker, Е. Blitstein-Willinger использовали фармакодинамической метод для сопоставления эффективности производного простациклина (илопроста) в водном растворе, мази и геле [13]. U. Tauber et al. изучили влияние кислой среды, создаваемой салициловой кислотой, на чрескожное всасывание дифлукортозолона-21 валерата из мазей по изменению концентрации Л В в плазме крови [24]. N. Realdon et al. оценивали чрескожное всасывание эфиров никотиновой кислоты из мази по возникновению эритемы [19].

Представленные материалы свидетельствуют об отсутствии стандартных моделей для оценки фармацевтической доступности ЛФ местного действия и об актуальности задачи унификации биофармацевтических методов.

×

Об авторах

С. Н. Егорова

Казанский государственный медицинский университет

Автор, ответственный за переписку.
Email: info@eco-vector.com
Россия

Список литературы

  1. Агаев Ф.Б., Абдулова Э.Б.//Азерб. мед. ж. — 1981. — №4,- С. 59-61.
  2. Борищук В. О., Головк'т В. О.//Фармац. ж. — 1990. — № 6. — С. 65—66 (укр.).
  3. Егорова С. II., Зигапщииа Л.Е., Кадырова /^.//Фармация. — 1998. — № 5. — С. 18—20.
  4. Aiache J.M.//Ann. Cardiol. Angeiol. Paris. — 1997. — Vol. 46.-P. 441-449.
  5. Bronaugh R.L., Stewart R.F.//1. Pharm. Sci. — 1985. — Vol.4.-P. 1062-1066.
  6. Bronaugh R.L., Stewart R.F., Congdon E.R.//ToZ\co\. and Appl. Pharmacol. — 1982. — Vol. 62. — P. 481.
  7. Ceschel G.C., Maffei P., Moretti M.D.L. et al.// Farm. Vesth. — Vol. 48. — Special issue. Proceed 2-nd Central European Symposium on Pharmaceutical Technology. — P. 240—241.
  8. Franz T.J., Lehman P.A., Franz S.F. et al.// Arch. Dermatol. — 1996. — Vol. 132. — P. 901—905.
  9. Heard C.M., Brain K, Nicholls P. J. etal.//l. Pharm. and Pharmacol. — 1997. — Vol. 49. — P. 27.
  10. Hippius M.,Uhlemann C, Smolensk! U. et al.// Int.J. Clin. Pharmacol. Ther. — 1998. — Vol. 36. — P. 107—111.
  11. Ito Y., Ogiso T, Iwaki M. et al.// Biol. Pharm. Bull. — 1993.-Vol. 16.-P. 583-588.
  12. Juhasz J., Mahashabde S., Sequeira /.//Drug Dev. and Ind. Pharm. - 1996. - Vol. 22. - P. 1139-1144.
  13. Kecsker A., Blitstein-Willinger E.// Arzneimittel- forschung. — 1993. — Vol. 43. — P. 450—454.
  14. Lien E.J., Gao //.//Pharm. Res. — 1995. — Vol. 12. — P. 583-587.
  15. Lin H.H., Hsu L.R., Wu P. C. etal.//Bio\. Pharm. Bull. - 1995.-Vol. 18.-P. 1560-1565.
  16. Mura P., Nassini C, Proietti D. et al.// Pharm. Acta Helv. — 1996. — Vol. 71. — P. 147—154.
  17. Pulat M., Abbasoglu U.//1. Biomater. Appl. — 1995. — Vol. 9.-P. 363-371.
  18. Ramis J., Conte L., Sedago X. et al.// Arzneimittel- forschung. — 1997. — Vol. 47. — P. 1139—1144.
  19. Realdon N., RagazziE., Dal-Zotto M. e/n/.//Phannazie. — 1995.-Vol. 50.-P. 603-606.
  20. Realdon N., Ragazz.! E., Dal-Zotto M. eM/.//Pharmazie. — 1996.-Vol. 51.-P. 113-116.
  21. Roy S.D., Roos E., Sharma K.//I. Pharm. Sci. — 1994. — Vol. 83.-P. 126-130.
  22. Sarpotdar P.P., Gaskill J. L., Giannini R.P.//F Pharm. Sci. - 1986. - Vol. 75. - P. 26-28.
  23. Sieh Hearan, Jun H. W.//1. Pharm. Sci. — 1996. — Vol. 48.-P. 812-816.
  24. Tauber U., Weiss C., Matthes //.//Skin Pharmacol. — 1993.-Vol. 6.-P. 276-281.
  25. Volpato N.M., Santi P., Colombo P.// Pharm. Res. — 1995. - Vol. 12. - P. 1623-1627.
  26. Yamaguchi Y., Usami T, Natsume H. et al.// Chern. Pharm. Bull. Tokyo. - 1997. - Vol. 45. - P. 537-541.
  27. ZatzJ.L., Varsano J., Shah FP.//Phaim. Dev. Technol. — 1996.-Vol. l.-P. 293-298.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML

© 2022 Эко-Вектор


СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: ЭЛ № ФС 77 - 75008 от 01.02.2019.


Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах