Идентичность патогенеза, генетических и эпигенетических механизмов развития остеоартрита и ревматоидного артрита

Обложка


Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Остеоартрит характеризуется гетерогенностью клинических проявлений и, в ряде случаев, тяжёлым прогрессирующим течением. В связи с этим актуально выявление новых молекулярных мишеней для лечения заболевания. Для определения роли аутоиммунных процессов, общих генетических и эпигенетических изменений при остеоартрите и ревматоидном артрите, а также для выявления специфических для остеоартрита рибонуклеиновых кислот (микроРНК), потенциальных мишеней для таргетной терапии, проведён поиск информации с использованием научных платформ PubMed, Scopus, ResearchGate, RSCI за последние 10 лет. Хотя патогенез ревматоидного артрита и остеоартрита различаются, получены данные о вовлечении в механизм остеоартрита идентичных патологических иммунных реакций и нарушении экспрессии 26 идентичных генов с идентичным изменением уровней 13 из них. Выявлены изменения экспрессии одних и тех же микроРНК (miR-140, miR-149, miR-25, miR-146a, miR-16, miR-23b) при остеоартрите и ревматоидном артрите. Молекулярно-генетические исследования позволяют находить новые маркёры патологических иммунных реакций при остеоартрите, которые можно использовать для лечения болезни и предотвращения её быстрого прогрессирования, а также для проектирования таргетной терапии с использованием в качестве мишеней продуктов экспрессии генов. Ассоциированные с остеоартритом и ревматоидным артритом микроРНК, вовлечённые в патогенез обоих заболеваний, могут стать перспективными мишенями для таргетной терапии остеоартрита и ревматоидного артрита.

Полный текст

ВВЕДЕНИЕ

Остеоартрит — наиболее распространённый тип артрита, характеризующийся необратимой потерей хряща с развитием синовита [1] и ремоделированием кости [2]. Частота остеоартрита у людей старше 20 лет составляет 10,7%, старше 50 лет — 29,3% [3], старше 70 лет — 40%, что свидетельствует об ассоциации болезни с возрастом [4]. Тяжёлые случаи остеоартрита составляют 2% в странах с высоким уровнем дохода и 17% — со средним и низким уровнем [5]. В глобальном масштабе остеоартрит коленных и тазобедренных суставов занимает 11-е место по величине фактора глобальной инвалидности [5].

Несмотря на медленное прогрессирование, терапия остеоартрита в настоящее время остаётся неразрешённой проблемой, поскольку стандартные методы лечения не позволяют остановить развитие болезни, что часто приводит к необходимости эндопротезирования суставов на поздней стадии [6]. Так, согласно проведённому эпидемиологическому анализу, в Российской Федерации только за 2019 г. была выполнена 147 061 операция первичного эндопротезирования коленного и тазобедренного суставов с осложнениями в виде имплантат-ассоциированной инфекции в 2,91% случаев [6]. Это свидетельствует о необходимости поиска новых подходов в диагностике и лечении остеоартрита, позволяющих избежать тяжёлых осложнений и необходимости артропластики.

Прежде всего необходимо акцентировать внимание на роли иммунных реакций в развитии и прогрессировании болезни, поскольку воспаление рассматривают как ключевой патофизиологический процесс при остеоартрите, поскольку необратимая потеря хряща обусловлена развивающимся воспалением [1].

При старении и остеоартрите снижается экспрессия членов семейства Круппель-подобных транскрипционных факторов KLF2 и KLF4, которые контролируют воспалительные реакции. KLF2 и KLF4 в норме обеспечивают защиту от неконтролируемой деградации и воспаления за счёт активации генов основных компонентов хряща и экстрацеллюлярного матрикса, таких как SOX9 и COL2A1, а также путём подавления катаболических и воспалительных генов MMP13, iNOS, IL6 [7].

Нарушения экспрессии транскрипционных факторов при старении [7], которые ведут к возраст-ассоциированному возрастанию риска остеоартрита [3, 4], обусловлены эпигенетическими изменениями в организме, к которым относятся модификация гистонов с изменением структуры хроматина, метилирование дезоксирибонуклеиновой кислоты (ДНК) и интерференция рибонуклеиновой кислоты (РНК) с помощью некодирующих РНК [8].

Драйверами эпигенетических факторов [9] и источниками некодирующих РНК [10] являются транспозоны. Это специфические локусы ДНК, характеризующиеся перемещением в новые локусы генома с помощью механизма вырезания и вставки (ДНК-транспозоны) или «копирования и вставки» (ретроэлементы) [10]. Гиперактивацию ретроэлементов считают одной из ключевых причин старения [11], поскольку с возрастом возникает дисбаланс в иммунной системе с развитием аутоиммунного асептического воспаления и гиперпродукцией интерферона в ответ на продукты экспрессии ретроэлементов [12].

При старении ослабляется ингибирующее воздействие на ретроэлементы деацетилазы гистонов Sirt6, что ведёт к их патологической активации [13]. Низкие уровни Sirt6 определены также при синовиальном воспалении на фоне остеоартрита, что сопровождается индукцией поляризации М1-макрофагов с высвобождением в них провоспалительных цитокинов. Повышенная экспрессия Sirt6 улучшает состояние хряща и останавливает прогрессирование остеоартрита [1].

Это свидетельствует о наличии общих механизмов развития старения и остеоартрита, когда закономерные эпигенетические изменения (ослабление действия Sirt6) с возрастом приводят к патологическим реакциям специфических клеток (макрофагов в суставах), неизбежно вызывая ассоциированную со старением патологию — остеоартрит.

Макрофаги, играющие роль в воспалительных реакциях, участвуют в патогенезе остеоартрита и ревматоидного артрита (РА). М1-макрофаги при воспалительных процессах активируются под влиянием интерферона γ и toll-подобных рецепторов. В результате активации они секретируют большое количество провоспалительных цитокинов: интерлейкины (IL — от англ. interleukin) IL-1β, IL-6, IL-12, фактор некроза опухоли α (TNFα — от англ. tumor necrosis factor), активные формы кислорода и индуцибельную синтетазу оксида азота [14].

Полученные данные свидетельствуют о взаимосвязи патологически активированных ретроэлементов при старении с иммунными реакциями, ведущими к развитию остеоартрита. Поскольку описана роль ретроэлементов в патогенезе аутоиммунных реакций [15], можно сделать предположение о значении этих реакций в развитии остеоартрита.

Исследование общих эпигенетических механизмов остеоартрита и РА может стать основой для нового понимания патогенеза остеоартрита с определением наиболее значимых путей профилактики и лечения заболевания. Поскольку ретроэлементы служат драйверами эпигенетической регуляции, полученные данные об их участии в механизмах развития остеоартрита перспективны для дальнейшей разработки таргетной терапии болезни.

ВОВЛЕЧЁННОСТЬ ИНТЕРФЕРОНА В РАЗВИТИЕ ОСТЕОАРТРИТА И РЕВМАТОИДНОГО АРТРИТА

Интерферон γ оказывает эффекты на механизмы остеоартрита различными путями, в том числе за счёт активации протеинкиназы R, вовлечённой в воспаление [2]. В экспериментах обработка суставного хряща интерфероном γ вызывала его деградационный фенотип, опосредованный протеинкиназой R, с усилением экспрессии ключевых медиаторов воспаления (TNFα, IL-6), разрушающих матрикс ферментов (ММР-13) и транскрипционных факторов протеинкиназы R и STAT1 [2]. В плазме крови и синовиальной жидкости больных остеоартритом определено достоверное изменение уровня белка IP-10 (interferon γ inducible protein) по сравнению со здоровым контролем [16].

Полиморфизмы гена TIM3 (T cell immunoglobulin and mucin domain-containing protein 3) ассоциированы с риском остеоартрита, что может быть связано с повышенной экспрессией интерферона γ CD4+-Т-лимфоцитами, поскольку вовлечённый в иммунный ответ белок TIM3 экспрессируется в ответ на интерферон γ [17]. Выявлена повышенная экспрессия гена STING в тканях при остеоартрите человека и мыши. Белковый продукт гена STING является стимулятором интерферона, а также способствует выработке MMP13, ADAMTS5, подавляет экспрессию аггрекана, коллагена II, усиливает апоптоз и старение хондроцитов (за счёт активации сигнального каскада NF-κB) [18].

Подобно остеоартриту, роль интерферона определена также в патогенезе РА, при котором интерферон участвует в сигнальных путях JAK/STAT [19]. Проведённый в 2014 г. метаанализ экспрессии генов показал дифференциальную экспрессию 371 гена при РА, системной красной волчанке и системной склеродермии по сравнению со здоровым контролем. Среди выявленных генов наиболее достоверное различие определено для генов интерферонового ответа [20]. В связи с этим эффективность некоторых JAK-ингибиторов (филготиниба, барицитиниба и упадацитиниба) для лечения РА обусловлена подавлением интерферона [21], индуцирующего провоспалительные HLA-DR+CD90+ синовиальные фибробласты [22]. В патогенезе РА определена также роль интерферона III (λ), который способствует экспрессии toll-подобных рецепторов и продукции провоспалительных цитокинов [23].

Проведённый в 2022 г. метаанализ показал ассоциацию полиморфизма IFN-γ +874 Т/А c РА и системной красной волчанкой в азиатских и арабских популяциях [24]. Поскольку CD4+-Т-лимфоциты имеют решающее значение в патогенезе РА, было доказано, что выработка интерферона γ в данных клетках значительно повышена на ранней стадии РА и ассоциирована с худшим прогнозом [25].

Вовлечение интерферона в патогенез РА стало основанием для разработки методов лечения болезни с воздействием на интерферон. Так, ментон, ингибирующий передачу сигналов интерферона I типа, способствует убиквитированию Tyk2 и подавляет местные воспалительные процессы при РА [26]. Выработку интерферона у больных РА снижает баминерцепт (слитый белок лимфотоксина-β с рецептором иммуноглобулина), который блокирует лимфотоксин-αβ/LIGHT [27].

Характер изменений концентрации интерферонов I и II может быть использован для определения чувствительности к анти-TNF терапии при РА, что перспективно для использования в клинике [28]. Поскольку в патогенезе остеоартрита активация интерферона также играет роль [2, 17, 18], можно предположить использование ментона, баминерцепта и анти-TNF терапии в лечении тяжёлых случаев остеоартрита с прогрессирующим разрушением суставного хряща с целью предотвращения необратимых изменений, требующих эндопротезирования сустава.

В связи с наличием общих патогенетических механизмов остеоартрита и РА необходимо рассмотреть влияние идентичных иммунных механизмов остеоартрита, что могло бы стать основой для новых методов терапии.

РОЛЬ АУТОИММУННЫХ ПРОЦЕССОВ В РАЗВИТИИ ОСТЕОАРТРИТА

Помимо того, что в патогенезе остеоартрита, так же как и РА, играет роль изменение активности интерферона, остеоартрит характеризуется идентичностью этиопатогенеза с аутоиммунными заболеваниями в отношении поражения структур сустава. Устаревшее представление об остеоартрите как о дегенеративном процессе сменилось данными о роли в первую очередь иммунных нарушений на уровне синовиальной оболочки, которая (подобно изменениям при РА) гипертрофируется с рекрутированием в неё макрофагов и лимфоцитов, ангиогенезом и пролиферацией фибробластов. В костно-хрящевой единице происходят пролиферация хондроцитов в глубоких зонах, потеря внеклеточного матрикса и хондроцитов в поверхностной зоне, васкуляризация и врастание нейронов через границу между кальцинированным и некальцинированным хрящом, ремоделирование субхондральной кости (со склерозом, кистами и остеофитами) [29].

Проведённый в 2014 г. полногеномный анализ профиля экспрессии генов показал роль генов окислительного фосфорилирования ATP6, SCO2, CYTB, DN1, COX1, ANT1 в этиопатогенезе как остеоартрита, так и РА. Было выявлено, что биологические пути, связанные с функционированием иммунной системы, апоптозом и воспалением, участвуют в развитии остеоартрита и РА [30]. Показано также, что разрушение хряща вследствие воспаления занимает центральное место в патогенезе остеоартрита и опосредовано ферментами, разрушающими матрикс [31].

Остеоартрит имеет много общих патогенетических особенностей с РА, включая синовиальную активацию с высвобождением провоспалительных цитокинов в синовиальную жидкость. Преждевременное старение и дедифференцировка хондроцитов происходят как при остеоартрите, так и при РА, что может объяснить хоминг паннуса к хрящу при РА [32].

Хотя остеоартрит не относят к аутоиммунной патологии, есть свидетельства роли иммунопатологических процессов при остеоартрите, идентичных с РА, системной склеродермией, системной красной волчанкой и синдромом Шёгрена. И при перечисленных заболеваниях, и при остеоартрите определяется аномальная экспрессия галектинов (семейство гликан-связывающих белков, служащее важным регулятором врождённого и адаптивного иммунного ответа и участвующее в инвазии, миграции, адгезии и пролиферации клеток) [33].

В сыворотке крови 15% больных остеоартритом определены аутоантитела к Hcy-A1AT (Homocysteinylated alpha 1 antitrypsin), специфичные для пациентов с серопозитивным (87,1%) и серонегативным (75,7%) РА. У здоровых людей данные аутоантитела не определяются (0%) [34].

Проведённый в 2023 г. мультиомный анализ показал плейоторопный эффект экспрессии гена главного комплекса гистосовместимости иммунной системы HLA-DPB2 в развитии остеоартрита коленного сустава, опосредованного изменением метилирования данного гена [35]. У больных РА также выявлена корреляция тяжести клинической картины болезни и вероятности лимфомиелоидного патотипа с экспрессией HLA-DPB2 [36].

Витамин D3 снижает активность Th1-клеток и повышает иммунотолерантность. Дефицит витамина D3 приводит к дисбалансу взаимодействий между Th1/Th17 и Th2, Th17/Th reg и может быть причиной аутоиммунных процессов (в том числе РА) и остеоартрита. Это указывает на наличие общих патогенетических связей между остеоартритом и РА, а также на возможность применения методов лечения РА (восполнение дефицита витамина D3) в терапии остеоартрита [37].

И при аутоиммунных заболеваниях, и при остеоартрите отмечена роль повышенной экспрессии IL-17, который планируют использовать в качестве мишени для лечения данных болезней [38]. Противовоспалительная молекула програнулин (эндогенный антагонист TNFα за счёт конкурентного связывания с TNFR) замедляет прогрессирование остеоартрита, однако у больных РА он определён в повышенных концентрациях в сыворотке крови по сравнению со здоровыми людьми. Это свидетельствует о том, что, хотя в патогенезе остеоартрита аутоиммунные процессы могут играть роль, механизм его развития отличается от РА [39].

Исследования одноклеточных коммуникаций и сигнальных путей показали, что при остеоартрите преобладают пути коллагена и ламинина, тогда как при РА — пути кадгерина 5, нейротрофина и эпидермального фактора роста [40]. Для более точного определения специфических патологических иммунных механизмов развития остеоартрита можно рассмотреть генетические изменения в данных процессах.

СРАВНЕНИЕ АССОЦИАЦИИ ГЕНОВ С ИММУННЫМИ РЕАКЦИЯМИ ПРИ ОСТЕОАРТРИТЕ И РЕВМАТОИДНОМ АРТРИТЕ

Современные генетические исследования позволяют не только определить роль аллельных вариантов генов (полиморфизмов) в развитии болезни, но и выявить особенности экспрессии специфических генов, играющих роль в местных патогенетических процессах при остеоартрите. Большое значение в патогенезе остеоартрита имеют синовиальные макрофаги. С их инфильтрацией суставов у пациентов с остеоартритом ассоциированы гены C5AR1, FCGR2B, IL1B, IL6, IL10, TYROBP [41].

В исследовании, посвящённом поиску потенциальных генов риска инфильтрации хряща иммунными клетками при остеоартрите, определено достоверное влияние генов GPR137B, HLA-DMB, PTGS1 [42]. Следует отметить, что среди ассоциированных с остеоартритом генов иммунной системы определена ассоциация с РА аллельных вариантов гена GPR137B [43]. HLA-DMB является также прогностическим фактором РА [44]. Определена ассоциация с РА полиморфных вариантов генов С5AR1 [45], IL1B [46], IL10 [47].

В 2023 г. опубликованы результаты интегрированного биоинформационного анализа накопленных результатов об ассоциации аллельных вариантов различных генов с остеоартритом. Было выявлено 8 связанных с иммунной системой генов, ассоциированных с остеоартритом и метаболическим синдромом: FZD7, IRAK3, KDELR3, PHC2, RHOB, RNF170, SOX13, ZKSAN4 [48]. У пациентов с РА обнаружены более низкие уровни экспрессии IRAK3 CD14+-моноцитами по сравнению с контролем [49]. При РА идентифицированы достоверно более высокие уровни антител к транскрипционному фактору SOX13 [50]. Были получены доказательства роли малой везикулярной ГТФазы RhoB в выработке патогенных аутоантител и прогрессировании РА [51].

В исследованиях 2023 г. в макрофагах, тучных клетках, В-лимфоцитах и CD4-Т-лимфоцитах синовиальной оболочки больных остеоартритом выявлена дифференциальная экспрессия 181 гена в сравнении со здоровым контролем. Из них 4 гена специфичны для иммунной системы (DUSP1, JUN, MYC, NFKBIA) и могут быть использованы в качестве потенциальных терапевтических мишеней при остеоартрите [52].

В работе 2023 г. было обнаружено 5 генов иммунной системы, характеризующихся дифференциальной экспрессией (EDNRB, IL1R1, PGF, SCD1, TNFSF11) в поражённых остеоартритом суставах [53]. При РА снижение экспрессии DUSP1 под влиянием miR-101 способствовало деградации хряща [54]. Изменение экспрессии EDNRB при РА напрямую вовлечено в восприятие боли [55]. Аллельные варианты rs3917318, rs956730, rs1049057 гена IL1R ассоциированы с риском РА [56]. На моделях мышей с РА определена повышенная экспрессия PGF по сравнению с нормальными животными [57].

В нескольких исследованиях выявлена роль ассоциированных с иммунной инфильтрацией и вовлечённых в патогенез остеоартрита генов KLF9, EPYC [31], GABARAPL1, TNFAIP3, ARNTL, JUN [58], GREM1, NRP1, VEGFA, FYN, IL6R [59], CDKN1A, DDIT3, MAP1LC3B, MYC (участвующих в функционировании иммунной системы) [60], LPCAT3, PGD (вовлечённых в ферроптоз) [61]. В синовиальной ткани больных РА экспрессия miR-218-5p определяется на более высоком уровне по сравнению с нормой, что способствует ингибированию KLF9, оказывая влияние на апоптоз и аутофагию [62]. При РА определена дифференциальная экспрессия GABARAPL1, регулирующая аутофагию [63].

Согласно метаанализу 2022 г., rs2230926 и rs5029937 гена TNFAIP3 ассоциированы с риском развития РА [64]. У больных РА повышенный уровень TNFα вызывает усиленную экспрессию ARNTL в фибробластах поражённых суставов [65]. В суставах пациентов с РА определена также повышенная экспрессия GREM1 (кодирует антагонист морфогенетического белка костей), что способствует пролиферации, выживанию, миграции и инвазии фибробластоподобных синовиоцитов [66]. VEGFA участвует в регуляции миграции, инвазии и ангиогенеза при РА в путях miR-200a-3p/KLF6/VEGFA [67].

Достоверное отличие экспрессии гена FYN определено также при РА по сравнению с контролем [68]. Выявлена ассоциация полиморфизма rs2228145 гена IL6R с развитием РА [69]. Биоинформационные методы анализа показали изменение экспрессии при РА гена CDKN1A, участвующего в аутофагии [63], генов MYC и MAP1LC3B, имеющих иммунопатологическое значение [70]. Синовиальные мастоциты регулируют воспаление при РА путём гиперпродукции PGD [71].

Ассоциированными со старением и остеоартритом оказались гены BCL6, EPHA3, MCL1, PIM1, SLC16A7. Анализ иммунной инфильтрации показал, что данные 5 генов значительно коррелируют со специфическими иммунными клетками и участвуют в иммунных сигнальных путях [72]. У больных РА выявлено изменение экспрессии BCL6 в поражённой ткани CD4+-Т-лимфоцитами [73].

В суставах при РА происходит активация сигнальных путей ядерного фактора-κВ, фософатидилинозитол-3-киназы/Akt-1, что способствует экспрессии генов, вызывающих воспаление и разрушение хряща, а также антиапоптотических молекул, таких как MCL1 [74]. В периферических мононуклеарах (CD4+-T-клетках) и синовиальных Т-лимфоцитах больных РА определена повышенная экспрессия PIM1 [75].

Проведённый в 2021 г. расширенный анализ цитокинов в синовиальной жидкости пациентов с остеоартритом показал высокие уровни белков GITRL, CEACAM-1, FSH, EG-VEGF, FGF-4, PIGF, Cystatin EM и NT-4. Биоинформационный анализ продемонстрировал, что большинство этих белков вовлечено в изменение функций лейкоцитов, а в центральных позициях белок-белковых сетей расположены дифференциально экспрессирующиеся белки IL-18, CXCL1, CTLA4, MIP-3b, CD40, MMP-1, THBS1, CCL11, PAI-1, BAFF, аггрекан, ангиогенин и фоллистатин [76].

В то же время с предрасположенностью к РА ассоциированы аллельные варианты генов иммунной системы CTLA4-rs231775, CTLA4-rs5742909 (cytotoxic T-lymphocyte-associated protein 4), CD28-rs1980422 [77]. При остеоартрите выявлены ассоциированные с иммунными реакциями в поражённых суставах изменения экспрессии генов, которые ассоциированы также с РА. Это свидетельствует о вероятной идентичности определённых патогенетических звеньев обеих болезней и роли аутоиммунных процессов в патогенезе остеоартрита, а также о возможном применении для таргетной терапии РА препаратов в лечении тяжёлых прогрессирующих форм остеоартрита.

Однако необходимы дифференцированный подход и использование в качестве мишеней только тех молекул, характер ассоциации которых с РА аналогичен. В табл. 1 представлено 26 генов, ассоциированных с иммунными реакциями как при остеоартрите, так и при РА. Из этих 26 генов для 13 показан разный характер ассоциации, что связано с особенностями патогенеза каждого заболевания.

 

Таблица 1. Идентичные гены, влияющие на иммунные реакции и ассоциированные с остеоартритом и ревматоидным артритом

Название
гена

Белковый продукт гена, функция

Роль в развитии
остеоартрита [автор]

Роль в развитии
РА [автор]

ARNTL

Белок, подобный ядерному транслокатору AHR, активирует гены, экспрессия которых регулируется продуктами циркадных генов

Низкая экспрессия при остеоартрите [58]

Повышенная экспрессия в фибробластах поражённых суставов [65]

BCL6

Член семейства белков POZ/BTB-цинковых пальцев, усиливает пролиферацию хондроцитов

Снижение экспрессии в NK-клетках, мастоцитах и дендритных клетках [72]

Дифференцированное повышение экспрессии [73]

С5AR1

Рецептор анафилотоксина С5а, экспрессируемый иммунными клетками, химический аттрактант и медиатор воспаления

Повышенная экспрессия в поражённых суставах, корреляция с инфильтрацией макрофагами [41]

Повышенный уровень способствует воспалительным процессам [45]

CDKN1A

Ингибитор циклин-зависимой киназы 1А, регулирует репликацию ДНК в S-фазе и участвует в восстановлении повреждённой ДНК, влияет на аутофагию

Снижена экспрессия [60]

Дифференциальная экспрессия [63]

CTLA4

Клеточный рецептор иммуноглобулинов

Повышение экспрессии [76]

Ассоциация аллеля rs231775 [77]

DUSP1

Ингибирует пролиферацию и воспалительный ответ, защищает хрящ за счёт подавления MMP-13 и активации MAPK

Низкая экспрессия при иммунной инфильтрации сустава [52]

Низкая экспрессия способствует деградации хряща [54]

EDNRB

Рецептор эндотелина типа В, связанный с G-белком, который активирует фосфатидилинозитол-кальциевую систему

Повышенная экспрессия ассоциирована с инфильтрацией иммуноцитами [53]

Вовлечена в восприятие боли [55]

FYN

Протоонкоген, мембраносвязанная тирозинкиназа, контролирующая рост клеток

Негативная ассоциация с инфильтрацией сустава макрофагами М1 [59]

Повышенная экспрессия [56]

GABARAPL1

Белок, связанный с рецептором ГАМК типа А, регулирует аутофагию

Низкая экспрессия при остеоартрите [58]

Дифференциальная экспрессия при РА [63]

GPR137B

Связанный с G-белком рецептор 137В, регулирует передачу сигналов TORC1 и активность ГТФазы

Повышенная экспрессия [42]

Ассоциация сигналов репликации вблизи гена [43]

GREM1

Антагонист морфогенетического белка костей

Ассоциация с инфильтрацией сустава иммунными клетками [59]

Способствует пролиферации, выживанию, миграции и инвазии фибробластоподобных синовиоцитов [66]

HLA-DMB

Белки главного комплекса гистосовместимости класса II, DM beta

Повышенная экспрессия [42]

Ассоциация с тяжёлым течением болезни [44]

KLF9

Транскрипционный фактор, ингибирующий экспрессию мРНК при связывании с GC-боксом и активирующий при связывании с тандемными повторами GC-бокса

Повышенная экспрессия ассоциирована с инфильтрацией иммуноцитами [31]

Низкая экспрессия подавляет апоптоз и аутофагию [62]

IL1B

Провоспалительный цитокин, вырабатываемый иммунными клетками

Повышенная экспрессия в поражённых суставах, корреляция с инфильтрацией макрофагами [41]

Ассоциация с риском развития РА [46]

IL6R

Рецептор интерлейкина-6, передача провоспалительных сигналов

Негативная ассоциация с инфильтрацией сустава макрофагами М1 [59]

Ассоциация с риском развития РА [69]

IL10

Противовоспалительный цитокин, вырабатываемый иммунными клетками

Повышенная экспрессия в поражённых суставах, корреляция с инфильтрацией макрофагами [41]

Повышенные уровни ассоциированы с высокой серопозитивностью к ревматоидному фактору и антителам к циклическому цитруллиновому пептиду [47]

IRAK3

Ассоциированная с рецептором интерлейкина-1 киназа

Экспрессируется иммунными клетками [48]

Низкая экспрессия CD14+-моноцитами [49]

MAP1LC3B

Субъединица белков MAP1A и MAP1B, связанных с нейрональными микротрубочками, участвует в аутофагии

Снижена экспрессия [60]

Способствует иммунопатологическим процессам [70]

MCL1

Регулятор апоптоза MCL1, необходим для выживания фибробластов, макрофагов и лимфоцитов

Снижение экспрессии в NK-клетках, мастоцитах [72]

Повышение экспрессии [74]

MYC

Транскрипционный фактор, регулирует апоптоз и клеточную трансформацию

Снижена экспрессия [60]

Способствует иммунопатологическим процессам [70]

PGF

Фактор роста плаценты, член подсемейства VEGF, способствует ангиогенезу

Повышенная экспрессия ассоциирована с инфильтрацией иммуноцитами [53]

Повышенная экспрессия вызывает патологический ангиогенез в суставе [57]

PIM1

Ключевой регулятор апоптоза, стимулирует дифференцировку и пролиферацию

Снижение экспрессии в мастоцитах [72]

Повышение экспрессии [75]

RHOB

Малая везикулярная ГТФаза RhoB, активирует IL-1β, LPS, TNFα

Повышенная экспрессия при остеоартрите способствует воспалению [48]

Вызывает синтез аутоантител [51]

SOX13

Аутоиммунный антиген, модулирующий воспалительный ответ

Повышенная экспрессия при остеоартрите способствует воспалению [48]

Вызывает синтез аутоантител [50]

TNFAIP3

Индуцируемый TNF белок цинковых пальцев, редактирует убиквитин и участвует в иммунных и воспалительных реакциях

Низкая экспрессия при остеоартрите [58]

Ассоциация с риском развития РА [64]

VEGFA

Фактор роста эндотелия сосудов А

Ассоциация с инфильтрацией сустава CD8+ наивными Т-клетками [59]

Способствует миграции, инвазии иммунных клеток и ангиогенезу [67]

Примечание: ДНК — дезоксирибонуклеиновая кислота; ГАМК — γ-аминомасляная кислота; ГТФ — гуанозинтрифосфат; мРНК — матричная рибонуклеиновая кислота; VEGF (от англ. vascular endothelial growth factor) — сосудистый эндотелиальный фактор роста; IL (от англ. interleukin) — интерлейкин; TNF (от англ. tumor necrosis factor) — фактор некроза опухоли; РА — ревматоидный артрит.

 

Так, при остеоартрите выявлено снижение экспрессии антиапоптозных генов BCL6, MCL1, PIM1 [72], тогда как для РА определено повышение их уровня [73–75]. Это связано с патологической ролью пролиферации фибробластоподобных и иммунных клеток для образования паннуса при РА [78], в то время как при остеоартрите снижение пролиферации хондроцитов способствует прогрессированию заболевания вследствие потери хрящевой ткани [72]. По этой причине идентичные стратегии таргетной терапии остеоартрита и РА могут быть применены в отношении 13 генов, изменения которых совпадают для обеих болезней (см. табл. 1).

РОЛЬ МИКРОРНК В РАЗВИТИИ ОСТЕОАРТРИТА И АУТОИММУННОЙ ПАТОЛОГИИ

Различия в экспрессии специфических микроРНК определяются не только между больными остеоартритом и здоровыми людьми, но даже между разными образцами хряща одного и того же пациента с остеоартритом. Так, при исследовании 130 образцов суставного хряща одного пациента была определена дифференциальная экспрессия 142 микроРНК между повреждённым и сохранённым хрящом. Данные различия могут свидетельствовать как о компенсаторных эпигенетических процессах, направленных на восстановление повреждённых клеток, так и об участии этих микроРНК в апоптозе и воспалении [79].

В 2017 г. был проведён интегративный биоинформационный анализ ассоциированных с остеоартритом особенностей экспрессии микроРНК. В результате было выявлено достоверное повышение уровней miR-23b-3p, miR-27b-3p, miR-211-5p, miR-16-5p; снижение — miR-25-3p, miR-149-5p [80].

Необходимо отметить, что miR-23b ассоциирована с воспалением и аутоиммунными болезнями. С помощью микрочипового анализа микроРНК в фибробластоподобных синовиоцитах была выявлена повышенная экспрессия miR-23b у пациентов с РА, что было подтверждено количественной полимеразной цепной реакцией. Поскольку уровень данной микроРНК в плазме крови был более высоким у больных РА с анорексией и снижался при лечении, предполагают использовать miR-23b в качестве биомаркёра активности РА.

Мишени miR-23b — гены Marcksl-1 (кодирует белок, влияющий на адгезивные соединения и регуляцию цитоскелета), NF-κB (транскрипционный фактор, регулирующий экспрессию генов иммунного ответа), а также матричная РНК генов воспалительных факторов эндотелиальных клеток [78]. Повышенная экспрессия miR-16-5p определена также в образцах плазмы крови больных РА по сравнению с контролем, что свидетельствует о роли данной микроРНК в инициировании и прогрессировании болезни [81]. MiR-16-5p оказывает регуляторное воздействие на экспрессию генов матриксных металлопротеиназ MMP8, MMP1, протеинкиназу ERK1/2 [82].

В периферических мононуклеарах больных РА определена сниженная экспрессия miR-25-3p [83], которая регулирует экспрессию VEGFR2, ZO-1, Claudin5 в эндотелиоцитах за счёт целевого воздействия на KLF2 и KLF4, способствуя таким образом ангиогенезу [84]. MiR-149-5p и miR-let-7c-5p подавляют транскрипцию TNFα, IL-1β, IL-6 у больных остеоартритом и РА по сравнению с контролем. Противовоспалительные средства индометацин, целекоксиб и дексаметазон, а также ибупрофен и метотрексат подавляли синтез провоспалительных цитокинов за счёт усиления экспрессии miR-149-5p и miR-let-7c-5p [85].

Проведённый в 2023 г. метаанализ показал, что наибольшее количество исследований остеоартрита было проведено с использованием суставного хряща, где чаще всего определялись активация miR-146a-5p, miR-34a-5p и снижение экспрессии miR-127-5p, miR-140-5p [86]. В то же время, проведённый в 2018 г. метаанализ показал, что уровни miR-146a значительно выше у больных РА по сравнению со здоровым контролем [87]. Определена важная роль miR-146 в развитии ювенильного идиопатического артрита и аутоиммунного увеита [88].

MiR-146a служит первичным регулятором иммунного ответа и участвует в патогенезе РА. В экспериментах на мышах было выявлено, что экзосомы, полученные из мезенхимальных стволовых клеток и трансдуцированные по miR-146a, повышают экспрессию Fox-P3, IL-10, TGF-β [89]. При РА определяется также значительное снижение экспрессии miR-140 по сравнению с контролем. Мишени данной микроРНК — матричные РНК генов Smad3, ADAMTS-5, HDAC4. Кроме того, miR-140 воздействует на деацетилазу гистонов HDAC4, приводя к гиперацетилированию матриксного белка с регуляцией развития и гомеостаза хряща [90].

Таким образом, микроРНК, экспрессия которых достоверно ассоциирована с развитием остеоартрита, проявляют идентичные изменения уровня у больных РА, что свидетельствует о перспективности проектирования таргетной терапии для этих двух заболеваний с использованием специфических 6 микроРНК (табл. 2) в качестве мишеней.

 

Таблица 2. Изменения экспрессии специфических микроРНК при остеоартрите и ревматоидном артрите

МикроРНК

Изменение экспрессии при остеоартрите [автор]

Изменение экспрессии при ревматоидном артрите [автор]

Механизм действия микроРНК [автор]

miR-140

Снижение [86]

Снижение [90]

Ингибирует матричную РНК генов Smad3, ADAMTS-5, HDAC4 [90]

miR-146a

Повышение [86]

Повышение [87]

Регулирует экспрессию Fox-P3, IL-10, TGF-β [89]

miR-149

Снижение [80]

Снижение [85]

Подавляет экспрессию TNF- α, IL-1β, IL-6 [85]

miR-16

Повышение [80]

Повышение [81]

Регуляция экспрессии генов MMP8, MMP1, ERK1/2 [82]

miR-23b

Повышение [80]

Повышение [78]

Регуляция экспрессии генов Marcksl-1, NF-κB [78]

miR-25

Снижение [80]

Снижение [83]

Подавляет экспрессию KLF2 и KLF4 [84]

Примечание: РНК — рибонуклеиновая кислота.

 

Полученные результаты свидетельствуют также о возможных совпадающих эпигенетических путях развития РА и остеоартрита. В отличие от ассоциации с экспрессией специфических белок-кодирующих генов, идентичные изменения уровней которых определены только для половины генов, идентичный характер ассоциации микроРНК может быть обусловлен наличием множества мишеней данных молекул (микроРНК регулируют экспрессию матричных РНК множества различных генов).

Кроме того, микроРНК обладают грандиозным потенциалом вызывать перестройку стволовых клеток в дифференцированные с активацией регенерации хрящевой ткани. Их использование в клинической медицине наиболее перспективно. В экспериментах на крысах была показана регенерация хряща за счёт подавления старения при доставке микроРНК miR-29b-5p в суставы с помощью синовиальных стволовых клеток (которые дифференцировались в хондроциты) [91].

При остеоартрите определяется снижение экспрессии miR-17 в хондроцитах. При этом дефицит miR-17 способствует прогрессированию остеоартрита. В экспериментах на мышах индукция miR-17 фактором дифференцировки роста или введение miR-17 предотвращало остеоартрит путём одновременного воздействия на синтетазу оксида азота-2 (NOS-2), аггреканазу-2 (ADAMTS5), металлопептидазу-3/13 (MMP3/13). Было выявлено, что miR-17 экспрессируется на высоких уровнях в поверхностных и средних хондроцитах суставного хряща в норме и поддерживает физиологический баланс между катаболизмом и анаболизмом потенциально за счёт рестрикции сигналов HIF-1α [92].

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Анализ научных платформ PubMed, Scopus, ResearchGate, RSCI за последние 10 лет показал, что разрушение хряща при остеоартрите обусловлено воспалением, а в этиопатогенезе болезни играют роль иммунопатологические процессы, идентичные РА. К ним относятся гипертрофия синовиальной оболочки с рекрутированием лимфоцитов и макрофагов, пролиферацией фибробластов и ангиогенезом.

Определено вовлечение в патогенез остеоартрита и РА идентичных генов (ATP6, SCO2, CYTB, DN1, COX1, ANT1) и биологических путей, связанных с апоптозом, воспалением и функционированием иммунной системы. При остеоартрите, подобно аутоиммунным заболеваниям, выявлены аномальная экспрессия галектинов, аутоантитела к Hcy-A1AT, дисбаланс взаимодействий между Th1/Th17 и Th2, Th17/Th reg при дефиците витамина D3, экспрессии IL-17 Т-лимфоцитами, изменение метилирования гена HLA-DPB2. Перечисленные иммунные нарушения могут быть значимыми факторами прогрессирования и усугубления тяжести остеоартрита, поэтому служат перспективными молекулярными мишенями для таргетной терапии болезни.

Генетические исследования показали ассоциацию множества генов с развитием патологических иммунных реакций при остеоартрите, при этом для 26 из них определена ассоциация также с РА, из них для 13 — совпадающие изменения экспрессии (С5AR1, CTLA4, DUSP1, EDNRB, GPR137B, GREM1, HLA-DMB, IL1B, IL10, PGF, RHOB, SOX13, VEGFA), а для 13 — противоположные. Это свидетельствует о возможном использовании определения уровней специфических молекул в синовиальной жидкости для дифференциальной диагностики этих заболеваний. Кроме того, 13 молекул с идентичным изменением экспрессии могут быть использованы в качестве мишеней для таргетной терапии РА и остеоартрита.

Наиболее перспективны в данном отношении микроРНК. Анализ научных литературных данных показал, что при РА и остеоартрите происходит снижение экспрессии miR-140, miR-149, miR-25 и повышение уровня miR-146a, miR-16, miR-23b. Это свидетельствует о наличии общих эпигенетических механизмов данных заболеваний и возможности использования идентичных методов таргетной терапии остеоартрита и РА.

ДОПОЛНИТЕЛЬНАЯ ИНФОРМАЦИЯ

Источник финансирования. Исследование не имело спонсорской поддержки.
Конфликт интересов. Автор заявляет об отсутствии конфликта интересов по представленной статье.

×

Об авторах

Рустам Наилевич Мустафин

Башкирский государственный медицинский университет

Автор, ответственный за переписку.
Email: ruji79@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-4091-382X
SPIN-код: 4810-2535
Scopus Author ID: 56603137500
ResearcherId: S-2194-2018

канд. биол. наук, доц., каф. медицинской генетики и фундаментальной медицины

Россия, г. Уфа

Список литературы

  1. Chen J., Chen S., Cai D., et al. The role of Sirt6 in osteoarthritis and its effect on macrophage polarization // Bioengineered. 2022. Vol. 13, N. 4. P. 9677–9689. doi: 10.1080/21655979.2022.2059610
  2. Gilbert S.J., Blain E.J., Mason D.J. Interferon-gamma modulates articular chondrocyte and osteoblast metabolism through protein kinase R-independent and dependent mechanisms // Biochem Biophys Rep. 2022. Vol. 32. P. 101323. doi: 10.1016/j.bbrep.2022.101323
  3. Allen K.D., Thoma L.M., Golightly Y.M. Epidemiology of osteoarthritis // Osteoarthritis Cartilage. 2022. Vol. 30, N. 2. Р. 184–195. doi: 10.1016/j.joca.2021.04.020
  4. Vos T., Flaxman A.D., Naghavi M., et al. Years lived with disability (YLDs) for 1160 sequelae of 289 diseases and injuries 1990–2010: A systematic analysis for the Global Burden of Disease Study 2010 // Lancet. 2012. Vol. 380. Р. 2163–2196. doi: 10.1016/S0140-6736(12)61729-2
  5. Cross M., Smith E., Hoy D., et al. The global burden of hip and knee osteoarthritis: Estimates from the global burden of disease 2010 study // Ann Rheum Dis. 2014. Vol. 73, N. 7. Р. 1323–1330. doi: 10.1136/annrheumdis-2013-204763
  6. Середа А.П., Кочиш А.А., Черный А.А., и др. Эпидемиология эндопротезирования тазобедренного и коленного суставов и перипротезной инфекции в Российской Федерации // Травматология и ортопедия России. 2021. Т. 27, № 3. С. 84–93. doi: 10.21823/2311-2905-2021-27-3-84-93
  7. Knights A.J., Redding S.J., Maerz T. Inflammation in osteoarthritis: the latest progress and ongoing challenges // Curr Opin Rheumatol. 2023. Vol. 35, N. 2. Р. 128–134. doi: 10.1097/BOR.0000000000000923
  8. Simon T.C., Jeffries M.A. The epigenomic landscape in osteoarthritis // Curr Rheumatol Rep. 2017. Vol. 19, N. 6. Р. 30. doi: 10.1007/s11926-017-0661-9
  9. Мустафин Р.Н., Хуснутдинова Э.К. Некодирующие части генома как основа эпигенетической наследственности // Вавиловский журнал генетики и селекции. 2017. Т. 21, № 6. С. 742–749. doi: 10.18699/10.18699/VJ17.30-o
  10. Wei G., Qin S., Li W., et al. MDTE DB: A database for microRNAs derived from transposable element // IEEE/ACM Trans Comput Biol Bioinform. 2016. Vol. 13, N. 6. Р. 1155–1160. doi: 10.1109/TCBB.2015.2511767
  11. Gorbunova V., Seluanov A., Mita P., et al. The role of retrotransposable elements in ageing and age-associated diseases // Nature. 2021. Vol. 596, N. 7870. Р. 43–53. doi: 10.1038/s41586-021-03542-y
  12. De Cecco M., Ito T., Petrashen A.P., et al. L1 drives IFN in senescent cells and promotes age-associated inflammation // Nature. 2019. Vol. 566. Р. 73–78. doi: 10.1038/s41586-018-0784-9
  13. Van Meter M., Kashyap M., Rezazadeh S., et al. SIRT6 represses LINE1 retrotransposons by ribosylating KAP1 but this repression fails with stress and age // Nat Commun. 2014. Vol. 5. Р. 5011. doi: 10.1038/ncomms6011
  14. Zhou F., Mei J., Han X., et al. Kinsenoside attenuates osteoarthritis by repolarizing macrophages through inactivating NF-κB/MAPK signaling and protecting chondrocytes // Acta Pharm Sin B. 2019. Vol. 9, N. 5. Р. 973–985. doi: 10.1016/j.apsb.2019.01.015
  15. Мустафин Р.Н. Перспективы исследования транспозонов в патогенезе аутоиммунных заболеваний // Казанский медицинский журнал. 2022. Т. 103, № 6. С. 986–995. doi: 10.17816/KMJ104291
  16. Saetan N., Honsawek S., Tanavalee S., et al. Association of plasma and synovial fluid interferon-γ inducible protein-10 with radiographic severity in knee osteoarthritis // Clin Biochem. 2011. Vol. 44, N. 14–15. Р. 1218–1222. doi: 10.1016/j.clinbiochem.2011.07.010
  17. Li S., Ren Y., Peng D., et al. TIM-3 genetic variations affect susceptibility to osteoarthritis by interfering with interferon gamma in CD4+ T cells // Inflammation. 2015. Vol. 38, N. 5. Р. 1857–1863. doi: 10.1007/s10753-015-0164-7
  18. Guo Q., Chen X., Chen J., et al. STING promotes senescence, apoptosis, and extracellular matrix degradation in osteoarthritis via the NF-κB signaling pathway // Cell Death Dis. 2021. Vol. 12, N. 1. Р. 13. doi: 10.1038/s41419-020-03341-9
  19. Mclnnes I.B., Schett G. Pathogenetic insight from treatment of rheumatoid arthritis // Lancet. 2017. Vol. 389, N. 10086. Р. 2328–2337. doi: 10.1016/S0140-6736(17)31472-1
  20. Toro-Domínguez D., Carmona-Sáez P., Alarcón-Riquelme M.E. Shared signatures between rheumatoid arthritis, systemic lupus erythematosus and Sjögren's syndrome uncovered through gene expression meta-analysis // Arthritis Res Ther. 2014. Vol. 16, N. 6. Р. 489. doi: 10.1186/s13075-014-0489-x
  21. Kubo S., Nakayamada S., Tanaka Y. JAK inhibitors for rheumatoid arthritis // Expert Opin Investig Drugs. 2023. Vol. 32, N. 4. Р. 333–344. doi: 10.1080/13543784.2023.2199919
  22. Zhao S., Grieshaber-Bouyer R., Rao D.A., et al. Effect of JAK inhibition on the induction of proinflammatory HLA-DR+CD90+ rheumatoid arthritis synovial fibroblasts by interferon-γ // Arthritis Rheumatol. 2022. Vol. 74, N. 3. Р. 441–452. doi: 10.1002/art.41958
  23. De Groen R.A., Liu B.S., Boonstra A. Understanding IFNλ in rheumatoid arthritis // Arthritis Res Ther. 2014. Vol. 16, N. 1. Р. 102. doi: 10.1186/ar4445
  24. Lee Y.H., Song G.G. Association between the interferon-γ +874 T/A polymorphism and susceptibility to systemic lupus erythematosus and rheumatoid arthritis: A meta-analysis // Int J Immunogenet. 2022. Vol. 49, N. 6. Р. 365–371. doi: 10.1111/iji.12599
  25. Lee Min H.K., Koh S.H., Lee S.H., et al. Prognostic signature of interferon-γ and interleurkin-17A in early rheumatoid arthritis // Clin Exp Rheumatol. 2022. Vol. 40, N. 5. Р. 999–1005. doi: 10.55563/clinexprheumatol/mkbvch
  26. Chen Wu Q., Cao X., Yang Y., et al. Menthone inhibits type-I interferon signaling by promoting Tyk2 ubiquitination to relieve local inflammation of rheumatoid arthritis // Int Immunopharmacol. 2022. Vol. 112. Р. 109228. doi: 10.1016/j.intimp.2022.109228
  27. Bienkowska J., Allaire N., Thai A., et al. Lymphotoxin-LIGHT pathway regulates the interferon signature in rheumatoid arthritis // PLoS One. 2014. Vol. 9, N. 11. Р. e112545. doi: 10.1371/journal.pone.0112545
  28. Iwasaki T., Watanabe R., Ito H., et al. Dynamics of type I and type II interferon signature determines responsiveness to anti-TNF therapy in rheumatoid arthritis // Front Immunol. 2022. Vol. 13. Р. 901437. doi: 10.3389/fimmu.2022.901437
  29. Uhalte E.C., Wilkinson J.M., Southam L., Zeggini E. Pathways to understanding the genomic aetiology of osteoarthritis // Hum Mol Genet. 2017. Vol. 26. Р. R193–R201.
  30. Li Z.C., Xiao J., Peng J.L., et al. Functional annotation of rheumatoid arthritis and osteoarthritis associated genes by integrative genome-wide gene expression profiling analysis // PLoS One. 2014. Vol. 9, N. 2. Р. e85784. doi: 10.1371/journal.pone.0085784
  31. Zhang J., Zhang S., Zhou Y., et al. KLF9 and EPYC acting as feature genes for osteoarthritis and their association with immune infiltration // J Orthop Surg Res. 2022. Vol. 17, N. 1. Р. 365. doi: 10.1186/s13018-022-03247-6
  32. Reines B. Is rheumatoid arthritis premature osteoarthritis with fetal-like healing // Autoimmun Rev. 2004. Vol. 3, N. 4. Р. 305–311. doi: 10.1016/j.autrev.2003.11.002
  33. Xu W.D., Huang Q., Huang A.F. Emerging role of galectin family in inflammatory autoimmune diseases // Autoimmun Rev. 2021. Vol. 20, N. 7. Р. 102847. doi: 10.1016/j.autrev.2021.102847
  34. Colasanti T., Sabatinelli D., Mancone C., et al. Homocysteinylated alpha 1 antitrypsin as an antigenic target of autoantibodies in seronegative rheumatoid arthritis patients // J Autoimmun. 2020. Vol. 113. Р. 102470. doi: 10.1016/j.jaut.2020.102470
  35. Kenny J., Mullin B.H., Tomlinson W., et al. Age-dependent genetic regulation of osteoarthritis: Independent effects of immune system genes // Arthritis Res Ther. 2023. Vol. 25, N. 1. Р. 232. doi: 10.1186/s13075-023-03216-2
  36. Goldmann K., Spiliopoulou A., Iakovliev A., et al. Expression quantitative trait loci analysis in rheumatoid arthritis identifies tissue specific variants associated with severity and outcome // Ann Rheum Dis. 2024. Vol. 83, N. 3. Р. 288–299. doi: 10.1136/ard-2023-224540
  37. Szulc M., Swatkowska-Stodulska R., Pawlowska E., Derwich M. Vitamin D3 metabolism and its role in temporomandibular joint osteoarthritis and autoimmune thyroid diseases // Int J Mol Sci. 2023. Vol. 24, N. 4. Р. 4080. doi: 10.3390/ijms24044080
  38. Akhter S., Tasnim F.M., Islam M.N., et al. Role of Th17 and Il-17 cytokines on inflammatory and auto-immune diseases // Curr Pharm Des. 2023. Vol. 29, N. 26. Р. 2078–2090. doi: 10.2174/1381612829666230904150808
  39. Jian J., Li G., Hettinghouse A., Liu C. Progranulin: A key player in autoimmune diseases // Cytokine. 2018. Vol. 101. Р. 48–55. doi: 10.1016/j.cyto.2016.08.007
  40. Wang J., Liu C., Wang T., et al. Single-cell communication patterns and their intracellular information flow in synovial fibroblastic osteoarthritis and rheumatoid arthritis // Immunol Lett. 2023. Vol. 263. Р. 1–13. doi: 10.1016/j.imlet.2023.09.005
  41. Liu Y., Lu T., Liu Z., et al. Six macrophage-associated genes in synovium constitute a novel diagnostic signature for osteoarthritis // Front Immunol. 2022. Vol. 13. Р. 936606. doi: 10.3389/fimmu.2022.936606
  42. Xu J., Chen K., Yu Y., et al. Identification of immune-related risk genes in osteoarthritis based on bioinformatics analysis and machine learning // J Pers Med. 2023. Vol. 13, N. 2. Р. 367. doi: 10.3390/jpm13020367
  43. Freudenberg J., Lee H.S., Han B.G., et al. Genome-wide association study of rheumatoid arthritis in Koreans: Population-specific loci as well as overlap with European susceptibility loci // Arthritis Rheum. 2011. Vol. 63. Р. 884–893. doi: 10.1002/art.30235
  44. Morel J., Roch-Bras F., Molinari N., et al. HLA-DMA*0103 and HLA-DMB*0104 alleles as novel prognostic factors in rheumatoid arthritis // Ann Rheum Dis. 2004. Vol. 63. Р. 1581–1586. doi: 10.1136/ard.2003.012294
  45. Schanzenbacher J., Hendrika Kähler K., Mesler E., et al. The role of C5a receptors in autoimmunity // Immunobiology. 2023. Vol. 228, N. 5. Р. 152413. doi: 10.1016/j.imbio.2023.152413
  46. Rong H., He X., Wang L., et al. Association between IL1B polymorphisms and the risk of rheumatoid arthritis // Int Immunopharmacol. 2020. Vol. 83. Р. 106401. doi: 10.1016/j.intimp.2020.106401
  47. Hernández-Bello J., Oregón-Romero E., Vázquez-Villamar M., et al. Aberrant expression of interleukin-10 in rheumatoid arthritis: Relationship with IL10 haplotypes and autoantibodies // Cytokine. 2017. Vol. 95. Р. 88–96. doi: 10.1016/j.cyto.2017.02.022
  48. Li J., Wang G., Xv X., et al. Identification of immune-associated genes in diagnosing osteoarthritis with metabolic syndrome by integrated bioinformatics analysis and machine learning // Front Immunol. 2023. Vol. 14. Р. 1134412. doi: 10.3389/fimmu.2023.1134412
  49. Gomes da Silva I.I.F., Barbosa A.D., Souto F.O., et al. MYD88, IRAK3 and rheumatoid arthritis pathogenesis: Analysis of differential gene expression in CD14+ monocytes and the inflammatory cytokine levels // Immunobiology. 2021. Vol. 226, N. 6. Р. 152152. doi: 10.1016/j.imbio.2021.152152
  50. Fida S., Myers M.A., Whittingham S., et al. Autoantibodies to the transcriptional factor SOX13 in primary biliary cirrhosis compared with other diseases // J Autoimmun. 2002. Vol. 19, N. 4. Р. 251–527. doi: 10.1006/jaut.2002.0622
  51. Mandik-Nayak L., DuHadaway J.B., Mulgrew J., et al. RhoB blockade selectively inhibits autoantibody production in autoimmune models of rheumatoid arthritis and lupus // Dis Model Mech. 2017. Vol. 10, N. 11. Р. 1313–1322. doi: 10.1242/dmm.029835
  52. Zhang Q., Sun C., Liu X., et al. Mechanism of immune infiltration in synovial tissue of osteoarthritis: A gene expression-based study // J Orthop Surg Res. 2023. Vol. 18, N. 1. Р. 58. doi: 10.1186/s13018-023-03541-x
  53. Pan L., Yang F., Cao X., et al. Identification of five hub immune genes and characterization of two immune subtypes of osteoarthritis // Front Endocrinol (Lausanne). 2023. Vol. 14. Р. 1144258. doi: 10.3389/fendo.2023.1144258
  54. Ye Y., Bao C., Fan W. Overexpression of miR-101 may target DUSP1 to promote the cartilage degradation in rheumatoid arthritis // J Comput Biol. 2019. Vol. 26, N. 10. Р. 1067–1079. doi: 10.1089/cmb.2019.0021
  55. Cortes-Altamirano J.L., Morraz-Varela A., Reyes-Long S., et al. Chemical mediators' expression associated with the modulation of pain in rheumatoid arthritis // Curr Med Chem. 2020. Vol. 27, N. 36. Р. 6208–6218. doi: 10.2174/0929867326666190816225348
  56. Liu X., Peng L., Li D., et al. The Impacts of IL1R1 and IL1R2 genetic variants on rheumatoid arthritis risk in the Chinese Han population: A case-control study // Int J Gen Med. 2021. Vol. 14. Р. 2147–2159. doi: 10.2147/IJGM.S291395
  57. Wang N., Zhao X., Wang W., et al. Targeted profiling of arachidonic acid and eicosanoids in rat tissue by UFLC-MS/MS: Application to identify potential markers for rheumatoid arthritis // Talanta. 2017. Vol. 162. Р. 479–487. doi: 10.1016/j.talanta.2016.10.065
  58. Xia D., Wang J., Yang S., et al. Identification of key genes and their correlation with immune infiltration in osteoarthritis using integrative bioinformatics approaches and machine-learning strategies // Medicine (Baltimore). 2023. Vol. 102, N. 46. Р. e35355. doi: 10.1097/MD.0000000000035355
  59. Cheng P., Gong S., Guo C., et al. Exploration of effective biomarkers and infiltrating Immune cells in osteoarthritis based on bioinformatics analysis // Artif Cells Nanomed Biotechnol. 2023. Vol. 51, N. 1. Р. 242–254. doi: 10.1080/21691401.2023.2185627
  60. Qin J., Zhang J., Wu J.J., et al. Identification of autophagy-related genes in osteoarthritis articular cartilage and their roles in immune infiltration // Front Immunol. 2023. Vol. 14. Р. 1263988. doi: 10.3389/fimmu.2023.1263988
  61. Wang L., Ye S., Qin J., et al. Ferroptosis-related genes LPCAT3 and PGD are potential diagnostic biomarkers for osteoarthritis // J Orthop Surg Res. 2023. Vol. 18, N. 1. Р. 699. doi: 10.1186/s13018-023-04128-2
  62. Chen M., Li M., Zhang N., et al. Mechanism of miR-218-5p in autophagy, apoptosis and oxidative stress in rheumatoid arthritis synovial fibroblasts is mediated by KLF9 and JAK/STAT3 pathways // J Investig Med. 2021. Vol. 69, N. 4. Р. 824–832. doi: 10.1136/jim-2020-001437
  63. Fan D.D., Tan P.Y., Jin L., et al. Bioinformatic identification and validation of autophagy-related genes in rheumatoid arthritis // Clin Rheumatol. 2023. Vol. 42, N. 3. Р. 741–750. doi: 10.1007/s10067-022-06399-2
  64. Lee Y.H., Song G.G. Associations between TNFAIP3 polymorphisms and rheumatoid arthritis: A systematic review and meta-analysis update with trial sequential analysis // Public Health Genomics. 2022. Vol. 12. Р. 1–11. doi: 10.1159/000526212
  65. Olkkonen J., Kouri V.P., Hynninen J., et al. Differentially expressed in chondrocytes 2 (DEC2) increases the expression of IL-1β and is abundantly present in synovial membrane in rheumatoid arthritis // PLoS One. 2015. Vol. 10, N. 12. Р. e0145279. doi: 10.1371/journal.pone.0145279
  66. Han E.J., Hwang D., Cho C.S., et al. GREM1 is a key regulator of synoviocyte hyperplasia and invasiveness // J Rheumatol. 2016. Vol. 43, N. 3. Р. 474–485. doi: 10.3899/jrheum.150523
  67. Zhang B., Gu J., Wang Y., et al. TNF-α stimulated exosome derived from fibroblast-like synoviocytes isolated from rheumatoid arthritis patients promotes HUVEC migration, invasion and angiogenesis by targeting the miR-200a-3p/KLF6/VEGFA axis // Autoimmunity. 2023. Vol. 56, N. 1. Р. 2282939. doi: 10.1080/08916934.2023.2282939
  68. Liu J., Chen N. A 9 mRNAs-based diagnostic signature for rheumatoid arthritis by integrating bioinformatic analysis and machine-learning // J Orthop Surg Res. 2021. Vol. 16, N. 1. Р. 44. doi: 10.1186/s13018-020-02180-w
  69. Okada Y., Wu D., Trynka G., et al. Genetics of rheumatoid arthritis contributes to biology and drug discovery // Nature. 2014. Vol. 506, N. 7488. Р. 376–381. doi: 10.1038/nature12873
  70. Tai J., Wang L., Yan Z., Liu J. Single-cell sequencing and transcriptome analyses in the construction of a liquid-liquid phase separation-associated gene model for rheumatoid arthritis // Front Genet. 2023. Vol. 14. Р. 1210722. doi: 10.3389/fgene.2023.1210722
  71. Mishima S., Kashiwakura J.I., Toyoshima S., et al. Higher PGD2 production by synovial mast cells from rheumatoid arthritis patients compared with osteoarthritis patients via miR-199a-3p/prostaglandin synthetase 2 axis // Sci Rep. 2021. Vol. 11, N. 1. Р. 5738. doi: 10.1038/s41598-021-84963-7
  72. Xu L., Wang Z., Wang G. Screening of biomarkers associated with osteoarthritis aging genes and immune correlation studies // Int J Gen Med. 2024. Vol. 17. Р. 205–224. doi: 10.2147/IJGM.S447035
  73. Rao D.A., Gurish M.F., Marshall J.L., et al. Pathologically expanded peripheral T helper cell subset drives B cells in rheumatoid arthritis // Nature. 2017. Vol. 542, N. 7639. Р. 110–114. doi: 10.1038/nature20810
  74. Liu H., Pope R.M. The role of apoptosis in rheumatoid arthritis // Curr Opin Pharmacol. 2003. Vol. 3, N. 3. Р. 317–22. doi: 10.1016/s1471-4892(03)00037-7
  75. Maney N.J., Lemos H., Barron-Millar B., et al. Pim kinases as therapeutic targets in early rheumatoid arthritis // Arthritis Rheumatol. 2021. Vol. 73, N. 10. Р. 1820–1830. doi: 10.1002/art.41744
  76. Yang L., Chen Z., Guo H., et al. Extensive cytokine analysis in synovial fluid of osteoarthritis patients // Cytokine. 2021. Vol. 143. Р. 155546. doi: 10.1016/j.cyto.2021.155546
  77. Mousavi M.J., Shayesteh M.R.H., Jamalzehi S., et al. Association of the genetic polymorphisms in inhibiting and activating molecules of immune system with rheumatoid arthritis: A systematic review and meta-analysis // J Res Med Sci. 2021. Vol. 26. Р. 22. doi: 10.4103/jrms.JRMS_567_20
  78. Liu X., Ni S., Li C., et al. Circulating microRNA-23b as a new biomarker for rheumatoid arthritis // Gene. 2019. Vol. 712. Р. 143911. doi: 10.1016/j.gene.2019.06.001
  79. Coutinho de Almeida R., Ramos Y.F.M., Mahfouz A., et al. RNA sequencing data integration reveals an miRNA interactome of osteoarthritis cartilage // Ann Rheum Dis. 2019. Vol. 78, N. 2. Р. 270–277. doi: 10.1136/annrheumdis-2018-213882
  80. Wang X., Ning Y., Zhou B., et al. Integrated bioinformatics analysis of the osteoarthritis-associated microRNA expression signature // Mol Med Rep. 2018. Vol. 17, N. 1. Р. 1833–1838. doi: 10.3892/mmr.2017.8057
  81. Mohebi N., Damavandi E., Rostamian A.R., et al. Comparison of plasma levels of microRNA-155-5p, microRNA-210-3p, and microRNA-16-5p in rheumatoid arthritis patients with healthy controls in a case-control study // Iran J Allergy Asthma Immunol. 2023. Vol. 22, N. 4. Р. 354–365. doi: 10.18502/ijaai.v22i4.13608
  82. Yang L., Yang S., Ren C., et al. Deciphering the roles of miR-16-5p in malignant solid tumors // Biomed Pharmacother. 2022. Vol. 148. Р. 112703. doi: 10.1016/j.biopha.2022.112703
  83. Cheng Q., Chen X., Wu H., Du Y. Three hematologic/immune system-specific expressed genes are considered as the potential biomarkers for the diagnosis of early rheumatoid arthritis through bioinformatics analysis // J Transl Med. 2021. Vol. 19, N. 1. Р. 18. doi: 10.1186/s12967-020-02689-y
  84. Zeng Z., Li Y., Pan Y., et al. Cancer-derived exosomal miR-25-3p promotes pre-metastatic niche formation by inducing vascular permeability and angiogenesis // Nat Commun. 2018. Vol. 9, N. 1. Р. 5395. doi: 10.1038/s41467-018-07810-w
  85. Law Y.Y., Lee W.F., Hsu C.J., et al. miR-let-7c-5p and miR-149-5p inhibit proinflammatory cytokine production in osteoarthritis and rheumatoid arthritis synovial fibroblasts // Aging (Albany NY). 2021. Vol. 13, N. 13. Р. 17227–17236. doi: 10.18632/aging.203201
  86. Liu H., Yan L., Li X., et al. MicroRNA expression in osteoarthritis: A meta-analysis // Clin Exp Med. 2023. Vol. 23, N. 7. Р. 3737–3749. doi: 10.1007/s10238-023-01063-8
  87. Bae S.C., Lee Y.H. MiR-146a levels in rheumatoid arthritis and their correlation with disease activity: A meta-analysis // Int J Rheum Dis. 2018. Vol. 21, N. 7. Р. 1335–1342. doi: 10.1111/1756-185X.13338
  88. Zheng J., Wang Y., Hu J. Study of the shared gene signatures of polyarticular juvenile idiopathic arthritis and autoimmune uveitis // Front Immunol. 2023. Vol. 14. Р. 1048598. doi: 10.3389/fimmu.2023.1048598
  89. Tavasolian F., Hosseini A.Z., Soudi S., Naderi M. miRNA-146a improves immunomodulatory effects of MSC-derived exosomes in rheumatoid arthritis // Curr Gene Ther. 2020. Vol. 20, N. 4. Р. 297–312. doi: 10.2174/1566523220666200916120708
  90. Li Z., Zhao W., Wang M., et al. Role of microRNAs deregulation in initiation of rheumatoid arthritis: A retrospective observational study // Medicine (Baltimore). 2024. Vol. 103, N. 3. Р. e36595. doi: 10.1097/MD.0000000000036595
  91. Zhu J., Yang S., Qi Y., et al. Stem cell-homing hydrogel-based miR-29b-5p delivery promotes cartilage regeneration by suppressing senescence in an osteoarthritis rat model // Sci Adv. 2022. Vol. 8, N. 13. Р. eabk0011. doi: 10.1126/sciadv.abk0011
  92. Zhang Y., Li S., Jin P, et al. Dual functions of microRNA-17 in maintaining cartilage homeostasis and protection against osteoarthritis // Nat Commun. 2022. Vol. 13, N. 1. Р. 2447. doi: 10.1038/s41467-022-30119-8

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML

© Эко-Вектор, 2024

Creative Commons License

Эта статья доступна по лицензии
Creative Commons Attribution-NonCommercial-ShareAlike 4.0 International License.


СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: ЭЛ № ФС 77 - 75008 от 01.02.2019.