Пролиферативно-апоптотические особенности эпителия толстой кишки крыс после облучения электронами

Обложка


Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Актуальность. Одним из перспективных видов лучевой терапии злокачественных новообразований толстой кишки служит облучение электронами.

Цель. Морфологическая оценка апоптоза и пролиферации эпителия толстой кишки животных после локального фракционного облучения электронами в суммарной очаговой дозе 25 Гр.

Материал и методы. Использовали крыс породы Вистар, которые были поделены на две группы: первая — контрольная (n=10); вторая — опытная (n=20). Животных опытной группы подвергали локальному фракционному облучению электронами в суммарной очаговой дозе 25 Гр (во фракциях по 5 Гр на 1-й, 3-й, 5-й, 7-й, 9-й день облучения). Фрагменты толстой кишки исследовали методом световой микроскопии, проводили иммуногистохимические реакции с антителами к Ki-67 и Cas3. Толщину стенки и диаметр серозно-мукозной оболочки измеряли и рассчитывали в микрометрах. Оценку морфологических изменений осуществляли в баллах. Анализ результатов производили с использованием теста Колмогорова–Смирнова, t-теста Стьюдента, U-критерия Манна–Уитни и критерия Фишера.

Результаты. При макроскопическом исследовании толстой кишки крыс опытной группы выявлена гиперемия слизистой оболочки без выраженных деструктивных изменений. При микроскопическом исследовании зарегистрировано незначительное поражение слизистой оболочки толстой кишки по сравнению с контрольной группой, отмечена редукция бокаловидных клеток (63,17±1,87% против 21,64±1,37%, р=0,009). Количество каспаза-3-позитивных эпителиальных клеток увеличилось (28,7±8,2% против 14,5±3,9%, р=0,027). Пролиферативный индекс (Ki-67) в кишечных криптах толстой кишки после локального облучения электронами в суммарной очаговой дозе 25 Гр был снижен по сравнению с контрольной группой (11,14±6,23% против 19,45±5,12%, р=0,013).

Вывод. При локальном фракционном облучении электронами крыс в суммарной очаговой дозе 25 Гр в толстой кишке возникают слабые дегенеративные и дистрофические изменения эпителия, редукция бокаловидных клеток с сохранением регенераторного потенциала.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Сюзанна Вачагановна Саакян

Крымский федеральный университет им. В.И. Вернадского

Email: drsaakyan@icloud.com
ORCID iD: 0000-0001-8606-8716
SPIN-код: 7742-1420

асп., каф. гистологии, Медицинская академия им. С.И. Георгиевского

Россия, г. Симферополь

Александр Фатхович Мимуни

Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова (Сеченовский университет)

Email: a.mimuni@yandex.ru
ORCID iD: 0009-0004-7547-3790

студент

Россия, г. Москва

Эльза Бахты-Гереевна Каракаева

Крымский федеральный университет им. В.И. Вернадского

Email: kchr09@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-9833-3433
SPIN-код: 8221-3003

асп., каф. гистологии, Медицинская академия им. С.И. Георгиевского

Россия, г. Симферополь

Константин Кириллович Готовцев

Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова (Сеченовский университет)

Email: kostya.gotovtsev@gmail.com
ORCID iD: 0009-0008-6862-5900

студент

Россия, г. Москва

Григорий Александрович Демяшкин

Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова (Сеченовский университет)

Автор, ответственный за переписку.
Email: dr.dga@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-8447-2600
SPIN-код: 5157-0177

д-р мед. наук, зав. лаб., лаб. гистологии и иммуногистохимии

Россия, г. Москва

Список литературы

  1. Bentzen S. Preventing or reducing late side effects of radiation therapy: Radiobiology meets molecular pathology // Nat Rev Cancer. 2006. Vol. 6, N. 9. P. 702–713. doi: 10.1038/nrc1950
  2. Birgisson H., Påhlman L., Gunnarsson U., Glimelius B. Late adverse effects of radiation therapy for rectal cancer — a systematic overview // Acta Oncol. 2007. Vol. 46, N 4. P. 504–516. doi: 10.1080/02841860701348670
  3. Bertholet J., Knopf A., Eiben B., et al. Real-time intrafraction motion monitoring in external beam radiotherapy // Phys Med Biol. 2019. Vol. 64, N. 15. P. 15TR01. doi: 10.1088/1361-6560/ab2ba8
  4. Fiorino C., Valdagni R., Rancati T., Sanguineti G. Dose-volume effects for normal tissues in external radiotherapy: Pelvis // Radiother Oncol. 2009. Vol. 93, N. 2. P. 153–167. doi: 10.1016/j.radonc.2009.08.004
  5. Kim J., Jenrow K., Brown S. Mechanisms of radiation-induced normal tissue toxicity and implications for future clinical trials // Radiat Oncol J. 2014. Vol. 32, N. 3. P. 103–115. doi: 10.3857/roj.2014.32.3.103
  6. Жариков Г.М., Винокуров В.Л., Заикин Г.В. Лучевые повреждения прямой кишки и мочевого пузыря у больных раком шейки матки // Мир медицины. 2000. T. 2, № 7–8. С. 17–21.
  7. Andreyev H. Gastrointestinal problems after pelvic radiotherapy: The past, the present and the future // Clin Oncol. 2007. Vol. 19, N. 10. P. 790–799. doi: 10.1016/j.clon.2007.08.011
  8. Lu L., Li W., Chen L., et al. Radiation-induced intestinal damage: Latest molecular and clinical developments // Future Oncol. 2019. Vol. 15, N. 35. P. 4105–4118. doi: 10.2217/fon-2019-0416
  9. McBride W., Schaue D. Radiation-induced tissue damage and response // J Pathol. 2020. Vol. 250, N. 5. P. 647–655. doi: 10.1002/path.5389
  10. Ahmed M., Ahmed R. Radiation in gastroenterology // Gastroenterol Res. 2022. Vol. 15, N. 6. P. 285–296. doi: 10.14740/gr1567
  11. Kam W., Banatia R. Effects of ionizing radiation on mitochondria // Free Radic Biol Med. 2013. Vol. 65. P. 607–619. doi: 10.1016/j.freeradbiomed.2013.07.024
  12. Федянин М.Ю., Артамонова Е.В., Барсуков Ю.А., и др. Практические рекомендации по лекарственному лечению рака прямой кишки. Практические рекомендации // Злокачественные опухоли. 2020. Т. 10, № 3s2-1. С. 391–438. doi: 10.18027/2224-5057-2020-10-3s2-23
  13. Kasprzak A. Prognostic biomarkers of cell proliferation in colorectal cancer (CRC): From immunohistochemistry to molecular biology techniques // Cancers. 2023. Vol. 15, N. 18. P. 4570. doi: 10.3390/cancers15184570
  14. Olsson M., Zhivotovsky B. Caspases and cancer // Cell Death Differ. 2011. Vol. 18, N. 9. P. 1441–1449. doi: 10.1038/cdd.2011.30
  15. Kim C., Yang V., Bialkowska A. The role of intestinal stem cells in epithelial regeneration following radiation-induced gut injury // Curr Stem Cell Rep. 2017. Vol. 3, N. 4. P. 320–332. doi: 10.1007/s40778-017-0103-7
  16. Figueiredo J., Passarelli M., Wei W., et al. Proliferation, apoptosis and their regulatory protein expression in colorectal adenomas and serrated lesions // PLoS ONE. 2021. Vol. 16, N. 11. P. e0258878. doi: 10.1371/journal.pone.0258878
  17. Andrés-Sánchez N., Fisher D., Krasinska L. Physiological functions and roles in cancer of the proliferation marker Ki-67 // J Cell Sci. 2022. Vol. 135, N. 11. Р. jcs258932. doi: 10.1242/jcs.258932
  18. Gu Q., Jiao S., Duan K., et al. The BAD-BAX-caspase-3 cascade modulates synaptic vesicle pools via autophagy // J Neurosci Off J Soc Neurosci. 2021. Vol. 41, N. 6. P. 1174–1190. doi: 10.1523/JNEUROSCI.0969-20.2020
  19. Kanth P., Rajan T. Chromogranin A and Ki67 marker in normal colon, serrated polyp and colorectal tubular adenoma // Off J Am Coll Gastroenterol ACG. 2011. Vol. 10, N. 6. P. 562. doi: 10.14309/00000434-201110002-01470

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML

© Эко-Вектор, 2024


СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: ЭЛ № ФС 77 - 75008 от 01.02.2019.