Influence of toxoplasma gondii antigens on features of immune status at prenatal and early postnatal periods: experimental study

Cover Page


Cite item

Full Text

Abstract

Aim. To detect the features of immune status at prenatal and early postnatal periods under the influence of Toxoplasma gondii antigens. Methods. The experimental study was performed on Wistar white rats, who were the offspring of the female rats who were sensitized by T. gondii corpuscular antigen during the III trimester of pregnancy - group 1 (n=96) and on animals who were administered T. gondii corpuscular antigen at firs day of life - group 2 (n=103). Control group consisted of intact rats. Common blood test, levels of antibody-forming cells and CD3+ cells were assessed at 60 day after birth. Results. Neutrophil blood count was 1.9 times higher in the group 1 rats compared to group 2. Eosinophil blood count was 1.4 times lower in the group 1 compared to control group (р=0.01), and 2 times lower in the group 2 compared to control group (р=0.002). At the same time, lymphocyte count was comparable in the group 1 rats and control group, while it was 1.4 times lower in the group 2 compared to control group (р=0.04). Together with that, there was a reduction of CD3+ cells and antibody-forming cells in blood and spleen, which was more marked in the 2nd group. Lymphoadenopathy, thymus dysgenesia, reduced blood and spleen T-cells levels, low humeral immunity were found in Wistar white rats, who were the offspring of the female rats who were sensitized by T. gondii corpuscular antigen during the III trimester of pregnancy. Conclusion. The influence T. gondii corpuscular antigen on rats during perinatal period results in secondary immunodeficiency, persisting at 60 day of life.

Full Text

Токсоплазмоз - одна из причин врождённых пороков развития, формирования иммунологической патологии в раннем и отдалённом периодах детства [4]. Развитие токсоплазмоза чаще всего происходит на фоне иммуносупрессии и определяется состоянием Т-клеточного звена иммунитета [1]. К настоящему времени существуют данные о преобладании типа Th1 иммунного ответа при развитии токсоплазмоза [7]. Механизм такой поляризации тесно связан с синтезом интерлейкина-12, обусловленным активацией эндосомальных рецепторов TLR-11 и -12 в дендритных клетках [9]. Подобный процесс обеспечивает активацию клеток CD4+ и продукцию ими интерферона γ, необходимого для NO-зависимого киллинга Toxoplasma Gondii (T. gondii) в паразитофорных везикулах макрофагов [9]. Важная роль в синтезе интерферона γ принадлежит также нейтрофильным лейкоцитам, однако механизм стимуляции его образования до сих пор остаётся невыясненным [8, 9]. У детей, рождённых от женщин с токсоплазмозом, регистрируют сочетанные иммунные нарушения в виде снижения количества фагоцитирующих клеток, уменьшения показателей Т-клеточного звена иммунитета с недостаточностью абсолютного содержания клеток CD3+ и CD4+ [1]. Однако связь между пренатальным и ранним постнатальным воздействием антигенов (АГ) T. gondii на органы иммунной системы плода и новорождённого и их функционированием в постнатальном периоде изучены недостаточно хорошо. Цель исследования - определить особенности иммунного статуса в пренатальном и раннем постнатальном периодах при воздействии АГ T. gondii. Экспериментальное исследование проведено на потомстве белых крыс линии Wistar, составившем две исследуемые и одну контрольную группы. В каждой группе было проведено две серии эксперимента. В исследуемую первую группу были включены крысята (n=52), рождённые от самок, которым в III триместре беременности был введён корпускулярный АГ T. gondii (ГУ НИИ эпидемиологии и микробиологии им. Н.Ф. Гамалеи, Москва) в дозе 1×107 клеток внутрибрюшинно (в/б). Во второй группе АГ T. gondii в дозе 1×105 клеток был введён новорождённым крысятам в возрасте 1 день (n=55). В группу контроля были включены интактные животные, сопоставимые по полу и возрасту (n=62). Во второй серии эксперимента за 5 сут до эвтаназии животным из исследуемых и контрольной групп были введены эритроциты барана в количестве 3×109 клеток (количество животных в первой, второй и контрольной группах составило 44, 48 и 55 соответственно). Эксперимент выполняли с соблюдением принципов гуманности, изложенных в директивах Европейского сообщества (86/609/ЕЕС). Взятие биологического материала (кровь, вилочковая железа, селезёнка, брыжеечные лимфатические узлы) проводили на 60-е сутки после рождения животных. Гематологический анализ выполняли с использованием анализатора Excell-22 (США). Число клеток CD3+ в крови и стандартной взвеси спленоцитов подсчитывали на проточном цитометре (Cytomics FC500, Beckman Coulter, США). Количество антителообразующих клеток, секретирующих иммуноглобулин М к эритроцитам барана, в селезёнке определяли на пике иммунного ответа через 5 дней после иммунизации крыс при помощи прямого метода локального гемолиза по Cunningham [2]. Статистическую оценку осуществляли с помощью параметрических и непараметрических методов. Различия оценивали как значимые при p <0,05. В первой серии эксперимента было показано, что потомство крыс, перинатальное развитие которых происходило в условиях введения АГ T. gondii, оказалось менее жизнеспособным, чем в группе контроля: в течение 3 сут после рождения в первой и второй группах погибли 5 и 6 животных соответственно. Во второй серии эксперимента также наблюдалась гибель части потомства: 3 животных в первой группе и 1 животное во второй группе погибли на 1-3-и сутки. Вероятно, гибель животных связана со срывом функциональных возможностей незрелой иммунной системы в результате воздействия высоких доз АГ. Как у животных, рождённых от сенсибилизированных АГ T. gondii самок, так и у крысят, которым вводили АГ после рождения, в 2-месячном возрасте при ревизии брюшной полости было выявлено увеличение брыжеечных лимфатических узлов, образующих конгломераты в виде тяжей, расположенных вдоль кишечника. Селезёнка животных в первой и второй сериях экспериментов имела зернистую структуру, визуализировались фолликулы. Масса вилочковой железы у потомства сенcибилизированных самок была снижена (173,9±9,8 против 244,3±11,7 мг в группе контроля, р=0,002), а у крысят, которым АГ T. gondii был введён после рождения, не разнилась с контролем. Введение АГ T. gondii экспериментальным животным как в пренатальном, так и в раннем постнатальном периодах сопровождалось отсроченными изменениями показателей системы иммунитета 2-месячных крыс (табл. 1). Количество лейкоцитов у потомства крыс, развитие которых происходило в условиях внутриутробного действия АГ T. gondii, было в 1,4 раза выше, чем в группе контроля (р=0,009). Аналогичные отсроченные изменения зарегистрированы и у крысят, которым вводили АГ T. gondii после рождения. Количество лейкоцитов у них превышало значения в группе контроля в 1,5 раза (р=0,04), что было обусловлено 2,2-кратным увеличением количества нейтрофилов (р=0,001). Количество последних в крови крысят из второй группы было в 1,9 раза выше, чем в первой группе. При этом число моноцитов и базофилов в обеих экспериментальных группах соответствовало значениям в группе контроля, количество эозинофилов было в 1,4 раза (первая группа, р=0,01) и 2 раза (вторая группа, р=0,002) ниже в сравнении с группой контроля. Уменьшение содержания эозинофилов в крови отражает снижение резистентности организма к воздействию факторов внешней среды, что в сочетании с лейкоцитозом, обусловленным повышением количества нейтрофилов, является важным признаком активного воспаления. Полученные результаты согласуются с данными недавних исследований, показавших значительную роль нейтрофилов в синтезе интерферона γ, необходимого для реализации врождённого иммунитета к T. gondii [9]. Количество лимфоцитов в первой группе было сопоставимо со значениями, полученными в группе контроля. В отличие от этого при введении АГ T. gondii после рождения во второй группе регистрировалась относительная лимфопения с уменьшением показателей в 1,4 раза (р=0,04) по сравнению с группой контроля и в 1,3 раза (р=0,04) по сравнению с первой группой. При оценке популяции Т-клеток в крови и селезёнке у крыс из первой группы было выявлено уменьшение количества лимфоцитов CD3+ в крови на 20,1% (р=0,003) и в селезёнке на 22,6% (р=0,0004, см. табл. 1) в сравнении с группой контроля. При исследовании иммунологических показателей у животных второй группы отмечено уменьшение количества Т-лимфоцитов крови на 13,3% (р=0,01) и числа Т-лимфоцитов селезёнки на 14,8% (р=0,043) по сравнению с контрольными величинами. Следует отметить, что снижение количества лимфоцитов CD3+ в крови и селезёнке было более значимо в первой группе - при внутриутробном действии АГ T. gondii, составляя в крови 92,2%, в селезёнке - 90,8% показателей во второй группе. При оценке влияния АГ T. gondii, введённого в пренатальном и раннем постнатальном периодах, на гуморальный иммунный ответ к эритроцитам барана обнаружена депрессия специфического антителообразования, что проявлялось снижением числа антителообразующих клеток на пике первичного иммунного ответа у крысят первой группы на 27,9% (р=0,03). Количество антителообразующих клеток у крысят второй группы было снижено на 19,6% (р=0,04). Последствия действия АГ T. gondii на иммунную систему плода и новорождённого зарегистрированы у крысят на 60-е сутки постнатального онтогенеза. Они проявлялись лимфаденопатией, дисплазией вилочковой железы, структурными нарушениями селезёнки и уменьшением количества Т-лимфоцитов в ней, Т-лимфопенией, дисфункцией гуморального звена иммунитета с недостаточной генерацией антителообразующих клеток в ответ на тимусзависимые АГ. Аналогичные изменения иммунного гомеостаза (атрофия вилочковой железы, сочетанные иммунные нарушения в виде снижения количества фагоцитирующих клеток, уменьшения показателей Т-клеточного звена иммунитета с недостаточностью абсолютного содержания клеток CD3+ и CD4+) выявлены у детей, рождённых от женщин с токсоплазменной инфекцией [1]. Отсроченные нарушения неспецифических факторов защиты и адаптивного иммунитета у крысят при введении им АГ T. gondii в первые сутки после рождения реализовались нейтрофильным лейкоцитозом, эозинопенией, лимфопенией, депрессией клеточного и гуморального звеньев иммунитета. Следует отметить отсутствие дисплазии вилочковой железы у крысят при воздействии АГ T. gondii в пренатальном периоде, а также менее выраженное, с различием 7-9%, снижение количества Т-лимфоцитов в крови и селезёнке. Выявленные нарушения клеточного и гуморального звеньев иммунитета, сохраняющиеся длительное время после рождения, можно охарактеризовать как стадию декомпенсации адаптационных реакций иммунной системы и развитие вторичного иммунодефицитного состояния у крысят, подвергшихся действию АГ T. gondii как в пренатальном, так и в раннем постнатальном периодах. Подобные сдвиги в целом являются стереотипным ответом на введение АГ, проявляющимся поляризацией иммунного ответа по Th1-типу и завершающимся развитием иммунологической толерантности к АГ у плода [5] и новорождённого [6]. Обнаруженные нами отличия морфофункциональных характеристик иммунной системы у потомства крыс при воздействии АГ T. gondii в пренатальном и раннем постнатальном периодах, вероятно, связаны как с разной степенью зрелости иммунитета плода и новорождённого, так и с особенностями влияния данного АГ [3]. ВЫВОДЫ 1. Последствия действия антигена T. gondii на плод и новорождённую крысу проявляются вторичным иммунодефицитным состоянием, сохраняющимся на 60-е сутки онтогенеза. 2. Нарушения иммунитета у потомства крыс, рождённого от сенсибилизированных антигеном T. gondii в III триместре беременности самок, характеризуются лимфаденопатией, дисплазией вилочковой железы, уменьшением количества Т-лимфоцитов в селезёнке и крови, снижением гуморального иммунитета. 3. При введении антигена T. gondii в раннем постнатальном периоде отдалённые последствия его действия проявляются нейтрофильным лейкоцитозом, эозинопенией, лимфопенией, а также менее выраженными, чем при введении антигена T. gondii в пренатальном периоде, проявлениями депрессии клеточного и гуморального звеньев иммунитета. Таблица 1 Показатели системы крови и иммунитета у потомства крыс после ведения антигена T. gondii в пренатальном и раннем постнатальном периодах онтогенеза Показатель Группа контроля Экспериментальные группы Первая группа Вторая группа Лейкоциты, ×109/л 5,3±0,4 7,5±0,3* 7,7±0,4* Нейтрофилы, % 19,7±1,4 22,8±3,3 42,9±3,3*,** Моноциты, % 6,2 (4,2; 7,2) 5,4 (5,1; 7,2) 5,6 (5,2; 7,4) Эозинофилы, % 2,4±0,2 1,7±0,1* 1,2±0,1*,** Базофилы, % 1,7±0,2 2,3±0,8 2,2±0,4 Лимфоциты, % 68,9±1,8 65,3±2,0 49,7±2,4*,** Т-лимфоциты (CD3+) в крови, % 95,9±0,8 76,6±2,0* 83,1±0,6*,** Т-лимфоциты (CD3+) в селезёнке, % 81,3±1,9 62,9±2,9* 69,3±0,9*,** Антителообразующие клетки, ×103 58,1±3,2 41,9±2,9* 46,7±2,3* Примечание: M±m - для нормального распределения; Ме (1-й; 3-й квартили) - для распределения, отличающегося от нормального; статистическая значимость различий (p <0,05): *по отношению к группе контроля, **между экспериментальными группами.
×

About the authors

T F Sokolova

Omsk State Medical Academy, Omsk, Russia

D G Novikov

Omsk State Medical Academy, Omsk, Russia

Email: novikov.dm.omsk@gmail.com

A V Indutny

Omsk State Medical Academy, Omsk, Russia

References

  1. Барычева Л.Ю. Клинические и иммунологические особенности врождённого токсоплазмоза // Рос. вестн. перинатол. и педиатр. - 2004. - Т. 29, №2. - С. 55-59.
  2. Лимфоциты: методы. Пер. с англ. / Под ред. Дж. Клауса. - М.: Мир, 1990. - 393 с.
  3. Титов Л.П., Кирильчик Е.Ю., Канашкова Т.А. Особенности строения, развития и функционирования иммунной системы детского организма // Мед. новости. - 2009. - №5. - С. 7-16.
  4. Chaudhry S.A., Gad N., Koren G. Toxoplasmosis and pregnancy // Can. Fam. Physician. - 2014. - Vol. 60, N 4. - Р. 334-336.
  5. Dietert R.R., Piepenbrink M.S. The managed immune system: protecting the womb to delay the tomb // Hum. Exp.Toxicol. - 2008. - Vol. 27, N 2. - Р. 129-134.
  6. Lisciandro J.G., van den Biggelaar A.H. Neonatal immune function and inflammatory illnesses in later life: lessons to be learnt from the developing world? // Clin. Exp. Allergy. - 2010. - Vol. 40, N 12. - Р. 1719-1731.
  7. Raetz M., Hwang S.H., Wilhelm C.L. et al. Innate immunity to Toxoplasma gondii infection // Nat. Immunol. - 2013. - Vol. 14, N 2. - Р. 136-142.
  8. Sturge C.R. TLR-independent neutrophil-derived IFNγ is important for host resistance to intracellular pathogens // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. - 2013. - Vol. 110. - Р. 10 711-10 716.
  9. Yarovinsky F. Innate immunity to Toxoplasma gondii infection // Nat. Rev. Immunol. - 2014. Vol. 14, N 2. - Р. 109-121.

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML

© 2014 Sokolova T.F., Novikov D.G., Indutny A.V.

Creative Commons License

This work is licensed
under a Creative Commons Attribution-NonCommercial-ShareAlike 4.0 International License.





This website uses cookies

You consent to our cookies if you continue to use our website.

About Cookies