Влияние соматотропного гормона на углеводный обмен
- Авторы: Балаболкин М.И.
- Выпуск: Том 55, № 4 (1974)
- Страницы: 63-66
- Раздел: Статьи
- Статья получена: 10.03.2021
- Статья одобрена: 10.03.2021
- Статья опубликована: 31.07.1974
- URL: https://kazanmedjournal.ru/kazanmedj/article/view/63047
- DOI: https://doi.org/10.17816/kazmj63047
- ID: 63047
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Соматотропный гормон (гормон роста, СТГ) принимает участие в регуляции белкового, углеводного, жирового и минерального обмена в организме.
Ключевые слова
Полный текст
Соматотропный гормон (гормон роста, СТГ) принимает участие в регуляции белкового, углеводного, жирового и минерального обмена в организме.
В отношении углеводного обмена гормон роста является потенцирующим диабетогенным агентом, ухудшающим толерантность к глюкозе и уменьшающим распределение и утилизацию глюкозы на периферии. После гипофизэктомии в эксперименте отмечается повышение чувствительности к инсулину, а у животных с панкреатическим диабетом — смягчение его симптомов; у панкреатэктомированных животных удаление гипофиза приводит к уменьшению глюкозурии и кетонурии и к сдвигу в положительную сторону ранее отрицательного азотистого баланса.
Гистологическими исследованиями обнаружено, что у интактных собак после введения гормона роста возникает дегрануляция бета-клеток островного аппарата поджелудочной железы, предшествующая развитию клинических признаков диабета.
Дегрануляция, гидропическая вакуолизация бета-клеток, как правило, сопровождаются уменьшением секреции инсулина [7].
Люкенс и Доэн (1942) показали, что перерождение бета-клеточного аппарата поджелудочной железы при введении экстракта передней доли гипофиза наступает не непосредственно под действием экстракта, а опосредованно — через повышение функции бета-клеток в ответ на гипергликемию. Систематическое введение инсулина препятствовало появлению дегенерации островковой ткани поджелудочной железы.
У крыс с опухолями, секретирующими СТГ, отмечается увеличение количества и размеров бета-клеток поджелудочной железы с повышением содержания в них инсулина [28]. У таких животных, находящихся на нормальном пищевом рационе, содержание инсулина в сыворотке крови было нормальным, и ни толбутамид, ни глюкоза не вызывали увеличения секреции инсулина, в то время как у голодающих животных уровень инсулина в сыворотке крови натощак был повышен, при введении глюкозы или толбутамида отмечалось дальнейшее повышение уровня инсулина в сыворотке крови. Аналогичные данные приводят Мартин и др. (1968): они выявили у крыс с СТГ-секретирующими опухолями повышенную концентрацию инсулина в сыворотке крови и увеличение секреции инсулина в ответ на нагрузку глюкозой. Причем инвитро панкреатическая секреция инсулина у таких животных была значительно выше, чем у контрольных животных. Мартин и Акеблум (1968) считают, что гормон роста влияет непосредственно на островковую ткань поджелудочной железы.
В некоторых случаях повышенное образование инсулина под влиянием гормона роста не приводит к гипогликемии в связи с тем, что одновременно наблюдается стимуляция секреции глюкагона, который компенсирует гипогликемический эффект инсулина [19, 37].
Имеются многочисленные доказательства стимулирующего влияния соматотропина на секрецию инсулина. Так, подкожное введение гормона роста подопытным овцам (гипофизэктомированным или нормальным) вызывало у них выраженное повышение содержания инсулина в плазме крови [4, 34].
Наряду с этим установлено [21, 36], что соматотропин не только стимулирует выделение инсулина в кровь, но и увеличивает синтез инсулина поджелудочной железой, причем наиболее ярко это действие СТГ проявляется на фоне повышенных концентраций глюкозы.
Следует указать, что инкубация изолированной поджелудочной железы с мечеными аминокислотами при низком содержании глюкозы (50 мг%) вызывала стимуляцию включения меченых аминокислот в иммунореактивный инсулин, в то время как высокое содержание в инкубационной среде глюкозы (250 мг%), свиного СТГ или двух этих веществ вместе уменьшало скорость синтеза инсулина, несмотря на увеличение его секреции [36].
Гудмен (1965, 1968) в опытах с изолированной жировой тканью гипофизэктомированных или нормальных крыс, получавших богатую углеводами диету, констатировал, что гипогликемическое влияние соматотропина связано с повышенной проницаемостью мембраны жировых клеток для сахаров, которая уменьшалась через 1 час после начала инкубации, а к 3,5 часам наступало угнетение поглощения углеводов. Введение гормона роста гипофизэктомированным крысам хотя бы за 3 часа до забоя ухудшало поглощение глюкозы диафрагмой крыс.
СТГ оказывает двухфазное влияние на концентрацию глюкозы в крови. В течение первых тридцати минут после введения гормона роста наблюдается снижение сахара крови, и этот «инсулиноподобный» эффект не сопровождается нарастанием инсулина в сыворотке крови [9]. Увеличение утилизации глюкозы под влиянием гормона роста может быть вторичным вследствие его адипокинетического свойства [35]. Липолиз, вызываемый СТГ, сопровождается внутриклеточным повышением концентрации глицерина и свободных жирных кислот с одновременным ускорением синтеза триглицеридов. В то же время для синтеза триглицеридов требуются триозофосфаты, образуемые из глюкозы посредством гликолитического цикла. Эта внезапная потребность в глюкозе и использование ее через гликолитический путь обмена проявляются снижением уровня глюкозы в сыворотке крови.
С другой стороны, «инсулиноподобный эффект» СТГ может быть вызван временным ухудшением распада инсулина. Малер и Сабо (1969) показали, что скорость распада инсулина в почках значительно уменьшается у крыс при введении им гормона роста. Причем ткань почки и диафрагма этих животных очень чувствительны к инсулину.
Следует подчеркнуть, что инсулиноподобный эффект СТГ проявляется лишь у интактных или у остро панкреатэктомированных животных. Введение гормона роста хронически панкреатэктомированным животным не приводит к снижению сахара крови.
При клиническом применении гормона роста через 15—40 мин. после введения препарата отмечается снижение сахара крови до 54 мг% [8]. У лиц с недостаточностью секреции СТГ определяется увеличение чувствительности к инсулину и уменьшение секреции инсулина [23, 24]. При лечении таких больных гормоном роста наблюдалось повышение уровня сахара крови натощак и нормализация чувствительности к экзогенному инсулину [29].
Голд и соавт. (1968) при лечении 15 гипопитуитарных больных гормоном роста у 8 из них обнаружили ухудшение толерантности к глюкозе и снижение секреции инсулина в ответ на введение глюкозы.
С другой стороны, имеются сообщения о том, что соматотропин в первые часы после введения в организм не оказывает никакого влияния на углеводный обмен [12, 14]. При лечении гипофизарных карликов гормоном роста Н. А. Зарубина (1965) лишь у некоторых из них выявила через 4 часа после введения гормона повышение содержания сахара в крови. Изменения в углеводном обмене были нестойкими.
На основании ответной реакции к инсулину Луфт и Церази (1968) и Луфт (1968) различают две группы больных акромегалией. Первую группу (около 75%) составляют больные с нормальной толерантностью к глюкозе и гиперсекрецией инсулина. Остальные 25% больных (вторая группа) имеют пониженную толерантность к глюкозе и относительную гипосекрецию инсулина. Последняя группа может представлять лиц с генетической предрасположенностью к диабету и ограниченными резервами функциональной активности бета-клеток поджелудочной железы. Гормон роста, снижая утилизацию глюкозы периферическими тканями, способствует гипергликемии и нарушению углеводного обмена. Это снижение утилизации глюкозы периферическими тканями связывается с повышенным образованием беталипопротеинового комплекса, который в свою очередь блокирует гексокиназу и приводит к указанным нарушениям [2, 5, 33].
Ряд авторов считает, что диабетогенное действие гормона роста связано со стимуляцией альфа-клеток островков Лангерганса, продуцирующих гликогенолитический фактор — глюкагон [6, 37b].
Изменение концентрации свободных жирных кислот в крови может быть одной из причин нарушения толерантности к глюкозе, наблюдаемого при введении СТГ [13]. При изучении влияния человеческого гормона роста и 2-метилпирозол-З-карбоксиловой кислоты, которая является ингибитором липолиза, на толерантность к глюкозе, установлено, что введение соматотропина вызывает ухудшение толерантности к глюкозе и увеличение уровня свободных жирных кислот; применение ингибитора липолиза способствует уменьшению концентрации свободных жирных кислот и улучшению толерантности к глюкозе (статистически недостоверному). В то же время при одновременном назначении СТГ ингибитор липолиза приводил к значительному улучшению (статистически достоверному) толерантности к глюкозе. Эти данные показывают, что повышенный уровень свободных жирных кислот в крови влияет на ухудшение толерантности к глюкозе. Но повышение содержания свободных жирных кислот является лишь одним из дополнительных факторов, приводящих к нарушению углеводного обмена.
В отношении влияния гормона роста на углеводный обмен Вайль (1965) выделяет три фазы: а) инсулиноподобную фазу, которая, вероятнее всего, проявляется через адипокинетические свойства гормона роста и характеризуется снижением глюкозы крови; б) фазу накопления продуктов обмена свободных жирных кислот, метаболизированных на периферии и включающихся затем в цикл трикарбоновых кислот, что приводит к угнетению прохождения С-2 фрагментов через гликолитический цикл с последующим увеличением пирувата. Этот метаболит в свою очередь угнетает гликолитический путь обмена, стимулируя синтез гликогена. В этот период отмечается увеличение глюкозо-6-фосфата и угнетение фосфориляции глюкозы с последующим накоплением глюкозы в крови и тканях, снижение поглощения глюкозы и ухудшение толерантности к глюкозе; в) фазу, характеризующуюся усилением влияния процессов второй фазы с усилением секреции инсулина. Если функция бета-клеток недостаточна и секреция инсулина истощена, то развивается гипергликемия, кетонемия и другие обменные нарушения.
По данным Цирлера и Рабиновича (1963), внутриартериальная инфузия инсулина приводила к увеличению поглощения глюкозы и калия мышцами и жировой тканью и уменьшала освобождение свободных жирных кислот из жировых депо. В то же время инфузия СТГ уменьшала поглощение глюкозы, увеличивала освобождение свободных жирных кислот из жировой ткани при одновременном увеличении поглощения их мышцами. Соматотропин человека препятствовал влиянию инсулина, который вводили вместе с СТГ, на обмен глюкозы, но действие инсулина на обмен жирных кислот не ухудшалось. Продолжая эти исследования, Рабинович и соавт. (1966, 1968) определили три фазы в секреции инсулина и гормона роста в ответ на прием пищи: а) в течение 2 часов после приема пищи увеличивается секреция инсулина и уменьшается освобождение гормона роста; повышается поглощение глюкозы, гликоген откладывается в мышцах с одновременным синтезом жира и триглицеридов; б) в период от 2 до 4 часов после приема пищи секреция инсулина уменьшается, а секреция СТГ увеличивается, и оба гормона синергически стимулируют белковый синтез; СТГ предупреждает избыточное отложение глюкозы, как бы сохраняя некоторые запасы ее для обмена в нервной ткани; в) через 4 часа после приема пищи увеличивается секреция СТГ, а секреция инсулина уменьшается по сравнению с базальным уровнем СТГ, что приводит к снижению поглощения глюкозы и мобилизации жирных кислот для расходования энергии.
У нормальных людей утилизация орально принятой глюкозы уменьшается при гипогликемии, вызванной введением инсулина [26], с одновременным снижением секреции инсулина и увеличением секреции СТГ. Эти данные наблюдались независимо от применения ингибитора синтеза кортизола (метапирона) или альфаадренергического блокатора в период проведения исследования. Когда же для предупреждения гипогликемии вводили глюкозу, толерантность к глюкозе сохранялась в норме, секреция инсулина увеличивалась, а секреция СТГ уменьшалась.
Следует также отметить, что соматотропный гормон повышает активность инсулиназы печени, которая, инактивируя в большем количестве, чем в норме, инсулин, поступающий в печень из поджелудочной железы, приводит к появлению инсулиновой недостаточности [3, 27].
При введении гормона роста накопление его происходит в основном в поджелудочной железе, надпочечниках, печени, вилочковой железе и почках, причем уже через 1 час гормон роста обнаруживается в поджелудочной железе. Под влиянием соматотропного гормона наблюдается увеличение митотической активности в альфа-клетках [32]. Как показали исследования Месс и Гемори (1963), наиболее интенсивно соматотропин включается в купферовские клетки печени и извитые канальцы почек. Менее интенсивное поглощение гормона происходит в гипофизе, надпочечниках, гипоталамусе, и лишь незначительная часть гормона роста поглощается поджелудочной железой.
Таким образом, соматотропный гормон принимает участие в регуляции углеводного обмена. Его воздействие на углеводный обмен различно и зависит от функционального состояния других эндокринных желез. Диабетогенное действие гормона роста складывается из его влияния на различные механизмы, суммарным результатом чего является возникновение вначале относительной, а затем абсолютной инсулиновой недостаточности в организме с проявлением ее в виде сахарного диабета. От компенсаторных возможностей поджелудочной железы зависит время развития расстройства углеводного обмена. В связи с этим гормон роста не может рассматриваться как первичный диабетогенный фактор. Вероятнее всего, СТГ является дополнительным или разрешающим фактором, наличие которого переводит «скрытое — компенсируемое» нарушение углеводного обмена в патологию — сахарный диабет.
Об авторах
М. И. Балаболкин
Автор, ответственный за переписку.
Email: info@eco-vector.com
Доктор медицинских наук
РоссияСписок литературы
- Зарубина Н. А. Пробл. эндокринол. и гормонотер., 1965, 11, 2
- Ильин В. С. Вопр. мед. химии, т. 12, 13
- Смирнов Н. П. Бюлл. экспер. биол. и мед., 1961, 5
- Basset J. М. Wallace A. L. С. Metabolism, 1966, 15, 10. 933.
- Bornstein J. J. Biol, chem., 1953, 205, 11, 513.
- Bornstein J. a. o. Nature, 1951, 24, 168, 903.
- Campbell J. In: The hypophyseal Growth Hormone, Nature and Action. NV, 1955, 270.
- Crawford J. D., Soyka L. F. Practitioner, 1965, 195, 1168, 550.
- Frohman L. A. J. clin. Endocr., 1967, 27, 4, 561.
- Gold H. a. o. Metabolism, 1968, 17, 1968
- Goodman H. M. a) Endocrinology, 1965, 76, 6, 1134; b) Ann. N.Y. Acad. Sei., 1968, 148, 2, 419
- Henneman D. H., Henneman F. H. J. clin. Inves., 1960, 39, 8, 1239.
- Hollobaugh S. L. a. o. Metabolism, 1968, 17, 458.
- Kolanowski J. Endocrinol. Polska, 1965, 16, 3, 283.
- Luckens F. D. W., Dohan F. C. Endocrinologe, 1942, 30, 175.
- Luft R. New Eng. J. Med., 1968, 279, 1086.
- Luft R., Cerasi E. In: Growth Hormone. Ed. by Pe cille and Muller, 1968, 373.
- Mahler R. J., Szabo O. Diabetes, 1969, 18, 550.
- Mans J. G., Boda J. U. Endocrinology, 1965, 76, 6, 1109.
- Martin J. M., Akerblom M. R., Diabetes, 1968, 17, suppl. 1, 308.
- Martin J. M., Gagliardino J. J. Nature, 1967, 213, 5076, 630.
- Martin J. M. a. o. Diabetes, 1968, 17, 661.
- Merimee T. J. a. o. Ibid., 1967, 16, 478.
- Merimее T. J. a. o. Metabolism, 1968, 17, 1005.
- Mess B., Hamori J. Acta histochem., 1965, 20, 1—4, 143.
- Mintz D. H. a. o. Am J. Med., 1968, 45, 187.
- Mirsky J. A. a. o. Endocrinology, 1959,64,5, 766.
- PeakeG.T. a. o. Diabetes, 1969, 18, 619.
- Prader A. a. o. Acta endocr., 1968, 57, 129.
- Rabinowitz D. a. o. Lancet, 1966, 2, 454.
- Rabinowitz D. a. o. In: Growth Hormone. Ed. by Pecide and Muller, 1968, 105.
- Sonenberg M., Money W. L. In: Rec. Progr.Horm.Res.,1955, 11, 43.
- Walker B. G.,Rao S. Biochem. J., 1964, 90, 2, 360.
- Wallace A. LC., BassetJ. M.Metabolism, 1966, 15, 2, 95.
- Weil R. Acta endocr., 1965, Suppl. 98, 1.
- Whitney J. E. a. o.Proc.Soc.exp. Biol. Med., 1968, 128, 2, 488
- Young F. D. a) Rec. Progr. Horm.Res., 1953, 8, 417 ; b)Endocrinology,1963,73, 5, 654.
- Zeirler K. L., Rabinowitz D. Medicine, 1963, 42, 385.
Дополнительные файлы
