Экспериментальное испытание хлорамина для лечения инфицированных ран

Аннотация

Хлорамин представляет собой белый кристаллический порошок — препарат пара-талуолсульфон-хлорамин натрия. Он легко растворяется в воде. Раствор имеет запах камфоры. Дезинфицирующее действие его проявляется при растворении в воде, при этом отщепляется кислород с выделением гипохлорита натрия. Хлорамин при подкислении его соляной кислотой выделяет около 25% действующего хлора.

Полный текст

Растворы хлорамина рекомендуют сохранять в склянках темного стекла с притертой пробкой.

Бактерицидные свойства хлорамина изучались рядом авторов. Последние путем различных методов исследований выявили пригодность этого препарата как дезинфицирующего средства. Так, Дольд, Зеликман, Дитхорн и др. проводили опыты дезинфекции рук и испражнений, зараженных тифозными и паратифозными бациллами. В Дрезденской дезинфекционной городской камере введено, как правила

употребление неочищенного хлорамина в качестве дезинфекционного средства, причем для дезинфекции помещений и вещей при туберкулезе и оспе применяется 1% раствор, при холере 2—5% раствор, при сибирской язве 5%. Сравнивая хлорамин с различными препаратами сублимата Бергин отдает предпочтение хлорамину. В своих выводах он указывает, что бактерицидное свойство хлорамина в 20 раз сильнее действия мыльных растворов креозола. Бергин предлагает хлорамин: а) для дезинфекциии рук ввиде 1/4-1/2% раствора, б) для

дезинфекции испражнений в 1% растворе; в) для дезинфекции пола в 1% растворе.

Бактерицидные свойства хлорамина освещены в советсой литературе работами Окуневского и Белкина. По Феттеру растворы чистого хлорамина убивают стафилокка: 1% в 3 минуты лЗ% в 40 секунд и 5% в десять секунд; растворы близкого к хлорамину „пантосепта“: 3% — в 40 секунд, 5% в 10 секунд; 1% раствор сулемы—в 40 секѵнд. Растворы: 5% мыльно-креозоловый, 1%фенол и 3% серно-феноловый не могут убить стафилококка и в течение 3-х минут.

Кишечная палочка погибает под действием 1% хлорамина в 30 секунд; 1% сулема и 60% алкоголь убивают ее в 20 секунд.

По исследованиям различных авторов при комнатной температуре хлорамин действует медленнее, но значительно лучше других препаратов.

По Фетшеру 0,5% раствор хлорамина применяется в гинекологической и зубной практике для дезинфекции рук, а также в хирургии для лечения нагноений.

В экспериментальной лаборатории Ленинградского центрального травматологического института имени проф. P. Р. Вредена мы провели работу по изучению препарата хлорамина Т, приготовленного М. Г. Вальте в Научно-практическом фармацевтическом институте. По предложению проф. А. Д. Озерова мы провели эксперимент—изучение хлорамина Т на кроликах. Бактерицидное свойство препарата было предварительно испытано Т. А. Колпаковой в микробиологической лаборатории института.

Данные испытания и опыты приводятся в следующих таблицах:

1. Рост бактерий на средах с различным содержанием хлорамина.
2.  

Виды микроба	Среда.	Концентрация хлорамина					Контроль-
		1%	0,5%	0,25%t	0,10%	0,05%
Staphylococcus	Агар	—	—	—	+	+	+
aureus ......	Бульон	—	—	—	+	+	+
Streptococcus ......	Агар	—	—	—	+	+	+
pyogenes	Бульон Агар	—	—	—	—	+	+
В. Coli communis ;	Бульон агар	—	—	—	—	+	+
		—	—	—	—	+	+
B. perfrmgens	Бульон	—	—	—	—	+	+

Вид микроба	Высевы	Время				Контроль
	Густота	1 м.	5 м.	10 м.	20 м.
Staphylococcus	2 миллиарда	—	—	—	—	+
aureus
Streptococcus
pyogenes		—	—	—-	—	+
В. coli communis		—	—	—	—	+
B. perfringens		—	—	—	—	+

Сравнительная скорость бактерицидного действия 1/4 % раствора хлорамина.

Эти опыты приводят нас к следующим выводам: прибавление 0,25% хлорамина Т к агаровым и бульонным культурам не дает роста всех 4-х групп испытуемых бактерий, причем кишечная палочка и b. perfringens погибают уже при 0,1% хлорамина Т, в 1/4 % растворе хлорамина Т эти микрорганизмы гибнут в течение 1-й минуты.

Испытание токсичности хлорамина Т производилось на мышах (Т. А. Колпакова), морских свинках и кроликах (А. Д. Краснов.) Инъекция 1 см³ % раствора хлорамина мышам не нанесла им вреда. Внутривенное введение кроликам и инъекции в брюшину морским свинкам 5 см³ этого же раствора не дали никаких проявлений.

Изучение действия хлорамина Т при лечении инфицированных ран было проведено мной на 55 кроликах в 10 сериях.

Техника опытов заключалась в следующем: на уши кроликов наносились дефекты пробойником диаметром 13 мм и в 16 мм в различных сериях.

На свежую раневую поверхность накладывалась повязка с раствором хлорамина Т в 0,1%—0,25%—0,5, 1%, 2%, 3%, 4% и 5% и др. антисептические средства, взятые для контроля: 1) 1% спиртовой раствор йода, 2) 1% водный раствор кристаллического йода (нерастворимая часть при этом находится в виде хлопьев взвеси или на дне раствора, 3) 10% гипертонический раствор поваренной соли, 4) раствор риванола, 5) бактерицид Збарского в растворе 1:30000, 6) спиртоводный раствор йода по следующей рецептурной формуле: Rp. tinct. jodi 10%—10,0; aq. destill, 40,0 7), культура болгарской палочки.

Тампоны, смоченные этими растворами, клались на раны, и, как правило, исследуемый раствор применялся лишь на одном ухе кролика, на втором для контроля накладывалась повязка с физиологическим раствором. Критерием для оценки заживления ран в первых сериях наших опытов мы считали уменьшение размеров и клиническое течение ран. В последующих сериях опытов мы проводили и бактериологический контроль-

При бактериологической проверке оказалось, что стрептококк в виду малой чувствительности кроликов к гноеродной инфекции прививался не во всех случаях. В отношении стрептококка рана оставалась стерильной в 80%. Стерильность ран при заражении стафилококками отмечена была значительно реже—в 22% случаев.

Дефект уха, инфицированный стрептококком и покрытый марлевыми шариками, смоченными 1/4% раствором хлорамина Т, зажил в 10 дней.

Согласно данным нашего эксперимента на 7 кроликах хлораминовые 1%—5% растворы вызвали некроз ткани.

Из контрольных антисептических веществ спиртовые растворы оказывали прижигающее действие на свежую раневую поверхность. Гипертонические растворы поваренной соли оказывали раздражающее действие на ткани, а при длительном применении угнетали развитие грануляционной ткани, задерживая нормальный ход заживления ран. Культура болгарской палочки, ускоряя отделение омертвевших тканей, способствовала образованию свежих грануляций.

В 3-й серии наших опытов нанесенные пробойником дефекты ушей заражались стрептококками с последующим лечением различными отмеченными уже нами препаратами. Самое быстрое заживление раны мы получили под повязками с орошениями 1/4% раствором хлорамина Т: стрептококковой раны в 9 суток, стафилококковой в 15 суток. Раны под повязками с орошениями физиологическим, гипертоническим растворами, 1% раствором иода, 1/2% раствором хлорамина Т, 1% раствором Tinct. jodi и 1:1000 раствора риванола дали значительное отставание —в среднем от 15 до 30 дней заживления.

Повторные опыты применения хлорамина на 4-х кроликах, зараженных теми же бактериальными культурами (стрептококк, стафилококк), дали одинаковую скорость заживления в случаях применения растворов 1/4 % и 1/2 % концентрации. Раны зажили в течение 9 — 10 дней, — раньше, чем произошло заживление контрольных ушей, леченных физиологическим раствором.

Гистологическая картина ушей 2-х кроликов из этой серии (исследования А. А. Васильева) дали следующие результаты:

Кролик № 244. Рана левого уха зажила полностью, покрыта мощным слоем эпидермиса и выполнена большим количеством соединительной ткани. Правое ухо контрольное—рана зажила на ²/з, ^в толще соединительной ткани уха имеются очаги гнойного воспаления.

Гистологическое исследование ран ушей, зараженных стрептококковой культурой:

Кролик № 246. Рана левого уха, леченная хлорамином Т, зажила полностью толстым слоем эпидермиса, с отчетливыми явлениями регенерации хряща; рана правого уха (контрольная) также зажила, но отличается от левой меньшим количеством рубцовой ткани, меньшими явлениями регенерации хряща и менее мощным слоем эпидермиса.

Кроме того, на одной из серий работ на этих же кроликах был проведен опыт лечения флегмонозных ран, вызванных путем двукратной инъекции (2/ІІІ и 7/III) стафилококка в количестве 1,5 и 3 миллиардов в брюшную стенку живота. После разреза под эфирным наркозом флегмоны применено лечение сухой повязкой, повязками, смоченными следующими препаратами: 1:1000 раствором риванола, 1/4% раствором хлорамина Т, спиртоводным раствором иода, физиологическим раствором. В проведенных экспериментах лучшую картину заживления ран показали хлораминовые повязки в смысле более раннего излечивания. Близкие к ним результаты были получены на ранах под повязками с риванолом и спиртозодно-иодистыми препаратами. Последующие мои опыты по лечению стафилококковых ран в клинике проф. H. Н. Петрова (экспериментальные работы на 15 кроликах) показали преимущество 1/4% — 1/2% раствора хлорамина Т перед бактерицидом Збарского, применяемого в растворе 1:3000.

Выводы: 1. Хлорамин Т—хорошее антисептическое средство.

2. Хлорамин Т для лечения инфицированных ран может быть применен в растворах 1\4 % и 1\2 %.
3. Разведение хлорамина дестиллированной водой или обычным физиологическим раствором не изменяет его бактерицидного эффекта.
4. 1%—5% раствор хлорамина Т оказывает прижигающее действие на ткань.
5. Хлорамин Т может быть рекомендован для лечения инфицированных ран наряду с другими антисептическими средствами.