О проблеме создания депо лекарственных веществ в патологическом очаге в хирургической практике
- Авторы: Зулкарнеев Р.А.1, Зулкарнеев Р.Р.1
-
Учреждения:
- Казанский государственный медицинский университет
- Выпуск: Том 78, № 5 (1997)
- Страницы: 382-386
- Тип: Статьи
- Статья получена: 23.10.2021
- Статья одобрена: 23.10.2021
- Статья опубликована: 15.10.1997
- URL: https://kazanmedjournal.ru/kazanmedj/article/view/83636
- DOI: https://doi.org/10.17816/kazmj83636
- ID: 83636
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Основное назначение различных систем с региональным высвобождением лекарств состоит в том, чтобы создать и в течение длительного времени поддерживать определенную концентрацию вещества, достаточную для подавления патологического процесса. Чаще всего базой для этих систем служит материал, обеспечивающий равномерное распределение лекарственного вещества и позволяющий использовать более низкие его дозировки.
Ключевые слова
Полный текст
Основное назначение различных систем с региональным высвобождением лекарств состоит в том, чтобы создать и в течение длительного времени поддерживать определенную концентрацию вещества, достаточную для подавления патологического процесса. Чаще всего базой для этих систем служит материал, обеспечивающий равномерное распределение лекарственного вещества и позволяющий использовать более низкие его дозировки.
В хирургической практике в организм больных вносятся конструкции самого различного назначения: эндопротезы костей и суставов, погружные и наружные фиксаторы, заменители сухожилий и связок. В силу этого особую роль приобретает как предупреждение, так и борьба с гнойными осложнениями/ Среди лечебных мер предпочтение отдается использованию антибиотиков [52], из которых свою ценность сохранил пенициллин [13], важны и цефалоспорины всех поколений [38, 39]. С 70-х годов инфекция носит смешанный характер, поэтому антибиотики следует комбинировать с метронидазолом [22]. Для исключения общетоксического действия антибиотиков используются принципы их превентивного применения [38], особые приемы местного введения и дренирования.
Установлено, что высокая концентрация антибиотиков в крови обеспечивается короткой схемой при введении их за 20 минут до операции, во время нее и в течение 2 часов после операции. Считается, что в этом случае регенеративные процессы в операционной ране не подавляются. Для возможно более раннего выявления возникающей в пане инфекции применяются сцинтиграфия с мечеными лейкоцитами [6], жидкостная хроматография и теплография [22], определение в крови концентрации фибронектина [2]. Для возникновения гнойного осложнения, помимо общих факторов (общая сопротивляемость, иммунный статус) важны и местные (наличие инородных тел в ране, участков некроза, вирулентность микробов). Если учитывать смешанный характер микрофлоры то важно применять местно многокомпонентные антисептические растворы: 9ХАР-анолит [2], раствор, содержащий 1% диоксидина, 0,1% раствор фурациллина, 3% раствор борной кислоты и 0,05% раствор хлоргексидина [4].
Используемый для стабилизации эндопротезов костей костный цемент (КЦ) имеет высокую температуру реакции полимеризации и по этой причине не совсем удобен для совместного внесения его с антибиотиками, хотя многие хирурги это делают. Ка-к справедливо заметил Nelson [38] по этому поводу, необходимы строго контролируемые исследования и соответствующая научная оценка, что было сделано в последние годы.
Создание на основе полиметилметакрилата (ПММА) полимеризатов, способных обеспечивать в условиях влажной среды прочное соединение и подгонку ножки протеза к кости, открыло новую главу в эндопротезировании. В Европе, а затем в США стало повседневным применение КЦ. В зависимости от фирмы, выпускающей его, КЦ известен под различными наименованиями: акрилцемент фирмы “Норман” (Чехия), Раlacos фирмы “Külzer” (ФРГ). Коммерческие названия разнообразны — Surgicel, Simplex, Snefix-6. Основным действующим началом, их является метиловый эфир метакриловойг кислоты (ММА). Смешивание порошка с жидким мономером позволяет получить исходный материал для имплантации. К порошку в качестве катализатора добавляют 1 % бензолпероксида, примешивают полимеры метилакрилата с бутилметакрилатом и другие вещества, среди которых не последнее место занимают и антибиотики. Наиболее полно опыт применения КЦ обобщен в монографии Chamley [11].
Ценность КЦ для имплантации оспаривается из-за ряда существенных недостатков. Среди теневых его сторон следует выделить ответную реакцию тканей на высокую температуру реакции полимеризации и токсическое влияние составляющих его ингредиентов. Акриловый цемент, обжигая окружающие ткани, создает зону некроза благоприятной средой для роста микробов. Для снижения температуры, равной 60— 100°С, применяются охлажденный физраствор, нити кетгута и дренажи. В момент внесения КЦ в эксперименте и клинике наблюдались гипотония, сдвиги со стороны сердечно-сосудистой системы и нарушения функции дыхания. Нередко возникали коллапс, жировая эмболия, инфекции, заканчивающиеся даже летальным исходом. Кроме того, после внесения антибиотиков содержание воды повышается, а механическая
прочность снижается на 6—25% [40]. В то же время стендовые проверки Palacos'a и Zimmer-цемента с гентамицином и без него показали, что ни температура, ни стерилизация, ни имплантация под кожу живота на его прочность не влияют [54].
Если ранее сообщалось о единичных случаях применения КЦ с антибиотиками при гнойной инфекции [50], то в дальнейшем насыщенные антибиотиками трубки из акпилового цемента и сам КЦ с антибиотиками успешно использовались в гнойных полостях в мягких тканях и в кости [8]. Причем наиболее успешно показал себя КЦ, обогащенный гентамицином, при нагноении ран после имплантации тазобедренных суставов [30, 47]. Ранее при гнойном осложнении после эндопротезирования воспалительный процесс удавалось купировать только путем извлечения протеза. Сейчас же тотальная некрэктомия завершается внесением нового протеза и КЦ с гентамицином [34]. Концентрация гентамицина в тканях при этом поддерживается в течение длительного времени и предупреждает возникновение нового воспалительного очага [41].
В эксперименте установлено, что гентамицин из КЦ хорошо диффундирует и в костной ткани [5]. При лечении же травматического остеомиелита и обширных гнойных полостей выполняется, как правило, обширная некрэктомия, отломки стабилизируются аппаратом, а дефект в кости заполняется понгиозной тканью совместно с акриловым цементом и антибиотиками, к которым чувствительна микрофлора. Полость и очаг воспаления в кости хорошо дренируются, назначается местная и общая антибактериальная терапия. КЦ используется в виде шариков (диаметр = 8 мм), нанизанных на металлическую нить, перфорированных трубок, заполненных цементом с антибиотиками, или лент [29]. Гентамицин вносился из расчета 10 г на 40 г цемента и действовал в течение 6 недель. По данным Bircher и соавт. [8], из 6 больных, леченных по приведенному выше методу, у 5 больных очаг воспаления был санирован, бактериальная флора полностью исчезла, хотя имелись Обширные гнойные полости. Foerster et al.
[19] у 56 пациентов наблюдали стихание процесса на сроках от одного года до 8 лет. Результаты оказались еще более успешными при внесении с КЦ цефалоспоринов третьего и четвертого поколений, например цефуроксикама [26]. Бактериологические исследования биоптатов, добытых хирургическим путем при замене суставов, подтвердили тот факт, что антибиотики выходят из КЦ путем диффузии в течение длительного времени [32]. Этот вывод получил подтверждение и в лабораторных условиях [7].
На двух видах животных (собаках и крысах) изучалось проникновение в кость антибиотиков, чаще всего гентамицина, распыленного на поверхности шариков. Местная диффузия гентамицина в кортикальный слой бедренной кости крысы была выражена слабее, чем распространение его по губчатой кости [35]. Для проверки в экспериментальных условиях были созданы новые модели инфицирования костной ткани [17], чаще всего путем внутрикостного введения взвеси микробов. На этих моделях было показано, что длительное депонирование в воспалительном очаге антибиотиков не оказывает токсичного влияния ни на печень, ни на почки. Концентрация антибиотиков в крови и органах была допустимой, нетоксической [51]. Прошли проверку и шарики, содержащие цефалотин и тобрамицин [31], действие которых оказалось сильнее.
Было установлено, что внутривенное введение моксалтана или цефазолина уступало по эффективности внесению их в виде шариков [35]. Высокое содержание антибиотиков в тканях области имплантации сохранялось в течение длительного времени, как минимум до 2—3 месяцев. Причем, если в качестве базиса для антибиотиков использовать биокерамику, например трикальцийфосфат, то в эксперименте с хроническим остеомиелитом инфекция не только подавлялась, но и восстанавливались дефекты костной ткани [14].
В ряде фирм на Западе стали выпускать цепочки, состоящие из 10, 30 и 60 шариков, каждый из которых содержал 4,5 мг гентамицина диаметром до 7 мм. Flick et al. [18] в числе первых доказал преимущество фирменного производства бусин из ПММА, пропитанных антибиотиками. Особенно успешным оказалось их применение при хроническом остеомиелите и флегмонах мягких тканей с образованием гнойных полостей больших размеров. После радикального оперативного вмешательства с удалением всех патологически измененных тканей образовывался дефект в кости или в мягких тканях, который обильно орошали антисептиками и затем плотно заполняли цепочками шариков и дренировали [49]. До 14 дней посевы из ран были стерильными. Цепочку шариков, заполнившую всю полость, удаляли обычно через 2—3 недели, и эта процедура из-за выраженного фибропластического процесса была порой достаточно травматичной. Необходимость их извлечения рассматривается как существенный недостаток этого метода лечения. Появляются предложения не удалять их из кости, а возложить на них функцию эндопротеза. Кроме того, разрабатываются лекарственные формы, базисная основа которых способна подвергаться полной биодеструкции. К такого ряда пластикам относят тройной полимер акриламида, винилпирролидона и этилокрилата. По данным Jenny et al. [28], среди 125 больных рецидивы на отдаленных сроках отмечены лишь в 4% случаев. В дальнейшем приведенный выше метод лечения хронического посттравматического остеомиелита широко утвердился, значительно сократив сроки лечения. Достаточно успешным он оказался при воспалительных процессах в области кисти [46], при псевдоартрозах с остеомиелитом концов отломков [24], особенно в сочетании с одновременной внешней фиксацией аппаратом [49]. Даже при таких безнадежных в прошлом состояниях, как послеоперационный остеомиелит грудины, были получены положительные результаты [53].
Столь радикальная санация очага воспаления шариками из ПММА с гентамицином позволила сохранять, не удаляя их, конструкции, обеспечивающие фиксацию отломков [49], эндопротезы как суставов, так и сосудов [23]. Даже при полном эндопротезировании локтевого сустава, который мало защищен мягкими тканями, удавалось сохранять протез при гнойном осложнении [36].
Своего рода переворот был совершен и в области хирургии в отношении лиц пожилого возраста. Ослабленный возрастом и перенесенными в прошлом заболеваниями этот контингент больных наиболее подвержен гнойным осложнениям. Так, под наблюдением Lortat-Jacob et al. [33] находились 74 пациента с гнойными осложнениями после оперативных вмешательств в верхней трети бедра. Их средний возраст достигал 74 лет. У 27 из них ранее был использован эндопротез и у 47 — выполнен остеосинтез отломков. Диабет отмечен у 4% больных, ожирение — у 6%, алкоголизм — у 11% и пролежни — у каждого пятого. О снижении иммунной защиты свидетельствовал гиполимфоцитоз у 40% больных. Только вскрытие гнойного очага и дренирование обрекают такого рода больных на увеличение летальности почти в 2 раза. Благодаря санации гнойной полости и заполнению ее шариками из ПММА с гентамицином выздоровление наступило в 75% случаев, у 9 из 10 наблюдавшихся был сохранен эндопротез.
В 70-х годах в эксперименте и клинике стала осуществляться заманчивая идея склеивания отломков клеем из полиуретана (“остамер”), но высокая температура реакции полимеризации приостановила его широкое применение.
С учетом недостатков полиуретанового клея нами [3] разработана новая технология получения стойкого к износу и воздействию тканевых ферментов полиуретана СРУ- ПФЛ, имеющего температуру реакции полимеризации, равную 36°С. Эксперименты на двух видах животных подтвердили биосовместимость полимера и открыли перспективу его применения. Была разработана система индивидуального экспресс-эндопротезирования [3], позволяющая создавать эндопротезы внутри организма методом “литья” путем введения шприцем по слепкам индивидуально подобранных трупных костей. Особенно успешной оказалась возможность совместного применения полимера с лекарственными веществами, подобранными в зависимости от характера патологического процесса. При наличии дегенеративно-дистрофического процесса вносились соединения пиримидиновых оснований. При гигантоклеточной опухоли и хондромах для предупреждения перерождения применялись противоопухолевые средства (сарколизин, метотрексат).
Антибиотики цефалоспоринового ряда вносились как с профилактической целью, так и для лечения остеомиелита. При костном панариции и остеомиелите других костей кисти и стопы отливали насыщенным гентамицином и индивидуально подогнанную кость, выполняли обширную некрэктомию и в дефект вносили эту кость. Как правило, рана заживала первичным натяжением и вспышки не было и на отдаленных сроках. Предварительно in vitro полиуретан СКЦ-ПФЛ вместе с 80—160 мг гентамицина вносили на чашки Петри с колониями патогенных микробов. Антимикробное действие сохранялось в течение 3 месяцев. Таким образом, имплантация фаланги пальца при костном панариции исключала калечащую операцию, тотальную некрэктомию, и это вмешательство завершалось восстановительным этапом. Наличие протеза, насыщенного антибиотиками, позволяло более радикально выполнить санацию очага, о чем свидетельствует первичное заживление ран.
Основой системы "Septopal" являются шарики из ПММА с гентамицином, но помимо антибиотика в нем содержится 20 мг двуокиси циркония. Установлено in vitro, что в первые 2 часа из каждого шарика путем диффузии высвобождается 400—600 мкг гентамицина, а в последующие 10 дней — по 120 мкг. Далее через 30 суток выходит до 10 мкг антибиотика в сутки. При 6-месячной имплантации в бедренную кость выделяется до 70% первичного количества гентамицина в шариках.
С целью оптимизации местного действия предлагаются новые лекарственные формы, например гентамицина сукцинат на основе Кallooryl‘а К, где в каждой бусине содержится уже 7,5 мг антибиотика. Высвобождению гентамицина способствуют полиэтиленгликоль-400 и бутандиолдиметакрилат. В частности, внесение лишь 20% От объема базисной основы полиэтиленгликоля-400 способствует увеличению выделения гентамицина в 8 раз, а введение 5% бутандиолдиметакрилата уменьшает его в 7—8 раз, что позволяет управлять этим процессом в зависимости от характера клинического течения.
По мере накопления опыта необходимость извлечения шариков из ПММА с гентамицином рассматривается, скорее, как недостаток, чем достоинство системы. По этой причине гентамицин рекомендуется сочетать с быстрорастворимыми пластиками, например с тройным полимером акриламида, винилпирролидона и этилакрилата.
Описанные выше достоинства новых лекарственных форм с гентамицином нашли свое подтверждение в лечении инфицированных псевдоартрозов бедра и голени [44], артрита и остеомиелита [45]. Рассасывающий антимикробный гель избавляет от необходимости повторной операции [21].
В изделиях медицинского назначения, созданных на основе полимерных композиций (чаще на основе силиконов), содержание водорастворимых противомикробных средств достигает 0,001—60%. П.А. Баубинас и соавт [1] с 1979 г. использовали у 89 больных для заполнения дефектов костной ткани антимикробный полимерный штифт, состоящий из винилпирролидона, метилметакрилата и полиамидных волокон. Среди антибактериальных агентов были не только цефалоспорины, но и производные С6—С10 П-алканкарбоновых кислот, антибиотики тетрациклинового ряда, йод. Наряду с гентамицином, хорошо зарекомендовал себя и тобрамицин, импрегнированный в КЦ [16, 39].
Противомикробные свойства серебра использовались при создании искусственной кожи, применяемой для лечения ожогов [20]. В эксперименте насыщенный серебром КЦ сравнивали с КЦ, содержащим гентамицин [15]. Антимикробные свойства цинкоксифосфатных цементов с добавлением серебра оказались достаточно высокими [43]. Деминерализованные костные трансплантаты, если к ним добавлять серебро и антибиотики, обретают не только остеоиндуктивные свойства, но и антибактериальные [48]. Антисептики и антибиотики на полимерной основе с губчатой аутокостью способствуют заживлению инфицированных псевдоартрозов и остеомиелита [9, 27].
Силиконовый гель и силастиковая губка [12, 37, 42] служат хорошей базой для антисептиков, позволяют в течение длительного времени поддерживать высокую их концентрацию в тканях. В результате этого рана становится стерильной и быстро заживает.
Особенно перспективен наш опыт создания в очаге поражения высокой концентрации противоопухолевых веществ в полимере на основе полиуретана [3]. В эксперименте на крысах и собаках апробированы комбинации метотрексата с КЦ [10, 25] и костными трансплантатами [55]. In vitro установлены термостойкость сочетания КЦ с метотрексатом и его устойчивость к окислению. На ранних сроках местной химиотерапии опухолей обнаруживается некроз костных трабекул, а далее уже развиваются репаративные процессы. Даже при рецидивах опухоли продолжительность жизни животных выше, что свидетельствует о положительном эффекте. Bozdech et al. [10] начали использовать сочетание КЦ с метотрексатом несколько позднее нас, с февраля 1996 г. Из 17 больных лишь у одного констатировано местное прогрессирование опухоли. Если местно лечить метастазы в скелет комбинацией КЦ с противоопухолевыми средствами, то можно предупредить возникновение патологического перелома, способствуя продлению жизни и улучшению ее качества.
Использование биологических и искусственных матриц обеспечивает равномерную концентрацию лекарственных веществ, позволяет применять более низкие их дозировки, значительно снизив побочные эффекты. Следовательно, необходимы дальнейшие настойчивые исследования в этой перспективной области медицины.
Об авторах
Р. А. Зулкарнеев
Казанский государственный медицинский университет
Автор, ответственный за переписку.
Email: info@eco-vector.com
Россия
Р. Р. Зулкарнеев
Казанский государственный медицинский университет
Email: info@eco-vector.com
Россия
Список литературы
- Баубинас П.А., Петрулис А.Ю. V Всесоюзный съезд травматологов-ортопедов — Тез. докл. — М., 1988.
- Зулкарнеев Р.А., Амиров Н.Х. и др. Применение 0,5% электрохимически активированного раствора в лечении гнойных ран. Метод, рекоменд. — Казань, 1991.
- Зулкарнеев Р.А. Экспресс-эндопротезирование с использованием быстродействующих полимеров в медицине. — Казань, 1984.
- Уразгильдеев З.И., Маловичко В.В.// Тезисы докладов Всероссийского пленума травматологов-ортопедов. — Екатеринбург, 1992.
- Baker A.S., Greenham L.W.//1. Bone Jt. Surg. — 1988. - Vol. 70. - P. 1551-1558.
- Bakst R.H., Kanaz I. O.//J. Foot Surg. — 1987. — Vol. 26. - P. 466-470.
- Bayston R, Milner R.D.G.// J. Bone Jt. Surg. — 1982. - Vol. 64B.— P. 460-464.
- Bircher M.D., Hopkins J.S.// Injury. — 1985. — Vol. 16. - P. 607-610.
- Boero G., Zandrino F, Leonardi L.// Minerva ortoped. — 1985. — T.36. — P. 235—242.
- Bozdech Z., Sklensky M., Cerny J. et al.// Acta Chir. Orthop. Traum. Chech. — 1989. — Vol. 2. — P. 134-143.
- Chamley J. Acrylic cement in orthopaedic surgery. — Livingstone-Edinburg-London, 1970.
- Corcione E, Cuozzo A., La Manna S. ect.// Riv. ital. coloproctol. — 1986. — Vol. 5. — P. 118—121.
- Cunha B.A.// Clin. Orthopaed. — 1984. — Vol. 190. - P. 36-49.
- Decker S.// Unfallheilk. - 1985. - Bd. 88. - S. 250-254.
- Dueland R., Spadaro J.A., Rahn B.A.// Clin. Orthopaed. - 1982. - Vol. 169. - P. 264-268.
- Eckman J.B., Henry St.L. ect.// Clin. Orthopaed. - 1988. - Vol. 237. - P. 213-216.
- Fitzgerald R.H.//1. Bone Jt. Surg. — 1983. — Vol. 65. - P. 371-380.
- Flick A.B., Herbert J.C. et al.// Clin. Orthopaed. - 1987. - Vol. 223. - P. 282-286.
- Foerster G. V., Buchhols H. W. et al.// Chirurg. - 1982. - Bd. 53. - S. 709-715.
- Gerding R.L., Imbembo A.L., Fratianne R.B.// J. Trauma. - 1988. - Vol. 28. - P. 1265-1270.
- Götz J., Wicki O.//Helv. chir. acta. - 1983. - Vol. 49. - P. 679-683.
- Hahn F., Borner K., Koeppe P.// Akt. Trau- matol. - 1988. - Bd. 18. - S. 84-87.
- Hansis M., Weller S.// Chirurg. - 1987. - Bd. 58. - S. 706-711.
- Härle A.//Z. Orthop. - 1982. - Bd. 120. - S. 597-598.
- Hemigou Ph. et al.// Rev. Chir. Orthop. — 1987.-Vol. 73. - P. 517-530.
- Innes A., Hughes S.P.F. et al.// Int. Orthopa- ed. - 1985. - Vol. 9. - P. 265-269.
- Isaac M.R., Kanat LO.// J. Foot Surg. — 1991. - Vol. 25. - P. 404-406.
- Jenny G., Taglang G., Kempf L// Therpie- woche. - 1980. - Bd. 30. - S. 8695-8698.
- Jenny J. K, Vecsci V., Lenny J.// Acta ortho - paed. belg. - 1986. - Vol. 52. - P. 113-124.
- Josefsson G., Lindberg L., Wiklander B.// Clin. Orthopaed. — 1981. — Vol. 159. — P. 194—201.
- Laky R., Horvath A., Kubatov M.// Magy. Traum. Orthop. - 1982. - Vol. 25. - P. 280-286.
- Lodenkämper H., Lodenkämper U., Trompa ^.//Unfalheilk. - 1983. - Bd. 120. - S. 801-805.
- Lortat-Jacûb A., Bomert D., Coignard S. et al.// Rev. Chir. orthop. - 1987. - Vol. 73. - P. 179-187.
- Lynch M., Esser M.P., Shelly P. et al.// J. Bone Jt. Surg. - 1987. - Vol. 69. - P. 355-360.
- Mc Que en M., Littlejohn A., Hughes S.P.F.// Int. Orthopaed. - 1987. - Vol. 11. - P. 241-243.
- Morrey B.F., Bryan R.S.// J. Bone Jt. Surg. — 1983. - Vol. 65. - P. 330-338.
- Müller K.H., Ekkemkamp A//Unfallchir. — 1986. - Bd 89. - S. 101-116.
- Nelson C.L.//Clin. Orthopaed. — 1987. — Vol. 222. - P. 66-72.
- Orthopaedic infection. Ed. by Gustilo, R.P. Gruninger, D.T. Tsukayma.: Philadelphia. — Saunders, 1989.
- Qpuagliorella L., Frenchin F.// Minerva or- top. - 1984. - Vol. 35. - P. 609-616.
- Salvati Ed. A., Callaghan J. J. et al.// Clin. Orthopaed. — 1986. — Vol. 207. — P. 83—94.
- Sawada Y., Yotsuyanagi T., Sone K.// Brit. J. plast. Surg. - 1990. - Vol. 43. - P. 88-93.
- Schmals G.//Dtsch. sahnärztl. Z — 1987. — Bd. 42. - S. 628-632.
- Schmidt H. G.K., Exner G., Lejfringhausen W.// - Z. Orthop. - 1982. - Bd. 120. - S. 597-597.
- Schuckmann P. von, Schuckmann JK/ZBeitr. Orthop. Traumatol. — 1989. — Bd. 36. — S. 428—434.
- Steinig HL, Asche G.// Unfallchirur. — 1986. — Bd. 12. - S. 132-134.
- Trippel S.B.// J. Bone Jt. Surg. — 1986. - Vol. 68A. - P. 1297-1303.
- Varlet A., Dauchy Ph., Hingres M.//R&N. Chir. orthop. - 1985. - Vol. 71. - P. 73-79.
- Vecsei V., Scharf W., Tomiczek H.// Unfal- Iheilk. - 1983. - Bd. 86. - S. 38-42.
- Vielpeau C., Aubriot J.H., Morel C.// Rev. Chir. orthop. - 1980. - Vol. 66. - P. 74-78.
- Walenkamp G.H.I.M., Vree T.B., van Rens T.H.G.// Clin. Orthopaed. — 1986. — Vol. 205. — P. 171-184.
- Williams D.N., Gustilo R.B.// Clin. Orthopaed. - 1984. - Vol. 190. - P. 83-88.
- Winser K.-J., Luther B., Lindenau K-F. et al.// Zbl. Chir. - 1983. - Bd. 108. - S. 1163-1167.
- Wright T.M., Sullivan D., Amocsky S.P.// Acta orthop. scand. — 1984. — Vol. 55. — P. 414—418.
- Yang Guan W., Tai Yi W., Yun Zhi M. et al.// Int. Orthop. - 1990. - Vol. 14. - P. 387-393.
Дополнительные файлы
![](/img/style/loading.gif)