About the precipitation reaction in trichinosis

A. Trawinsky; Trawinsky A.; S. Maternoroska; Maternoroska S.

doi:10.17816/kazmj76636

About the precipitation reaction in trichinosis

Authors: Trawinsky A., Maternoroska S.
Issue: Vol 30, No 11-12 (1934)
Pages: 1205-1205
Section: Articles
URL: https://kazanmedjournal.ru/kazanmedj/article/view/76636
DOI: https://doi.org/10.17816/kazmj76636
ID: 76636

Cite item

Full Text

Abstract
Full Text
About the authors
References
Supplementary files
Statistics

Abstract

To obtain precipitating sera, rabbits were infected per os with trichins. The usual dose used was 250 to 1000 trichins in one or more doses. The exsanguination of rabbits was performed at different times, from the 3rd to the 26th day, and in one series of experiments even on the 50th day. At the same time, exsanguinated rabbits were examined to determine whether the infection had resulted in trichinosis. Sera of only those rabbits whose organs or intestines were found to contain trichins were tested. The antigen was prepared as follows: the muscles of rabbits infected with trichins were pulverized and then physiological solution with 0.4% pepsin solution and 0.25°/o hydrochloric acid was added.

Keywords

Kazan Medical archive

Full Text

(Cbl. für Bakter. Orig. 1934. 131. ¹/₂). Для получения преципитирующих сывороток кроликов заражали per os трихинами. Обычная употреблявшаяся доза — от 250 до 1000 трихин в один или несколько приемов. Обескровливание кроликов производилось в различные сроки, начиная с 3-го и кончая 26-м, а в одной серии опытов даже 50-м днем. Одновременно производилось обследование обескровленных кроликов с целью обнаружения, наступила ли в результате заражения инвазия трихинами. В опыт пускались сыворотки только тех кроликов, в органах или кишечнике которых были обнаружены трихины. Антиген готовился след, образом: мышцы кроликов, зараженных трихинами, измельчались, после чего к ним добавляли физиологический раствор с добавлением 0,4% раствора пепсина и 0,25°/о соляной кислоты. После перегревания в термостате при 42°С в течение 3 часов (молодые, не одетые капсулами трихины переходят при этом в жидкость) непереваренные комочки отжимали и выбрасывали, а жидкость фильтровали через марлю и центрифугировали. Осадок, содержащий трихины, промывали 5—6 раз физиологическим раствором для удаления остатков пепсина и соляной кислоты и высушивали в термостате или в экссикаторе. Высушенные т. обр. трихины подвергались затем растиранию в ступке, после чего к полученной массе добавляли стерильный физиологический раствор (1 : 500 или 1 :100). После стояния антигена в течение 10 дней на холоду его фильтровали через азбест. Употребляли свеже-приготовленный антиген. В качестве контроля пользовались антигенами из аскарид или эхинококков, а также нормальными кроличьими сыворотками. Р. преципитации ставилась путем наслаивания сыворотки на антиген. Результаты реакции учитывались после стояния в термостате в течение 5, 10, 15, 30, 45 и 60 минут. Положительную р. преципитации с трихинозными антигенами давали сыворотки кроликов, обескровленных не ранее 7—8 дня с момента заражения. Начиная с этого времени почти все сыворотки без исключения давали положительную р. преципитации с трихинозным антигеном. Антигены из аскарид и эхинококков, а также нормальные кроличьи сыворотки давали отрицательную реакцию преципитации.

Положительную р. преципитации с антигенами из аскарид и эхинококков давали в некоторых случаях сыворотки тех кроликов, у которых помимо трихинозной имелась также естественная инвазия каким-либо другим паразитом Cysticercus pisiformis, Oxyurisambigua).

Н. Каган.