Клеточные механизмы возраст-зависимого ремоделирования костной ткани
- Авторы: Плехова Н.Г.1, Криволуцкая П.А.1, Черненко И.Н.1
-
Учреждения:
- Тихоокеанский государственный медицинский университет
- Выпуск: Том 105, № 4 (2024)
- Страницы: 648-660
- Раздел: Обзоры
- Статья получена: 27.05.2024
- Статья одобрена: 01.07.2024
- Статья опубликована: 25.07.2024
- URL: https://kazanmedjournal.ru/kazanmedj/article/view/632264
- DOI: https://doi.org/10.17816/KMJ632264
- ID: 632264
Цитировать
Аннотация
Структурная целостность скелета обеспечена постоянным ремоделированием костной ткани, которое основано на функционировании и взаимодействии клеток остеолитических (остеокласты) и формирующих костную ткань (остеобласты/остеоциты). Несмотря на общее понимание, что степень минерализации костного матрикса определяет хрупкость скелета, на настоящий момент недостаточно информации о его возрастных изменениях, связанных с функционированием данных клеток. Цель обзора — оценка существующих данных о возрастных изменениях кости, связанных с функциональным состоянием мезенхимных стволовых клеток, остеобластов/остеоцитов и остеокластов. Критерии включения: рандомизированные или нерандомизированные контролируемые исследования, изучающие возраст-зависимое изменение кости. Поиск исследований в области состояния костной ткани осуществляли в электронных научных базах Google Scholar, Medline, PubMed, Scopus, Web of Science и Cochrane Library по ключевым словам и их сочетаниям, используя программу AMSTAR 2. Отбор публикаций (из 680 включено 59) производили случайным образом, после чего независимо три автора давали оценку их методологического качества. Основной патогенетический механизм, участвующий в потере костной массы с возрастом, — снижение образования остеобластов с нарушением их способности к остеогенной дифференцировке. Остеоциты в пожилом возрасте подвергаются чрезмерному и продолжительному стрессу, который вызывает несбалансированную аутофагию и апоптоз, что ведёт к изменению их способности к депонированию и минерализации внеклеточного органического матрикса. С возрастом происходит ускоренный остеокластогенез, опосредованный остеобластами, что приводит к усилению экспрессии определённых рецепторов на уровне костных стромальных клеток и остеобластов. Приведённые литературные данные демонстрируют убедительные доказательства того, что усиление резорбции кости вследствие сложных метаболических процессов с возрастом происходит на фоне повышения количества и активности остеокластов, апоптоза остеобластов при снижении их метаболической активности, а также перераспределения остеогенной дифференцировки мезенхимных стволовых клеток в направлении адипоцитов. Изложенные в обзоре результаты могут быть использованы в качестве основы разработки диагностических критериев для выявления сенильного остеопороза и риска переломов.
Ключевые слова
Полный текст
Всемирная организация здравоохранения здоровое старение человека определяет как постоянный процесс поддержания функциональной жизнеспособности организма [1]. В зависимости от физиологического возраста и условий кратко-, средне- и долгосрочного влияния различных факторов постоянно меняется костная ткань [2].
Согласно закону Юлиуса Вольфа кости адаптируются к степени механической нагрузки, при увеличении которой укрепляется структура внутренней губчатой части с последующим ремоделированием кортикального слоя, а их целостность определяют продолжительность, величина и скорость сил, приложенных к ней [2].
Процесс ремоделирования костной ткани поддерживает баланс кальция, фосфора и других активных компонентов в организме, обеспечивая таким образом структурную целостность скелета. Этот процесс регулируется механическими факторами (например, физической нагрузкой), а также рядом эндокринных (таких, как паратиреоидный гормон, гормон роста, эстрогены, кальцитриол), паракринных (инсулиноподобный фактор роста) сигналов и медиаторов, включая трансформирующий фактор роста, простагландины, оксид азота, интерлейкин-1, интерлейкин-6, фактор некроза опухоли и др. [3].
Ремоделирование основано на функционировании и взаимодействии клеток, формирующих костную ткань (остеобластов/остеоцитов), и остеолитических (остеокластов), активность этих клеток также находится под постоянным контролем как локальных, так и системных регулирующих факторов [2]. Отклонение от баланса между соотношением остеобластов и остеокластов может привести к потере плотности костной ткани и склонности к переломам или, напротив, к её увеличению (остеопетрозу) и развитию компрессионных синдромов [2].
ВОЗРАСТНЫЕ ИЗМЕНЕНИЯ СВОЙСТВ И ПОТЕНЦИАЛА КОСТНОГО МАТРИКСА
Несмотря на общее понимание, что степень минерализации костного матрикса определяет хрупкость скелета, на настоящий момент недостаточно информации о его возрастных изменениях [4, 5].
Свойства костного матрикса (модуль ткани, предел текучести/деформации, предельное напряжение/деформация, деформация до разрушения, работоспособность до разрушения и ударная вязкость) оценивают с помощью испытаний, и показано, что старение существенно не ухудшает модуль упругости кости [6]. Однако в кортикальной кости человека старше 30 лет за десятилетие снижаются предел текучести и прочности приблизительно на 1 и 2% соответственно [7, 8], а ударная вязкость, рассеивание энергии и предельная деформация каждое десятилетие снижаются примерно на 10–15% [7, 9].
С возрастом происходит экспоненциальное снижение усталостной долговечности, и кость демонстрирует сниженные профили деградации модуля [7, 9]. Если в молодой кости при усталостной нагрузке образуются диффузные повреждения и теряется локальная жёсткость тканей на стороне растяжения, то в старой формируются линейные микротрещины, а жёсткость нарушается на сжимающей стороне [7]. Склонность стареющей кости к образованию линейных микротрещин, а не диффузных вносит значительный вклад в качество костного матрикса и возрастную хрупкость скелета [7].
Наиболее распространённый белок в организме человека — коллаген I типа, модифицируется в реакции неферментативного гликирования (реакция Майяра) с формирования поперечных связей между восстанавливающими углеводами (глюкозой, фруктозой и др.) и свободными аминогруппами. Такие связи внутри и между молекулами состоят из пентозидина, карбоксиметиллизина, карбоксиэтиллизина, кросслайна и весперлизина.
С возрастом в результате длительного периода полураспада коллагена накапливаются конечные продукты гликирования, что оказывает влияние на хрупкость костей [7, 10]. Накопление таких продуктов также влияет на устойчивость костей к переломам и нарушает наномасштабные механизмы деформации коллагена и рассеивания энергии. Показано, что с возрастом в качестве основной закономерности повышения хрупкости костей возникают повышение жёсткости фибриллярного коллагена и потеря индуцированной им пластичности по мере накопления конечных продуктов гликирования [5].
Поскольку костная масса у пожилых существенно снижается, особенно после менопаузы у женщин, она становится решающим фактором хрупкости скелета и переломов костей [11]. На настоящий момент, многие генетические исследования сосредоточены на расшифровке взаимосвязи между генами и костной массой или микроархитектурой [12]. Без клеточных компонентов костную ткань рассматривают в качестве биоматериала, который состоит из минералов, коллагена, воды и небольшого количества неколлагеновых белков [11]. Костные минералы состоят из слабо кристаллизованного карбонатного апатита и с возрастом становятся длиннее и жёстче, что оказывает влияние на уменьшение предельной деформации и прочности кости [13–15].
С возрастом в костном матриксе изменяется содержание, а также степень и/или характер поперечных связей между и внутри волокон коллагена, в результате чего приобретается рыхлая тканевая структура. Причём количество воды, составляющее около 10–20% кортикального объёма кости в молодом возрасте, снижается в 80 лет на 40% [11, 16].
Более того, перелом в любом месте увеличивает риск последующего перелома в любом другом месте, что подчёркивает важность немассовых факторов, к которым относятся нарушение архитектуры кости, изменения в костном минерале и матриксе, замедленное восстановление усталостных микроповреждений и чрезмерный обмен, но наиболее важна потеря с возрастом жизнеспособности остеоцитов [16].
В свою очередь, неколлагеновые белки, такие как остеокальцин и остеопонтин, также оказывают влияние на свойства костного матрикса, регулируя размер, форму и ориентацию кристаллов, замещая карбонат в кристаллической решётке или изменяя образование минералов на коллагеновом каркасе [17].
Свойства костного матрикса регулируются остеобластами, остеоцитами и остеокластами, однако их роль очень специфична, поскольку они в разной степени участвуют в старении и возрастном разрушении костей [18]. Следует отметить, что остеобласты инициируют формирование костного матрикса, а уменьшенное их количество по причине снижения дифференцировки в них мезенхимальных стволовых клеток (МСК) костного мозга или повышенного апоптоза, или нарушения адгезии к поверхности кости при снижении минерализации может препятствовать формированию ткани [19].
По сравнению с остеобластами и остеокластами остеоциты, встроенные в костный матрикс, напрямую взаимодействуют с ним, образуя дендритную сеть обширной площади и модифицируя его в ответ на эндокринные, паракринные и механические стимулы [18]. Исследование возрастного старения костной ткани методом секвенирования рибонуклеиновой кислоты (РНК) выявило транскриптомные изменения, связанные с генами белков-организаторов внеклеточного матрикса — коллагеновых фибрилл [20].
КЛЕТКИ В ПРОЦЕССЕ РЕМОДЕЛИРОВАНИЯ КОСТНОЙ ТКАНИ
Цикл ремоделирования кости включает стадии активации, резорбции, реверсии, костеобразования (минерализации) и покоя [20]. В первую стадию активации происходит распознавание стимулирующих сигналов (нагрузка на кость, паратгормон, кальцитриол, интерлейкин-1, интерлейкин-6, простагландины) остеоцитами, находящимися в толще костного матрикса, с последующей передачей сигнала остеобластам, покрывающим поверхность костной ткани (рис. 1).
Рис. 1. Фазы цикла ремоделирования кости
Затем в ответ на биологически активные компоненты, синтезируемые остеобластами (сигнальные белки, моноцитарный колониестимулирующий фактор, активатор лиганда ядерного фактора-κB), к поверхности кости мигрируют клетки моноцитарно-макрофагального ряда с последующей пролиферацией и дифференцировкой в многоядерные остеокласты. На активность и взаимодействие остеобластов и клеток-предшественников остеокластов прямо или косвенно влияют гормональные сигналы, которые могут быть предпосылками возникновения множества патофизиологических последствий [21].
Остеобласты также продуцируют ферменты металлопротеиназы, разрушающие поверхностный белковый слой и неколлагеновые белки остеобластов (остеокальцин, сиалопротеин, остеопонтин, Gla-протеин матрикса), что подготавливает поверхность кости для прикрепления остеокластов. В стадии резорбции до 30–40 дней остеокласты выделяют ферменты, разрушающие костный матрикс, в результате чего образуется лакуна с глубиной 60 мкм в молодом возрасте, тогда как у пожилых людей её размер уменьшен до 40 мкм, при этом кальций и фосфаты попадают в кровеносное русло [22].
В стадии реверсии происходит апоптоз остеокластов, и их место занимают клетки мезенхимального ростка преостеобласты. В дальнейшем образование кости характеризуется формированием на дне лакуны слоя дифференцированных остеобластов, которые выделяют молекулы, составляющие органическую основу костного матрикса и регуляторы минерализации — коллаген I типа, остеокальцин, остеонектин и остеопонтин. Минерализация матрикса осуществляется путём преципитации кальция и фосфата из кровеносного русла [23].
На завершающем этапе функционального цикла остеобласты превращаются в покоящиеся остеоциты и покровные клетки на поверхности кости до следующего цикла ремоделирования [21]. В целом цикл ремоделирования костной ткани в норме занимает около 150 дней и заканчивается заполнением резорбтивной лакуны новым матриксом [23]. В патологических условиях, например при остеопорозе, резорбтивная лакуна заполняется не полностью, что приводит к потере массы костной ткани при каждом цикле ремоделирования [24].
В компактной кости ремоделирование происходит в туннелях (гаверсовых каналах), образуемых резорбтивным конусом из остеокластов, удаляющих старую костную ткань, следом за чем формируется замыкающий конус, состоящий из остеобластов с заполнением пространства новым матриксом [25].
В норме длительность цикла ремоделирования на поверхности трабекул составляет около 200 дней, компактной кости — 120 дней [26]. За год в организме человека в среднем ремоделированию подвергается около 30% трабекулярной и 3% компактной кости [27]. В детском и юношеском возрасте превалирует остеогенез, и костная масса возрастает на 8% в год, у взрослого человека стадии ремоделирования сбалансированы, что позволяет сохранять постоянство структуры [27]. Тогда как после 40 лет процесс резорбции начинает преобладать над образованием кости, в результате чего масса и прочность кости постепенно снижаются.
На поверхности периоста в течение всей жизни сохраняется положительный баланс между стадиями ремоделирования, на поверхности гаверсовых каналов они уравновешены, а на эндостальной поверхности доминирует отрицательный баланс. Это обусловливает истончение кортикального слоя и рарефикацию губчатой кости. С увеличением возраста на 20 лет при одинаковой минеральной плотности кости риск переломов увеличивается в 4 раза [27].
МЕЗЕНХИМНЫЕ СТВОЛОВЫЕ КЛЕТКИ
Цикл ремоделирования кости начинается на ранних этапах жизни эмбриона и зависит от взаимодействия между двумя линиями клеток: мезенхимного и гемопоэтического происхождения. Стромальные, негемопоэтические МСК локализуются в костном мозге, надкостнице, стенке сосудов, жировой ткани, мышцах, сухожилиях, периферическом кровообращении, коже и ткани зубов. Они способны к самовоспроизведению и дифференцировке в различные типы клеток, такие как хондроциты, миоциты, адипоциты и остеобласты, участвуя в регенерации мезенхимных тканей, например костной, хрящевой, связках, сухожилиях, мышцах и жировой ткани [2].
Долгоживущими бывают МСК, из которых происходят остеобласты, малоизвестные клетки надкостницы и синцитий, выстилающие резидентные терминально-дифференцированные клетки — остеоциты. Эти клетки находятся в костном мозге, губчатой кости и играют важную роль в поддержании динамического баланса костной ткани, её резорбции и образовании. Основные факторы, которые участвуют в дифференцировке МСК в остеобласты, — остерикс, фактор транскрипции 2, связанный с Runt-белком (RUNX2), и фактор транскрипции P (FOXP) [2].
Предложена идентификация самообновляющихся мультипотентных скелетных МСК человека по наличию экспрессии рецепторов к интегральному мембранному белку подопланину I типа и кластеров дифференцировки CD73 и CD164 при отсутствии молекул CD146 [28]. Эти клетки выделяются из жировой стромы плода и взрослого человека при обработке костным морфогенетическим белком 2 и способны к локальной экспансии в место повреждения кости [28].
С возрастом и при дегенеративных заболеваниях опорно-двигательного аппарата (суставов и костей) регенеративная способность МСК теряется или перенаправляется на образование других нефункциональных типов клеток, таких как адипоциты и фибробласты (рис. 2) [29].
Рис. 2. Основные изменения клеток костной ткани, происходящие в пожилом возрасте; АТФ — аденозинтрифосфат
Повышенная дифференцировка МСК в адипоциты и снижение количества и функциональности остеобластов — основной фактор, участвующий в патогенезе остеопороза [30, 31]. Жировые клетки костного мозга обладают особым метаболизмом, зависящим от липолиза собственных липидов внутри них, и, высвобождая свободные насыщенные жирные кислоты, оказывают негативное влияние на костный мозг. Одна из наиболее токсичных и интенсивно секретируемых свободных жирных кислот — пальмитат, непосредственно участвующий в процессах разрушения костей при старении путём токсического воздействия как на остеобласты, так и на остеоциты [32].
Показано, что с возрастом на поверхности МСК снижается уровень экспрессии рецепторов RUNX2 и к эритроидному ядерному фактору 2 (NRF2) и, напротив, повышается содержание коактиватора рецептора γ к стимулирующему дифференцировку пролифератору пероксисомы 1α (PGC-1α) [33]. Последний служит основным регуляторным фактором адипогенной дифференцировки МСК и может ингибировать активность остеобластов путём блокировки экспрессии ядерно-связывающего фактора α1 [33].
С другой стороны, снижение уровня FOXP напрямую влияет на МСК, приводя к усилению адипогенеза, снижению образования остеобластов и, наконец, к деградации костной структуры.
К другим метаболическим изменениям МСК в пожилом возрасте относится снижение реакции на костный морфогенный белок и уменьшение уровня щелочной фосфатазы, остеокальцина и секреции коллагена I типа (см. рис. 2).
И последнее, но не менее важное, на инактивацию остеобластов и стимуляцию образования медуллярной жировой ткани влияет сигнальный путь Wnt, активность которого снижается в пожилом возрасте (особенно путь Wnt10b), и дисфункция теломер МСК, индуцирующая апоптоз путём стимуляции соотношения проапоптотических белков P53/P21. При этом подавляется экспрессия остеобластного транскрипционного фактора Runx 2, что ингибирует трансформацию и дифференцировку МСК в остеобласты, приводит к уменьшению костной массы и может быть одной из причин старческого остеопороза [34].
Таким образом, МСК обладают терапевтическим потенциалом для разработки новых клинических стратегий с целью эффективной борьбы с врождёнными и возрастными нарушениями опорно-двигательного аппарата. Однако, к сожалению, несмотря на использование этих клеток в клинической практике в виде инъекций для лечения некоторых дегенеративных заболеваний, бóльшая часть их антивозрастного и регенеративного потенциала остаётся неподтверждённой [35].
ОСТЕОБЛАСТЫ/ОСТЕОЦИТЫ
Дифференцированные в остеобласты МСК заполняют гаушиповы лакуны, продуцируя новый коллаген и минералы. Эти специализированные костеобразующие клетки экспрессируют рецепторы паратиреоидного гормона, синтезируют остеокластогенные факторы, белки костного матрикса и элементы минерализации кости [36].
Остеобласты включают популяции незрелых клеток, клеток средней дифференцировки и зрелые, причём, стадии созревания оказывают влияние на их функциональный вклад в ремоделирование кости. Предполагают, что незрелые остеобласты направляют остеокластогенез, тогда как зрелые выполняют функции продукции матрикса и минерализации [37].
После выполнения необходимых функций остеобласты становятся либо клетками, выстилающими поверхность кости, либо остеоцитами, либо подвергаются апоптозу, что имеет значение при возрастной потере костной массы и остеопорозе [37]. Апоптоз остеобластов по внутрицитозольному механизму индуцируется активными формами кислорода, производными никотинамидаденин динуклеотидфосфатоксидазы (NOX), с деполяризацией мембранного потенциала митохондрий под влиянием окисленных белков, что в конечном итоге приводит к остеопении и разрушению микроструктуры кости [37].
Таким образом, основные патогенетические механизмы, участвующие в потере костной массы, — снижение образования остеобластов с нарушением их способности к депонированию и минерализации внеклеточного органического матрикса, а также усиление апоптоза и дисфункциональной аутофагии (см. рис. 2).
При формировании кости субпопуляция остеобластов подвергается терминальной дифференцировке и поглощается неминерализованным остеоидом, а после его минерализации дифференцируется в остеоциты. Последние составляют 90–95% всех клеток костной ткани, заключены в заполненные жидкостью лакуны, имеют длинные дендритоподобные отростки, которые распространяются по туннелям внутри минерализованного матрикса, образуя сеть [38].
Лакуно-каналикулярная система необходима для нормального потока канальцевой жидкости, которая, помимо своей важной роли в питании костей, в моменты механической нагрузки представляет собой стимул для остеоцитов, опосредующих механотрансдукцию. Функциональный синцитий остеоцитов с клетками сосудистых поверхностей костей (остеобласты или клетки костной оболочки), стромальными и эндотелиальными клетками — основная клеточная система.
Внутри системы остеоциты взаимодействуют в зависимости от типа сигналов (метаболических или механических) посредством объёмной и/или проводной передачи. Эти клетки связаны друг с другом посредством различных типов соединений, среди которых щелевые контакты внутри матрикса позволяют им действовать нейрональноподобно. Поддержание скелетного и минерального гомеостаза в качестве механосенсоров обусловлено их способностью преобразовывать сигнал механического напряжения в биохимический, запуская/модулируя ответную реакцию костного матрикса через эффекторные клетки (остеобласты и остеокласты) [39].
Также в этом процессе принимает участие секретируемый остеоцитами регулятор скелетного метаболизма белок склеростин, который действует как ингибитор образования кости путём стимулирования апоптоза клеток. Эти клетки играют основную роль в ремоделировании и минеральном гомеостазе кости как внутри, так и за пределами микроокружения матрикса, в настоящий момент их рассматривают с позиций эндокринной функции [40].
Помимо коллагена и склеростина, остеоциты секретируют важный эндокринный фактор роста фибробластов-23, оказывая влияние на регуляцию метаболизма фосфатов. В норме остеоциты за счёт секреции этого белка модулируют активность остеобластов через сигнальный путь Wnt, тогда как активация остеокластов достигается за счёт секреции активатора лиганда ядерного фактора-κB и моноцитарного колониестимулирующего фактора. Другими молекулами, продуцируемыми остеоцитами и участвующими в гомеостазе кости, служат оксид азота (NO), костные морфогенные белки и простагландин E2 [41].
Остеоциты участвуют в процессе минерализации кости и метаболизме фосфата кальция, секретируя белки, такие как кислый фосфопротеин дентин матрикса 1, костный сиалопротеин, фактор роста фибробластов-23. Также в этих клетках экспрессируется ген, регулирующий гомологичный эндопептидазам фосфат на X-хромосоме (PHEX) и матриксный внеклеточный фосфогликопротеин (MEPE) [42].
При скелетной нагрузке в норме и в условиях усталости, связанных с возрастом, сеть остеоцитов является неотъемлемой частью передачи механического напряжения и связанных с ним микроповреждений минерализованной кости (микроскопические трещины или внутренние переломы) [43]. Они способны удалять перилакунарный матрикс (остеолиз), оказывая влияние на системный минеральный гомеостаз с высвобождением кальция в системный кровоток. Через рецепторы к паратиреоидному гормону, его растворимым лигандам, родственным к нему пептидам, склеростину и белку дентинового матрикса эти клетки индуцируют способность к перилакунарной резорбции остеокластов [44].
При определённых обстоятельствах, например, когда организм находится в условиях, требующих кальция, остеоциты экспрессируют маркёры остеокластов, такие как тартрат-резистентная кислая фосфатаза, катепсин K и карбоангидраза 2, чем запускают локальную деминерализацию и протеолиз лакунарного и периканаликулярного матрикса [45]. Генетическое исследование динамики экспрессии гена коллагена в остеоцитах в процессах внедрения и минерализации в костном матриксе продемонстрировало их участие в изменениях свойств кости, связанных со старением [46].
С возрастом и при некоторых видах патологии, таких как остеопороз, при замене старой или повреждённой кости новой определяется дисбаланс в сторону резорбции, что приводит к потере массы, и в этом случае остеоциты приобретают не свойственные им функции остеокластов. В отличие от короткоживущих остеокластов (несколько дней или недель) и остеобластов (несколько месяцев), остеоциты живут до 50 лет, и их гибель зависит от возраста скелета [16]. Причём основным фактором снижения прочности костей с возрастом бывает апоптоз остеоцитов (см. рис. 2). Усиление гибели остеоцитов связано с патологическими состояниями, включая старение, чрезмерную механическую стимуляцию, усталость/микроповреждение кости, разгрузку/неиспользование, дефицит эстрогенов и андрогенов, а также воспаление [47].
В свою очередь, ускоренный апоптоз индуцируется высоким уровнем кортизола, внутрицитозольным усилением образования активных форм кислорода и оксида азота с накоплением молекулярных структур, связанных с повреждением, высвобождением большого количества аденозинтрифосфата и нарушением аутофагии [47]. В результате ускоренного апоптоза остеоцитов пустые лакуны заполняются минералами — микропетроз, который предположительно служит компенсаторным механизмом старения кости [48].
Характерное сокращение остеоцитов и их сети во время старения приводит к резкому уменьшению клеточной поверхности, которая имеет решающее значение для эффективного обмена питательных веществ, кислорода и в целом жизнеспособности клеток, обеспечивающих механочувствительность и механотрансдукцию костей [40].
Независимым фактором риска развития дисфункции костного гомеостаза бывает окислительный стресс, который влияет на остеогенез, индуцированный остеобластами, и остеокласт-индуцированный остеокластогенез, тем самым приводя к заболеваниям костей, а именно к остеопорозу [32].
Аутофагия остеоцитов — механизм, посредством которого клеточный мусор попадает в лизосомы для деградации, — направлена на устранение повреждённых органелл, белков и оказывает решающее влияние на дифференцировку, апоптоз и выживание костных клеток, включая стволовые клетки костного мозга, остеобласты, остеокласты и остеоциты. Высокий уровень активных форм кислорода, обусловленный окислительным стрессом, вызывает аутофагию для защиты клеток от повреждения или апоптоза, но, к сожалению, эта функция клеток снижается с возрастом [49].
В регуляции аутофагии остеобластов, остеоцитов и остеокластов также принимают участие такие пути, как ROS/FOXO3, ROS/AMPK, ROS/Akt/mTOR и ROS/JNK/c-Jun. С другой стороны, инициирование чрезмерного окислительного стресса с активацией гена р53, разрывом митохондриальной мембраны, повреждением дезоксирибонуклеиновой кислоты (ДНК) и высвобождением цитохрома С приводит к индукции внутренних механизмов апоптоза. Также показано, что потеря дендритов запускает гибель остеоцитов, что приводит к образованию мёртвой, или остеонекротической, кости. Это повреждение не заживает путём корректирующего ремоделирования и перестаёт реагировать на механическую нагрузку [50].
Таким образом, можно предположить, что остеоциты в пожилом возрасте подвергаются чрезмерному и продолжительному стрессу, который вызывает несбалансированную аутофагию и апоптоз.
ОСТЕОКЛАСТЫ
Предшественниками остеокластов служат мононуклеарные гемопоэтические клетки миелоидного происхождения, которые преимущественно образуются в костном мозге. При повреждении и резорбции они привлекаются к поверхности кости хемокинами и другими факторами, в том числе фосфатом сфинзина-1 (см. рис. 1) [16].
Важную роль в активации путей передачи сигнала для образования из миелоидных предшественников многоядерных клеток — остеокластов — играет фактор TRAF6, который связывается с рецептором фактора некроза опухоли. Последующая дифференцировка остеокластов зависит от четырёх основных сигнальных путей: через активацию протоонкогенной тирозин-протеинкиназы (Src), ингибитора протеинкиназы киназы IkB (IKK), киназы, регулируемой внеклеточным сигналом (ERK) и c-янус-N-концевой киназы (JNK) [51]. Кроме того, в качестве стимулов могут быть специфические факторы транскрипции остеокластов, такие как Fos, p50 или ядерный фактор 1 активированных цитоплазматических Т-клеток (NFATc1) [29, 51].
Другой важный путь дифференцировки и активации остеокластов представлен моноцитарным колониестимулирующим фактором, рецептором к лиганду транскрипционного ядерного фактора-κB и цитокинами, продуцируемыми различными типами клеток, включая линию остеобластов [52]. Связывание моноцитарного колониестимулирующего фактора с рецепторами к c-Fms на поверхности преостеокластов приводит к увеличению экспрессии RANK.
Многоядерные остеокласты — короткоживущие клетки (2–4 нед). Как только они прикрепляются к поверхности кости, начинают функционировать (см. рис. 1). Эти клетки содержат комбинацию лизосомальных ферментов и ионов водорода для разрушения костного матрикса, состоящего из неорганической части (кристаллы фосфата кальция, гидроксиапатит) и органической (коллаген, протеогликаны и гликопротеины). В процессе резорбции остаются «вычерпанные» остеокластами участки костного матрикса (лакуны Хошипа). Как клетки мононуклеарной макрофагальной линии остеокласты могут переходить в «обратную» фазу, в процессе которой продолжаются разложение и переработка органического материала костного матрикса с одновременным высвобождением факторов роста для запуска его новообразования [16].
Показано, что остеокласты и их предшественники регулируют иммунные ответы, образование и функции остеобластов посредством прямого межклеточного контакта через рецепторы к лигандам эфриновых белков (eph-рецепторы), плексины (рецепторы к семафоринам) и посредством экспрессии кластокинов [51, 53]. Таким образом, остеокласты служат иммунными клетками, которые не только играют роль в резорбции костной ткани, но и функционируют в качестве регуляторов защиты организма [54, 55].
Пожилой возраст характеризуется повышенным костным обменом, при котором количество и активность остеокластов повышаются. Происходит ускоренный остеокластогенез, опосредованный остеобластами, что приводит к усилению экспрессии моноцитарного колониестимулирующего фактора и активатора лиганда ядерного фактора-κB на уровне костных стромальных клеток и остеобластов [29]. Другими важными факторами, связанными со старением и способствующими остеокластогенезу, резорбции и потере костной массы, являются: изменения внеклеточного матрикса, микропереломы, снижение механической нагрузки, усиление воспаления, выработка склеростина, снижение уровня тестостерона и эстрогенов, вторичный гиперпаратиреоз и повышенная экспрессия рецепторов c-Fms, RANK и активатора лиганда ядерного фактора-κB [56].
Дефицит эстрогенов приводит к повышенной секреции провоспалительных цитокинов, таких как интерлейкин-1β, фактор некроза опухоли α, интерлейкин-6, трансформирующий фактор роста β, которые модулируют сигнальный путь RANK, тем самым стимулируя образование и активацию остеокластов [57, 58]. Такие клетки принимают участие в деградации внеклеточного матрикса у пожилых людей, у которых происходит значительное увеличение, до 300%, β-изомеризации C-телопептида коллагена I типа [59, 60]. Остеокласты также продуцируют склеростин, который может способствовать нарушению костеобразования в старых костях [45].
Среди основных типов костных клеток остеокласты требуют очень низкого уровня активных форм кислорода для дифференцировки и функционирования. У пожилых людей возникает снижение апоптоза остеокластов по причине потери активности фермента каспазы 2, вызванной окислительным стрессом [25, 60].
ЗАКЛЮЧЕНИЕ
С возрастом нарушается процесс ремоделирования костной ткани, усиливается её резорбция и снижается костеобразование. Важнейшими клиническими проявлениями становятся остеопороз и риск переломов, причём пожилой возраст считают независимым фактором риска [2].
Усиление резорбции кости вследствие сложных метаболических процессов, вторичных по отношению к старению, происходит на фоне повышения количества и активности остеокластов, апоптоза остеобластов при снижении их метаболической активности, а также перераспределения остеогенной дифференцировки МСК в направлении адипоцитов. Анаболический ответ кости на механическую нагрузку снижается, так как проявляется дисфункциональность взаимодействия остеоцитов посредством дендритов с нарушением плотности лакун. И, наконец, усиление окислительного стресса коррелирует с ускорением процессов клеточного апоптоза, что также приводит к потере костной массы [50].
ДОПОЛНИТЕЛЬНАЯ ИНФОРМАЦИЯ
Вклад авторов. Н.Г.П. — идеология, анализ, редактирование рукописи, общее руководство; П.А.К. — методология, перевод статей; И.Н.Ч. — редактирование рукописи.
Источник финансирования. Исследование выполнено при финансовой поддержке государственного задания «Структурные и клеточно-молекулярные механизмы возрастного ремоделирования соединительной ткани при заболеваниях опорно-двигательного аппарата» №056-00055-24-00 от 14.01.2024.
Конфликт интересов. Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов по представленной статье.
Об авторах
Наталья Геннадьевна Плехова
Тихоокеанский государственный медицинский университет
Автор, ответственный за переписку.
Email: pl_nat@hotmail.com
ORCID iD: 0000-0002-8701-7213
SPIN-код: 2685-9578
д-р биол. наук, доц., зав., Междисциплинарный научно-исследовательский центр
Россия, г. ВладивостокПолина Александровна Криволуцкая
Тихоокеанский государственный медицинский университет
Email: vpo12345@mail.ru
ORCID iD: 0009-0002-5900-3938
асп., Междисциплинарный научно-исследовательский центр
Россия, г. ВладивостокИван Николаевич Черненко
Тихоокеанский государственный медицинский университет
Email: chernencrj2010@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-5261-810X
SPIN-код: 7872-1554
мл. науч. сотр., Междисциплинарный научно-исследовательский центр
Россия, г. ВладивостокСписок литературы
- Гантман А.А., Горблянский Ю.Ю., Конторович Е.П., Понамарева О.П. Концепция здорового старения на работе // Медицинский вестник Юга России. 2022. Т. 13, № 4. С. 5–13. doi: 10.21886/2219-8075-2022-13-4-5-13
- Fang H., Deng Z., Liu J., et al. The mechanism of bone remodeling after bone aging // Clin Interv Aging. 2022. Vol. 17. P. 405–415. doi: 10.2147/CIA.S349604
- Fernandez-Gonzalez F.J., Canigral A., López-Caballo J.L., et al. Recombinant osteoprotegerin effects during orthodontic movement in a rat model // Eur J Orthodontics. 2016. Vol. 38, N. 4. P. 379–385. doi: 10.1093/ejo/cjv056
- Jahani B., Vaidya R., Jin J.M., et al. Assessment of bovine cortical bone fracture behavior using impact microindentation as a surrogate of fracture toughness // JBMR Plus. 2024. Vol. 8, N. 2. P. ziad012. doi: 10.1093/jbmrpl/ziad012
- Rosenberg J.L., Woolley W., Elnunu I., et al. Effect of non-enzymatic glycation on collagen nanoscale mechanisms in diabetic and age-related bone fragility // Biocell. 2023 Vol. 47, N. 7. P. 1651–1659. doi: 10.32604/biocell.2023.028014
- Papastavrou A., Schmidt I., Deng K., Steinmann P. On age-dependent bone remodeling // J Biomech. 2020. Vol. 103. P. 109701. doi: 10.1016/j.jbiomech.2020.109701
- Zimmermann E.A., Schaible E., Bale H., et al. Age-related changes in the plasticity and toughness of human cortical bone at multiple length scales // Proc Natl Acad Sci USA. 2011. Vol. 108. P. 14416–14421. doi: 10.1073/pnas.1107966108
- Morgan E.F., Unnikrisnan G.U., Hussein A.I. Bone mechanical properties in healthy and diseased states // Annu Rev Biomed Eng. 2018. Vol. 20 P. 119–143. doi: 10.1146/annurevbioeng-062117-121139
- Koester K., Barth H., Ritchie R. Effect of aging on the transverse toughness of human cortical bone: Evaluation by R-curves // J Mech Beh Biomed Materials. 2011. Vol. 4. P. 1504–1513. doi: 10.1016/j.jmbbm.2011.05.020
- Garnero P. The contribution of collagen crosslinks to bone strength // Bonekey Rep. 2012. Vol. 182. P. 10. doi: 1038/bonekey.2012.182
- Zimmermann E.A., Schaible E., Gludovatz B., et al. Intrinsic mechanical behavior of femoral cortical bone in young, osteoporotic and bisphosphonate-treated individuals in low-and high energy fracture conditions // Sci Rep. 2016. P. 1–12. doi: 10.1038/srep21072
- Burr D.B. Changes in bone matrix properties with aging // Bone. 2019. Vol. 120. P. 85–93. doi: 10.1016/j.bone.2018.10.010
- Liu H., Jiang H., Liu X., Wang X. Physicochemical understanding of biomineralization by molecular vibrational spectroscopy: From mechanism to nature // Exploration (Beijing). 2023. Vol. 3, N. 6. P. 20230033. doi: 10.1002/EXP.20230033
- Pienkowski D., Wood C.L., Malluche H.H. Trabecular bone microcrack accumulation in patients treated with bisphosphonates for durations up to 16 years // J Orthop Res. 2023. Vol. 41, N. 5. P. 1033–1039. doi: 10.1002/jor.25441
- Wang X., Hua R., Ahsan A., et al. Age-related deterioration of bone toughness is related to diminishing amount of matrix glycosaminoglycans (Gags) // JBMR. 2018. Vol. 2. P. 164–173. doi: 10.1002/jbm4.10030
- Poundarik A.A., Boskey A., Gundberg C., Vashishth D. Biomolecular regulation, composition and nanoarchitecture of bone mineral // Sci Rep. 2018. Vol. 8. P. 1191. doi: 10.1038/s41598-018-19253-w
- Qin L., Liu W., Cao H., Xiao G. Molecular mechanosensors in osteocytes // Bone Res. 2020. Vol. 8. P. 23. doi: 10.1038/s41413-020-0099-y
- Lai P., Song Q., Yang C., et al. Loss of Rictor with aging in osteoblasts promotes age-related bone loss // Cell Death Dis. 2016. Vol. 7, N. 10. P. e2408. doi: 10.1038/cddis.2016.249
- Creecy A., Damrath J.G., Wallace J.M. Control of bone matrix properties by osteocytes // Front Endocrinol (Lausanne). 2021. Vol. 11. P. 578477. doi: 10.3389/fendo.2020.578477
- Zhang C., Xu S., Zhang S., et al. Ageing characteristics of bone indicated by transcriptomic and exosomal proteomic analysis of cortical bone cells // J Orthop Surg Res. 2019. Vol. 14, N. 1. P. 129. doi: 10.1186/s13018-019-1163-4
- Siddiqui J.A., Partridge N.C. Physiological bone remodeling: systemic regulation and growth factor involvement // Physiology (Bethesda). 2016. Vol. 31, N. 3. P. 233–245. doi: 10.1152/physiol.00061.2014
- Šromová V., Sobola D., Kaspar P. A brief review of bone cell function and importance // Cells. 2023. Vol. 12, N. 21. P. 2576. doi: 10.3390/cells12212576
- Katsimbri P. The biology of normal bone remodeling // Eur J Cancer Care (Engl). 2017. Vol. 26, N. 6. Р. 128–132. doi: 10.1111/ecc.12740
- Forte Y.S., Renovato-Martins M., Barja-Fidalgo C. Cellular and molecular mechanisms associating obesity to bone loss // Cells. 2023. Vol. 12, N. 4. P. 521. doi: 10.3390/cells12040521
- Rowe P., Koller A., Sharma S. Physiology, bone remodeling. In: StatPearls. Treasure Island (FL): StatPearls Publishing, 2024. PMID: 29763038.
- Almeida M. Aging mechanisms in bone // Bonekey Rep. 2012. Vol. 1. P. 102. doi: 10.1038/bonekey.2012.102
- Guyan F., Gianduzzo E., Waltenspül M., et al. Cortical thickness index and canal calcar ratio: A comparison of proximal femoral fractures and non-fractured femora in octogenarians to centenarians // J Clin Med. 2024. Vol. 13, N. 4. P. 981. doi: 10.3390/jcm13040981
- Chan C.K.F., Gulati G.S., Sinha R., et al. Identification of the human skeletal stem cell // Cell. 2018. Vol. 175, N. 1. P. 43–56.e21. doi: 10.1016/j.cell.2018.07.029
- Cardoneanu A., Rezus C., Tamba B.I., Rezus E. Bone cells metabolic changes induced by ageing // Subcell Biochem. 2023. Vol. 103. P. 13–29. doi: 10.1007/978-3-031-26576-1_2
- Paccou J., Penel G., Chauveau C., et al. Marrow adiposity and bone: Review of clinical implications // Bone. 2019. Vol. 118. P. 8–15. doi: 10.1016/j.bone.2018.02.008
- Qadir A., Liang S., Wu Z., et al. Senile osteoporosis: the involvement of differentiation and senescence of bone marrow stromal cells // Int J Mol Sci. 2020. Vol. 21. P. 349. doi: 10.3390/ijms21010349
- Al Saedi A., Bermeo S., Plotkin L., et al. Mechanisms of palmitate-induced lipotoxicity in osteocytes // Bone. 2019. Vol. 127. P. 353–359. doi: 10.1016/j.bone.2019.06.016
- Yu B., Huo L., Liu Y., et al. PGC-1α controls skeletal stem cell fate and bone-fat balance in osteoporosis and skeletal aging by inducing TAZ // Cell Stem Cell. 2018. Vol. 23. P. 615–623. doi: 10.1016/j.stem.2018.09.001
- Wang H., Chen Q., Lee S.H., et al. Impairment of osteoblast differentiation due to proliferation-independent telomere dysfunction in mouse models of accelerated aging // Aging Cell. 2012. Vol. 11. P. 704–713. doi: 10.1111/j.1474-9726.2012.00838.x
- Hoover M.Y., Ambrosi T.H., Steininger H.M., et al. Purification and functional characterization of novel human skeletal stem cell lineages // Nat Protoc. 2023. Vol. 18, N. 7. P. 2256–2282. doi: 10.1038/s41596-023-00836-5
- Tjempakasari A., Suroto H., Santoso D. Mesenchymal stem cell senescence and osteogenesis // Medicina (Kaunas). 2021. Vol. 58, N. 1. P. 61. doi: 10.3390/medicina58010061
- Li W., Jiang W.S., Su Y.R., et al. PINK1/Parkin-mediated mitophagy inhibits osteoblast apoptosis induced by advanced oxidation protein products // Cell Death Dis. 2023. Vol. 14, N. 2. P. 88. doi: 10.1038/s41419-023-05595-5
- Palumbo C., Ferretti M. The osteocyte: from “prisoner” to “orchestrator” // J Funct Morphol Kinesiol. 2021. Vol. 6, N. 1. P. 28. doi: 10.3390/jfmk6010028
- Ferretti M., Palumbo C. Static osteogenesis versus dynamic osteogenesis: A comparison between two different types of bone formation // Applied Sciences. 2021. Vol. 11, N. 5. P. 2025. doi: 10.3390/app11052025
- Tresguerres F.G.F., Torres J., López-Quiles J., et al. The osteocyte: A multifunctional cell within the bone // Ann Anat. 2020. Vol. 227. P. 151422. doi: 10.1016/j.aanat.2019.151422
- Corrado A., Cici D., Rotondo C., et al. Molecular basis of bone aging // Int J Mol Sci. 2020. Vol. 21, N. 10. P. 3679. doi: 10.3390/ijms21103679
- Dallas S.L., Prideaux M., Bonewald L.F. The osteocyte: An endocrine cell and more // Endocr Rev. 2013. Vol. 34, N. 5. P. 658–690. doi: 10.1210/er.2012-1026
- Kitase Y., Prideaux M. Targeting osteocytes vs osteoblasts // Bone. 2023. Vol. 170. P. 116724. doi: 10.1016/j.bone.2023.116724
- Tsourdi E., Jähn K., Rauner M., et al. Physiological and pathological osteocytic osteolysis // J Musculoskelet Neuronal Interact. 2018. Vol. 18, N. 3. P. 292–303. PMID: 30179206
- Kogawa M., Wijenayak A.R., Ormsby R., et al. Sclerostin regulates release of bone mineral by osteocytes by induction of carbonic anhydrase 2 // J Bone Miner Res. 2013. Vol. 28. P. 2436–2448. doi: 10.1002/jbmr.2003
- Shiflett L.A., Tiede-Lewis L.M., Xie Y., et al. Collagen dynamics during the process of osteocyte embedding and mineralization // Front Cell Dev Biol. 2019. Vol. 7. P. 178. doi: 10.3389/fcell.2019.00178
- Cui J., Shibata Y., Zhu T., et al. Osteocytes in bone aging: Advances, challenges, and future perspectives // Ageing Res Rev. 2022. Vol. 77. P. 101608. doi: 10.1016/j.arr.2022.101608
- Milovanovic P., Busse B. Phenomenon of osteocyte lacunar mineralization: Indicator of former osteocyte death and a novel marker of impaired bone quality? // Endocr Connect. 2020. Vol. 9, N. 4. Р. R70–R80. doi: 10.1530/EC-19-0531
- Zhu C., Shen S., Zhang S., et al. Autophagy in bone remodeling: A regulator of oxidative stress // Front Endocrinol (Lausanne). 2022. Vol. 13. P. 898634. doi: 10.3389/fendo.2022.898634
- Plotkin L.I. Apoptotic osteocytes and the control of targeted bone resorption // Curr Osteoporos Rep. 2014. Vol. 12. P. 121–126. doi: 10.1007/s11914-014-0194-3
- Daponte V., Henke K., Drissi H. Current perspectives on the multiple roles of osteoclasts: Mechanisms of osteoclast-osteoblast communication and potential clinical implications // Elife. 2024. Vol. 13. P. e95083. doi: 10.7554/eLife.95083
- Boyce B.F. Advances in the regulation of osteoclasts and osteoclast functions // J Dent Res. 2013. Vol. 92, N. 10. P. 860–867. doi: 10.1177/0022034513500306
- Teti A. Mechanisms of osteoclast-dependent bone formation // Bonekey Rep. 2013. Vol. 2. P. 449. doi: 10.1038/bonekey.2013.183
- Borggaard X.G., Nielsen M.H., Delaisse J.M., et al. Spatial organization of osteoclastic coupling factors and their receptors at human bone remodeling sites // Front Mol Biosci. 2022. Vol. 9. P. 896841. doi: 10.3389/fmolb.2022.896841
- Кабалык М.А. Биомаркёры и участники ремоделирования субхондральной кости при остеоартрозе // Тихоокеанский медицинский журнал. 2017. № 1. С. 36–41. doi: 10.17238/PmJ1609-1175.2017.1.37-41
- Sautchuk Jr.R., Eliseev R.A. Cell energy metabolism and bone formation // Bone Rep. 2022. Vol. 16. P. 101594. doi: 10.1016/j.bonr.2022.101594
- Omi M., Mishina Y. Roles of osteoclasts in alveolar bone remodeling // Genesis. 2022. Vol. 60, N. 8–9. P. e23490. doi: 10.1002/dvg.23490
- Yao Z., Getting S.J., Locke I.C. Regulation of TNF-induced osteoclast differentiation // Cells. 2021. Vol. 11, N. 1. P. 132. doi: 10.3390/cells11010132
- Wang X., Yamauchi K., Mitsunaga T. A review on osteoclast diseases and osteoclastogenesis inhibitors recently developed from natural resources // Fitoterapia. 2020. Vol. 142. P. 104482. doi: 10.1016/j.fitote.2020.104482
- Marques-Carvalho A., Kim H.N., Almeida M. The role of reactive oxygen species in bone cell physiology and pathophysiology // Bone Rep. 2023. Vol. 19. P. 101664. doi: 10.1016/j.bonr.2023.101664
Дополнительные файлы
