Дезоксирибонуклеазная активность стафилококков, выделенных в травматологическом стационаре
- Авторы: Краснощекова Е.Е.1
-
Учреждения:
- Казанский ГИДУВ им. В. И. Ленина и Казанский институт травматологии и ортопедии
- Выпуск: Том 48, № 3 (1967)
- Страницы: 34-36
- Тип: Статьи
- Статья получена: 24.01.2021
- Статья одобрена: 24.01.2021
- Статья опубликована: 29.05.1967
- URL: https://kazanmedjournal.ru/kazanmedj/article/view/59154
- DOI: https://doi.org/10.17816/kazmj59154
- ID: 59154
Цитировать
Полный текст
Аннотация
По мнению некоторых авторов, ДНКазы патогенных бактерий играют определенную роль в патогенезе инфекционных заболеваний. Общепризнанной является тесная взаимосвязь патогенности бактерий с особенностями их метаболизма.
Ключевые слова
Полный текст
По мнению некоторых авторов, ДНКазы патогенных бактерий играют определенную роль в патогенезе инфекционных заболеваний. Общепризнанной является тесная взаимосвязь патогенности бактерий с особенностями их метаболизма.
Мы поставили перед собой задачу выяснить, способны ли стафилококки вызывать деполимеризацию ДНК, и выявить корреляцию ДНКазной активности штаммов с общепризнанными факторами патогенности стафилококков. Кроме того, мы стремились изучить вопрос о связи ДНКазной активности и всего комплекса признаков вирулентности свежевыделенных штаммов с характером вызываемых ими хирургических заболеваний.
Исследованию были подвергнуты стафилококки, выделенные от больных, бактерионосителей, из воздуха и с различных объектов внешней среды в травматологическом стационаре. Всего исследовано 323 штамма стафилококков, из них 176 свежевыделенных и 147 лабораторных с давностью выделения 1—10 лет.
Приготовление среды с ДНК. Навеску ДНК (США) из расчета 2 мг на 1 мл среды вносили в пробирку с 5 мл стерильного хоттингеровского бульона (pH = 8,0 — 8,4) и растворяли при подогревании над газовой горелкой, а затем осторожно кипятили в течение 3—5 мин. Полученный раствор ДНК переносили во флакон со стерильным расплавленным горячим хоттингеровским агаром (95 мл, pH — 8,0—8,4). Содержимое флакона быстро и тщательно перемешивали и разливали в чашки Петри по 16—18 мл (в зависимости от диаметра чашки).
Для обнаружения дезоксирибонуклеазы 1 петлю суточной агаровой культуры лококка засевали «бляшкой» занную среду. На одну чашку различных штаммов. Посевы мостате при 37° 24 часа, затем в таком количестве, чтобы кислота покрыла всю поверхность среды. Через 5—10 мин. кислоту удаляли и производили учет результатов. Если культура обладала способностью выделять в среду дезоксирибонуклеазу, вокруг «бляшек» образовывалась прозрачная зона, состоящая из продуктов деполимеризации ДНК, не осаждаемых 1 н. НС1. Вся остальная поверхность среды покрывалась мутным преципитатом из осажденной соляной кислотой ДНК (рис. 1).
О степени ДНКазной активности стафилококков судили по диаметру зоны просветления, измеряемому в миллиметрах. Зоны диаметром 13—17 мм отмечались условно « + », 18—22 мм — «++», 23— 27мм— « +++ ».
В первых опытах добавление к среде ионов Са активность ДНКазы. Поэтому в дальнейших исследованиях мы применяли среду без добавления Са.
Рис.1 Изображение ДНКазной реакции стафилококков. Вокруг макроколоний видны зоны просветления.
Для определения ДНКазной активности стафилококков был применен метод Джеффриса (1957) в модификации Ди Сальво (1959) и в несколько упрощенном нами виде.
Из 176 штаммов свежевыделенных стафилококков ДНКазной активностью обладали 142 (80,5%). Из 147 штаммов лабораторных культур, сохранявшихся в полужидком агаре под слоем вазелинового масла в течение 1—10 лет, ДНКазу продуцировали 145 (98,3%). Это указывает на высокую стабильность способности патогенных стафилококков к синтезу экстрацеллюлярной ДНКазы. У некоторых лабораторных штаммов отмечалась даже более широкая зона деполимеризации ДНК, чем у свежевыделенных культур. Аналогичные данные были получены Д. В. Юсуповой (1964), изучавшей ДНКазную активность С. dîphtheriae.
Критериями корреляции между ДНКазной активностью стафилококков и общепризнанными факторами их вирулентности были избраны: способность образовывать золотистый пигмент, продуцировать гемотоксин, плазмокоагулазу, гиалуронидазу и лецитиназу. Перечисленные признаки патогенности определялись по общепринятым методам (Г. Н. Чистович, 1961; Г. В. Выгодчиков, 1963).
Из 287 штаммов ДНКазоположительных стафилококков 286 коагулировали плазму. Исключением явился лишь 1 штамм, который давал слабую зону деполимеризации ДНК (14 мм). Он был золотистым, гемолитическим, ферментировал маннит, лизировался стафилофагом и по комплексу признаков был отнесен к стафилококкам с ослабленной патогенностью.
У ДНКазоположительных стафилококков часто обнаруживались и другие признаки патогенности: лецитиназа (88,3%), гемотоксин (83,4%), золотистый пигмент (84,8%), гиалуронидаза (60%). Следует отметить, что у стафилококков с высокой активностью гиалуронидазы диаметр зоны деполимеризации ДНК был больше, чем у стафилококков с низкой активностью. Все штаммы стафилококков, способные расщеплять лецитины и гиалуроновую кислоту, в 100% случаев продуцировали ДНКазу.
Из 36 штаммов ДНКазоотрицательных стафилококков ни один не обладал коагулазой, лецитиназой и гиалуронидазой; лишь 22 штамма из них давали гемолиз на кровяном агаре и один продуцировал золотистый пигмент. Как известно, наличие только гемолиза не может указывать на вирулентность штамма (Г. В. Выгодчиков, Г. Н. Чистович, А. Я. Еселевич).
Вирулентные стафилококки, обладающие «агрессивными» ферментами, способны вызывать деполимеризацию ДНК. Активность ДНКазы коррелирует с различными признаками патогенности и особенно с плазмокоагулазой. Невирулентные стафилококки в наших опытах внеклеточной ДНКазы не выделяли.
Наличие ДНКазы у патогенных стафилококков и отсутствие ее у непатогениых, на наш взгляд, дает основание считать этот фермент составной частью «вирулентного оснащения» микроба. Наше предположение согласуется с мнением Л. Месробяну, Э. Пэунеску, Р. Дюбо и Ван-Хейнингена, что ДНКаза, вызывая деполимеризацию ДНК и разжижая вязкие гнойные экссудаты, содержащие эту нуклеиновую кислоту, играет важную роль в процессе распространения микроба-возбудителя и в генерализации инфекции.
Для изучения вопроса о связи ДНКазной активности и всего комплекса факторов вирулентности свежевыделенных стафилококков с характером заболеваний были проведены наблюдения на больных ортопедо-травматологического профиля с осложненными травмами, с острыми гнойными процессами, послеоперационными осложнениями, хроническим остеомиелитом, с длительно незаживающими язвами и ранами.
При бактериологическом исследовании патологического материала от этих больных было выделено 90 штаммов патогенных плазмокоагулирующих стафилококков. Все они оказались ДНКазоположительными, причем стафилококки, продуцирующие ДНКазу на «+ +», обнаруживались почти в два раза чаще при острых заболеваниях, тогда как стафилококки с зоной деполимеризации ДНК на «+»—преимущественно при хронических. Высокая ДНКазная активность у стафилококков, выделенных при острых хирургических заболеваниях, вероятно, не случайное явление: такая же закономерность была выявлена и в отношении других ферментов — токсинов. Стафилококки, выделенные при острых заболеваниях, как правило, обладали большей лецитиназной и гиалуронидазной активностью и чаще продуцировали гемотоксин.
Полученные материалы показывают, что ДНКазный тест является одним из критериев патогенности стафилококков и может быть рекомендован для применения в лабораторной практике с диагностической целью
Об авторах
Е. Е. Краснощекова
Казанский ГИДУВ им. В. И. Ленина и Казанский институт травматологии и ортопедии
Автор, ответственный за переписку.
Email: info@eco-vector.com
Кафедра микробиологии
РоссияСписок литературы
- Выгодчиков Г. В. В кн.: Стафилококковые инфекции. Медгиз, М., 1963.
- Дюбо Р. В кн.: Биохимические факторы в микробных заболеваниях. ИЛ, М., 1967.
- Еселевич А. Я. Гиалуронидаза стафилококков, выделенных при хронических раневых процессах. Автореф. канд. дисс., Казань, 1964
- Чистович Г. Н. Патогенез стафилококковых инфекций. Медгиз, Л., 1961.
- Mesrobeanu L.» Pàunescu Е. В кн.: Физиология бактерий, Бухарест, 1963, стр. 718—719.
- Di Salvo J. W. Med. Techn. Bull., 1958, 9, 5, 191—196.
- Jeffries C. D., Holtman W. F., Gu se D. J. Bact., 1957, 73, 4, 590.
Дополнительные файлы
![](/img/style/loading.gif)