Применение рибофлавина в качестве фотопротектора в лазерной рефракционной хирургии роговицы
- Авторы: Султанова А.И.1
-
Учреждения:
- Национальный центр офтальмологии им. Зарифы Алиевой
- Выпуск: Том 97, № 3 (2016)
- Страницы: 410-414
- Тип: Обзоры
- Статья получена: 22.06.2016
- Статья опубликована: 15.06.2016
- URL: https://kazanmedjournal.ru/kazanmedj/article/view/2996
- DOI: https://doi.org/10.17750/KMJ2016-410
- ID: 2996
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Проанализированы работы различных авторов о роли рибофлавина в подавлении оксидативного стресса в органах и тканях. В экспериментальных и клинических исследованиях было показано, что рибофлавин (витамин В2) обладает антиоксидантными свойствами и выступает в качестве кофермента для окислительно-восстановительных ферментов, влияя на восстановление глутатиона. В исследованиях российских учёных было установлено, что существует значимая отрицательная линейная корреляция между уровнем малонового диальдегида в сыворотке крови и потреблением рибофлавина. В ряде исследований было показано, что дефицит рибофлавина влияет на активность антиоксидантных ферментов, включая глюкозопероксидазу, супероксиддисмутазу и каталазу, что приводит к снижению антиоксидантного потенциала в клетках тканей. Целесообразность применения рибофлавина в лазерной рефракционной хирургии обусловлена развитием оксидативного стресса в роговице в ответ на вмешательство и необходимостью его коррекции. В фоторефракционной хирургии роговицы это усугубляется индуцированным абляцией вторичным ультрафиолетовым излучением. В работах последних лет показано, что оксидативное действие данного излучения ослабляется при проведении эксимерлазерной рефракционной абляции после предварительного насыщения стромы раствором рибофлавина. Экспериментальные исследования показали, что как капельное, так и аэрозольное насыщение роговицы 0,25% изотоническим раствором рибофлавина не влияет на точность эксимерлазерной абляции стромы роговицы. В клинике проведение трансэпителиальной фоторефракционной кератэктомии с фотопротекцией рибофлавином при миопии с астигматизмом различной степени и без астигматизма минимизировало роговичный синдром, ответную асептическую воспалительную реакцию. Это ускоряло эпителизацию и сопровождалось ранней стабилизацией оптометрических показателей, что подтвердило целесообразность применения рибофлавина в качестве фотопротектора в лазерной рефракционной хирургии роговицы.
Ключевые слова
Об авторах
Айтен Ихтиар кызы Султанова
Национальный центр офтальмологии им. Зарифы Алиевой
Автор, ответственный за переписку.
Email: rjafarova@bk.ru
Список литературы
- Бикбов М.М., Бикбова Г.М. Эктазии роговицы (патогенез, патоморфология, клиника, диагностика, лечение). М.: Офтальмология. 2011; 162 c.
- Корниловский И.М., Султанова А.И. Новые этапы развития технологии трансэпителиальной ФРК и её оптимизации на основе фотопротекции. Катарактальн. и рефракцион. хир. 2013; 13 (3): 15-19.
- Корниловский И.М., Султанова А.И., Миришова М.Ф., Бурцев А.А. Эффекты фотопротекции и кросслинкинга при новой технологии фоторефракционной абляции. Соврем. технол. в офтальмол. 2014; 14 (3): 161-163.
- Корниловский И.М., Султанова А.И., Миришова М.Ф., Сафарова А.Н. Первые клинические результаты лазерной рефракционной хирургии роговицы с фотопротекцией. Катарактальн. и рефракцион. хир. 2014; 14 (1): 21-25.
- Корниловский И.М., Бурцев А.А., Султанова А.И. и др. Трансэпителиальная ФРК с фотопротекцией и эффектом кросслинкинга. Катарактальн. и рефракцион. хир. 2015; 15 (3): 27-33.
- Султанова А.И., Миришова М.Ф. Эффект фотопротекции при рефракционной эксимерлазерной абляции роговицы, насыщенной рибофлавином. Oftalmologiya, elmi-praktik jurnal, Bakı. 2014; 14 (3): 84-87.
- Alio J.L., Javaloy J. Corneal inflammation following corneal photoablative refractive surgery with excimer laser. Surv. Ophthalmol. 2013; 58: 11-25. http://dx.doi.org/10.1016/j.survophthal.2012.04.005
- Ambrosio G., Flaherty J.T., Duilio C. et al. Oxygen radicals generated at reflow induce peroxidation of membrane lipids in reperfused hearts. J. Clin. Invest. 1991; 87: 2056-2206. http://dx.doi.org/10.1172/JCI115236
- Ashoori M., Saedisomeolia A. Riboflavin (vitamin B2) and oxidative stress: a review. Brit. J. Nutr. 2014; III: 1985-1991. http://dx.doi.org/10.1017/S0007114514000178
- Bates J. Glutathione and related indices in rat lenses, liver and red cells dring riboflavin deficiency and its correction. Exp. Eye Res. 1991; 53: 123-130. http://dx.doi.org/10.1016/0014-4835(91)90154-7
- Betz A.L., Ren X.D., Ennis S.R. et al. Riboflavin reduces edema in focal cerebral ischemia. Acta Neurochir. Suppl. (Wien). 1994; 60: 314-317. http://dx.doi.org/10.1007/978-3-7091-9334-1_84
- Bolli R., Zughaib M., Li X.Y. et al. Recurrent ischemia in the canine heart causes recurrent bursts of free radical production that have a cumulative effect on contractile function. A pathophysiological basis for chronic myocardial «stunning». J. Clin. Invest. 1995; 96:1066-1084. http://dx.doi.org/10.1172/JCI118093
- Brady P.S., Brady L.J., Parsons M.J., et al. Effects of riboflavin deficiency on growth and glutathione peroxidase system enzymes in the baby pig. J. Nutr. 1979; 109: 1615-1622.
- Carden D.L., Granger D.N. Pathophysiology of ischaemia-reperfusion injury. J. Pathol. 2000; 190: 255-266. http://dx.doi.org/10.1002/(SICI)1096-9896(200002)190:3<255::AID-PATH526>3.0.CO;2-6
- Cohen D., Chuk R., Berman G. Et al. Ablation spectra of human cornea. J. Biomed. Opt. 2001; 6 (3): 339-343. http://dx.doi.org/10.1117/1.1380670
- Christensen H.N. Riboflavin can protect tissue from oxidative injury. Nutr. Rev. 1993; 51: 149-150.
- Das B.S., Thurnham D.I., Patnaik J.K. et al. Increased plasma lipid peroxidation in riboflavin-deficient, malaria infected children. Am. J. Clin. Nutr. 1990; 51: 859-863.
- Dutta P., Rivlin R.S., Pinto J. Enhanced depletion of lens reduced glutathione Adriamycin in riboflavin-deficient rats. Biochem. Pharmacol. 1990; 40: 1111-1115. http://dx.doi.org/10.1016/0006-2952(90)90500-K
- Hayes J.D., McLellan L.I. Glutathione and glutathionedependent enzymes represent a co-ordinately regulated defence against oxidative stress. Free Radic. Res. 1999; 31: 273-300. http://dx.doi.org/10.1080/10715769900300851
- Hirano H., Hamajima S., Horiuchi S. et al. Effects of B2-deficiency on lipoperoxide and its scavenging system in the rat lens. Int. J. Vitam. Nutr. Res. 1983; 53: 377-382.
- Horiuchi S., Hirano H., Ono S. Reduced and oxidized glutathione concentrations in the lenses of riboflavindeficient rats. J. Nutr. Sci. Vitaminol. (Tokyo). 1984; 30: 401-403. http://dx.doi.org/10.3177/jnsv.30.401
- Huang J., Tian L., Wu X. et al. Effects of dietary riboflavin levels on antioxidant defense of the juvenile grouper Epinephelus coioides. Fish Physiol. Biochem. 2010; 36: 55-62. http://dx.doi.org/10.1007/s10695-008-9279-1
- Iwanaga K., Hasegawa T., Hultquist D.E. et al. Riboflavin-mediated reduction of oxidant injury, rejection, and vasculopathy after cardiac allotransplantation. Transplantation. 2007; 83: 747-753. http://dx.doi.org/10.1097/01.tp.0000256283.06469.d4
- George B.O., Ojegbemi O. Oxidative stress and the effect of riboflavin supplementation in individuals with uncomplicated malaria infection. J. Biotechnol. 2009; 8: 849-853.
- Kaplowitz N., Aw T.Y., Ookhtens M. The regulation of hepatic glutathione. Annu. Rev. Pharmacol. Toxicol. 1985; 25: 715-744. http://dx.doi.org/10.1146/annurev.pa.25.040185.003435
- Kodentsova V.M., Vrzhesinskaia O.A., Beketova N.A. et al. The connection between vitamin and antioxidant status of the children with decreased hemoglobin level. Vopr. Pitan. 2003; 72: 3-7.
- Kukielka G.L., Smith C.W., Manning A.M. et al. Induction of interleukin-6 synthesis in the myocardium. Potential role in postreperfusion inflammatory injury. Circulation. 1995; 92: 1866-1875. http://dx.doi.org/10.1161/01.CIR.92.7.1866
- Lee S.S., Ye J.H., Jones D.P. et al. Correlation of H2O2 production and liver catalase during riboflavin deficiency and repletion in mammals. Biochem. Biophys. Res. Commun. 1983; 117: 788-793. http://dx.doi.org/10.1016/0006-291X(83)91666-2
- Liang H., Liu Q., Xu J. The effect of riboflavin on lipid peroxidation in rats. Wei. Sheng Yan Jiu. 1999; 28: 370-371.
- Mack C.P., Hultquist D.E., Shlafer M. Myocardial flavin reductase and riboflavin: a potential role in decreasing reoxygenation injury. Biochem. Biophys. Res. Commun. 1995; 212: 35-40. http://dx.doi.org/10.1006/bbrc.1995.1932
- Mulherin D.M., Thurnham D.I., Situnayake R.D. Glutathione reductase activity, riboflavin status, and disease activity in rheumatoid arthritis. Ann. Rheum. Dis. 1996; 55: 837-840. http://dx.doi.org/10.1136/ard.55.11.837
- Padayatty S.J., Katz A., Wang Y. et al. Vitamin C as an antioxidant: evaluation of its role in disease prevention. J. Am. Coll. Nutr. 2003; 22: 18-35. http://dx.doi.org/10.1080/07315724.2003.10719272
- Powers H.J., Thurnham D.I. Riboflavin deficiency in man: effects on haemoglobin and reduced glutathione in erythrocytes of different ages. Br. J. Nutr. 1981; 46: 257-266. http://dx.doi.org/10.1079/BJN19810031
- Rao P.V., Bhat K.S. Influence dietary riboflavin deficiency on lenticular glutathione redox cycle, lipid peroxidation, and free radical scavengers in the rat. J. Clin. Biochem. Nutr. 1989; 6: 195-204. http://dx.doi.org/10.3164/jcbn.6.195
- Rogers K.M., Augusteyn R.C. Glutathione reductase in normal and cataractous human lenses. Exp. Eye Res. 1978; 27: 719-721. http://dx.doi.org/10.1016/0014-4835(78)90041-6
- Seekamp A., Hultquist D.E., Till G.O. Protection by vitamin B2 against oxidant-mediated acute lung injury. Inflammation. 1999; 23: 449-460. http://dx.doi.org/10.1023/A:1021965026580
- Sherif A.M. Accelerated versus conventional corneal collagen cross-linking in treatment of mild keratoconus: a comparative study. Clin. Ophthalmol. 2014; 8: 1435-1440. http://dx.doi.org/10.2147/OPTH.S59840
- Taniguchi M., Hara T. Effects of riboflavin and selenium deficiencies on glutathione and its relating enzyme activities with respect to lipid peroxide content of rat livers. J. Nutr. Sci. Vitaminol. (Tokyo). 1983; 29: 283-292. http://dx.doi.org/10.3177/jnsv.29.283
- Tomas-Juan J., Murueta-Goyena Larrañaga A., Hanneken L. Corneal regeneration after photorefractive keratectomy: a review. J. Optom. 2015; 8 (3): 149-169. http://dx.doi.org/10.1016/j.optom.2014.09.001
- Tuft S., Al-Dhahir R., Dyer P., Zahao Z. Characterization of fluorescence spectra produced by excimer laser irradiation of cornea. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 1989; 31: 1512-1518.
- Tumkiratiwong P., Tungtrongchitr R., Migasena P. et al. Antioxidant enzyme levels in the erythrocytes of riboflavindeficient and Trichinella spiralis-infected rats. Southeast Asian J. Trop. Med. Public Health. 2003; 34: 480-485.
- Traber M.G., Atkinson J. Vitamin E, antioxidant and nothing more. Free Radic. Biol. Med. 2007; 43: 4-15. http://dx.doi.org/10.1016/j.freeradbiomed.2007.03.024
- Wang G., Li W., Lu X. et al. Riboflavin alleviates cardiac failure in type I diabetic cardiomyopathy. Heart Int. 2011; 6: 21. http://dx.doi.org/10.4081/hi.2011.e21
- Wang S., Mei J., Chen Q. et al. Effect of beta-carotene and riboflavin on lipid peroxidation in rats. Acta Nutr. Sin. 1999; 21: 22-27.
- Young A.J., Lowe G.M. Antioxidant and prooxidant properties of carotenoids. Arch. Biochem. Biophys. 2001; 385: 20-27. http://dx.doi.org/10.1006/abbi.2000.2149