Методы локальной антимикробной профилактики инфекции области хирургического вмешательства

Обложка


Цитировать

Полный текст

Аннотация

В последнее время с целью профилактики инфекции области хирургического вмешательства разрабатывают и успешно внедряют новые методы локальной антимикробной профилактики, позволяющие создать высокие концентрации лекарственных препаратов в оперированных тканях и препятствовать миграции бактериальной флоры. В обзорной статье изложены основные методы, используемые для локального воздействия на микрофлору и направленные на профилактику инфекции области хирургического вмешательства. Последние включают пред-, интра- и послеоперационные мероприятия. Оптимизации предоперационных методов можно достичь путём совершенствования способов обработки операционного поля. Значительное внимание в обзоре уделено интраоперационным мероприятиям: использованию хирургических перчаток с антимикробными свойствами, сетчатых имплантатов с противомикробными свойствами для ненатяжной герниопластики, этапных орошений операционной раны антибактериальными препаратами в процессе ушивания последней, а также перспективам использования бактериофагов в абдоминальной хирургии. С целью повышения биологической герметичности кишечного шва некоторые авторы предлагают использовать биодеградируемые имплантаты, пропитанные антибиотиками. В обзоре отражены возможности применения биологически активных (антимикробных) шовных материалов, использование которых оказалось весьма эффективным на всех этапах операции: от наложения кишечных анастомозов до кожного шва. Широкий спектр антимикробных хирургических шовных материалов, содержащих антибактериальные препараты и изготовленных на основе нитей с разными сроками биодеструкции, позволяет рекомендовать дифференцированный подход к выбору шовного материала в зависимости от этапа операции и регенеративных свойств сшиваемых тканей. Основные мероприятия, рекомендуемые в раннем послеоперационном периоде, заключаются в укрытии раны специальными раневыми покрытиями, предупреждающими вероятную контаминацию, и совершенствовании методов проточно-аспирационного дренирования.

Полный текст

Инфекции области хирургического вмешательства (ИОХВ) до настоящего времени остаются одной из наиболее актуальных проблем абдоминальной хирургии [1–5]. Возникновению местных осложнений гнойно-воспалительного генеза способствует ряд факторов, среди которых ведущее значение имеет эндогенная микробная контаминация зоны операции [2, 6]. К сожалению, местное действие противомикробных препаратов весьма ограничено вследствие резистентности микробной флоры, выраженного посттравматического воспаления в зоне операции, формирования микробных биоплёнок на имплантатах и шовных материалах, других причин [7, 8]. Улучшить результаты хирургического лечения можно путём использования методов антибактериальной профилактики в области оперативного вмешательства [9, 10].

В первую очередь некоторые авторы предлагают уделять внимание подготовке и стерилизации операционного поля по общепринятым методикам [11]. Использование новых методов обработки кожных покровов в месте предстоящего разреза, в частности применение газового потока монооксида азота с помощью аппарата «Плазон», способствует купированию воспалительных явлений и снижению раневых осложнений инфекционного генеза [6].

Большинство исследователей предлагают использовать различные интраоперационные методы антимикробной профилактики. Так, в качестве профилактики ИОХВ предлагают использовать хирургические перчатки с нанесённым изнутри промышленным способом покрытием, содержащим хлоргексидина биглюконат (производство Gammex; Ansell Ltd.). При этом отмечают эффективное подавление роста резистентной микрофлоры рук медицинского персонала по сравнению с контрольной группой [12].

Значительное внимание уделено совершенствованию методов герметизации швов полых органов. При наложении межкишечных анастомозов авторы предлагают использовать фибрин-коллагеновую субстанцию «ТахоКомб», насыщенную растворами антибактериальных препаратов, таких как ампициллин, гентамицин, цефтриаксон, ципрофлоксацин, меропенем и метронидазол. В эксперименте in vitro изучена поглотительная способность пластин «ТахоКомба» при нанесении растворов пипеткой и их антибактериальные свойства в отношении часто высеваемой микробной флоры. Исследование у лабораторных животных бактериальной проницаемости межкишечного анастомоза, укрытого фибрин-коллагеновой субстанцией с противомикробными свойствами, свидетельствовало о повышении механической прочности и достоверном снижении бактериальной проницаемости сформированных соустий [13]. Применение антимикробной субстанции «ТахоКомб» при хирургическом лечении заболеваний ободочной кишки позволило сократить частоту несостоятельности анастомоза с 3,5–12,5 до 0,5–0,6% и сократить количество ИОХВ с 10,5 до 5,3% [13, 14].

Учитывая вероятность отторжения сетчатых эндопротезов вследствие микробного инфицирования при осуществлении ненатяжной герниопластики [15], группа исследователей в эксперименте in vitro и in vivo изучала возможность профилактики адгезии и инфицирования монофиламентных хирургических сетчатых эндопротезов патогенными микроорганизмами (Staphylococcus spp.) путём предварительного погружения имплантатов в растворы антимикробных препаратов (амоксициллин + клавулановая кислота, ванкомицин) [16]. Фиксация нанокластеров серебра или химическое осаждение металла на поверхность имплантата придаёт последнему пролонгированные антисептические свойства и предупреждает образование микробных биоплёнок, благодаря чему снижается количество местных инфекционных осложнений при герниопластике [15].

Другой имплантат для ненатяжной герниопластики изготовлен из капрона, импрегнированного спиртовыми растворами антибиотиков (эритромицина, хлорамфеникола).

Экспозиция сеток составляет 22–24 ч, затем осуществляют фиксацию препаратов 7% ацетоновым раствором медицинского клея «Сульфакрилат». Экспериментальные исследования выявили эффективное и продолжительное антибактериальное действие имплантата после извлечения из мягких тканей лабораторных животных в отношении основных представителей грамположительной и грамотрицательной флоры, включая Pseudomonas aeruginosa. Применение антимикробного сетчатого эндопротеза в клинической практике при оперативном лечении больных вентральными грыжами позволило сократить частоту нагноения ран с 17,5 до 3,0% [3].

В настоящее время весьма востребованы биологически активные хирургические нити. Одними из первых были разработаны шовные материалы «Капромед» [17], антибактериальные свойства которых обеспечены путём включения в их состав гидроксиметилхиноксалиндиоксида, хиноксидина, гентамицина, канамицина, цефазолина и йода.

Применение нитей «Капромед» в клинической практике при наложении кишечных швов, формировании анастомозов и пластике брюшной стенки способствовало снижению частоты раневых нагноений с 11,7 до 1,8% [18]. Разработанный позже шовный материал «Капроаг» содержит антисептик хлоргексидина биглюконат. Применение нитей «Капроаг» при хирургическом лечении больных гинекологической патологии позволило снизить частоту развития ИОХВ с 20 до 12% [19].

Широко известны антимикробные шовные материалы, в состав которых введён доксициклин («Никант») или ципрофлоксацин («Тверан»). В эксперименте доказана высокая и пролонгированная (до 10–14-х суток) антибактериальная активность опытных образцов шовных материалов, выявлено положительное влияние нитей на заживление толстокишечных и лапаротомных ран, а также снижение выраженности спаечного процесса в брюшной полости [20]. Применение новых антимикробных нитей «Никант» и «Тверан» для выполнения операций у пациентов с острыми и хроническими заболеваниями брюшной полости и передней брюшной стенки способствовало снижению количества местных послеоперационных осложнений благодаря уменьшению частоты развития ИОХВ с 14,8 до 5,2% [9, 21].

При операциях на ободочной кишке применение антимикробных шовных материалов представляется особенно актуальным с целью повышения биологической герметичности кишечного шва. Использование «Никанта» во время хирургических вмешательств по поводу осложнений рака толстой кишки позволило уменьшить количество больных с осложнённым течением послеоперационного периода с 62,0 до 32,4% [22].

Антибактериальный шовный материал «Абактолат», полученный путём импрегнации раствором эритромицина, при имплантации в ткани лабораторных животных сохраняет антибактериальное действие в течение 11–12 сут. По данным авторов, при использовании «Абактолата» в хирургическом лечении широкого спектра острой абдоминальной патологии произошло снижение частоты раневых осложнений (таких, как серома, лигатурный свищ, инфильтрат, нагноение, эвентрация) в 3,4–17,4 раза. Эффективность новой антибактериальной нити доказана и при выполнении «чистых» оперативных вмешательств: при грыжесечении частота раневых осложнений уменьшилась с 20,5 до 1,2% случаев, в кардиохирургии частота ИОХВ снизилась с 6,7–8,0 до 1,2% [3].

Разработаны шовные материалы, содержащие антисептик бензилдиметил-миристоиламино-пропиламмония хлорида моногидрат и антибиотики (канамицин, доксициклин, клиндамицин, ампициллин, карбенициллин), а также образцы биологически активных шовных материалов с комбинированной (протеолитической и антимикробной) активностью. Экспериментальными исследованиями in vitro доказано пролонгированное антимикробное действие новых видов нитей: до 14-х суток — с бензилдиметил-миристоиламино-пропиламмония хлорида моногидратом, до 14–21-х суток — у нитей с антибиотиками [23].

За рубежом разработана антимикробная хирургическая шовная нить из полиглактина 910 с антисептиком триклозаном (Vicryl Plus), обладающая достаточно пролонгированной (в течение 7 дней) и высокой антибактериальной активностью [24, 25]. Многочисленные публикации свидетельствуют о высокой эффективности Vicryl Plus при хирургическом лечении широкого спектра заболеваний [26, 27]. В частности, при грыжесечении использование этой нити позволило снизить частоту развития ИОХВ с 11,9 до 6,1% [28], при ушивании лапаротомных ран — с 10,8–14,2 до 3,6–6,6% [29], в колоректальной хирургии — с 9,3 до 4,3% [24, 27, 30].

Триклозан введён в состав других биодеградируемых шовных материалов: на основе полидиоксанона — PDS Plus (сроки рассасывания 182–238 сут), а также из полиглекапрона 25 — Monocryl Plus (период биодеструкции 14–21 сут). В зависимости от биодеструктивных свойств нитей с триклозаном при выполнении оперативного приёма на органах брюшной полости и в процессе послойного закрытия ран передней брюшной стенки производители и исследователи рекомендуют использовать дифференцированный подход к выбору шовного материала в зависимости от этапа операции и регенеративных свойств сшиваемых тканей [31–33].

PDS Plus следует применять для шва апоневроза и сухожилия, ушивания суставных капсул, сопоставления мягких тканей, в сердечно-сосудистой хирургии. Vicryl Plus рекомендуют для аппроксимации мягких тканей и лигирования, Monocryl Plus — для ушивании ран кишечника, брюшины, мочевого пузыря, мочеточника, внутрикожного косметического шва. Послойное применение данных нитей с целью профилактики ИОХВ позволяет снизить частоту развития послеоперационных гнойно-воспалительных осложнений с 14,2–35,5 до 1,6–10,0% [34]. В то же время широкое использование антисептика триклозана в качестве составляющего компонента товаров для личной гигиены способствует снижению чувствительности бактериальной флоры к антисептику и развитию устойчивости в клинике [35].

В настоящее время отмечают рост интереса к научно-исследовательским работам, посвящённым созданию и внедрению новых биологически активных шовных материалов. Разработаны опытные образцы шовного материала с антисептиком широкого спектра действия октенидином [36], шёлковая нить с покрытием из сополиамида с левофлоксацином [37]. С целью придания антибактериальных свойств шовным материалам учёные предлагают использовать в качестве покрытия нитей амфифильные антимикробные пептиды [38], серебросодержащее биостекло [39], акриловую кислоту или хитозан с тетрациклином и наносеребром [40], поли-L-лактид с тетрациклином или цефотаксимом [41]. Первые результаты экспериментальных исследований свидетельствуют о способности разрабатываемых шовных материалов оказывать антибактериальное действие, что открывает новые перспективы для профилактики ИОХВ.

Для профилактики ИОХВ исследователями предложено интраоперационно вводить суспензии бактериофагов. Так, интраперитонеальное введение суспензии с пиобактериофагом секстафаг во время лапароскопических аппендэктомий позволяет не только достоверно снизить количество ИОХВ, но и улучшить качество жизни пациентов в послеоперационном периоде [10]. При наложении швов хирурги прибегают к этапным орошениям раневой полости растворами антисептиков (0,5% водно-спиртовым раствором хлоргексидина биглюконата) или антибиотиков (гентамицина), а также к обработке краёв операционной раны порошком субстанции ванкомицина [42]. В то же время использование данных методик в случае возникновения ИОХВ способно повлечь за собой изменение характера микроорганизмов в гнойном очаге в сторону грамотрицательной флоры и последующее расширение этиотропной терапии [43].

Не менее важна профилактика микробного инфицирования в раннем послеоперационном периоде. Укрытие раны клеевой лечебно-профилактической композицией, состоящей из гидроксиэтилдиметилдигидропиримидина, бензокаина, гидрокортизона, борной кислоты и фенолополивинилового клея, предупреждает вероятную контаминацию и способствует снижению частоты раневых гнойных осложнений с 4,7 до 3,5% [2]. Возрастает интерес к биологическим свойствам озонированного перфторана, недостаточно используемого в настоящее время в клинической практике [44]. Проточно-аспирационное дренирование полости микробно-контаминированной раны растворами антисептиков при восстановительных операциях на ободочной кишке позволило уменьшить количество нагноений лапаротомных ран на месте иссечённых колостом с 21,3 до 2,7% [7].

Таким образом, улучшения результатов оперативного лечения и снижения частоты развития ИОХВ можно достичь путём совершенствования методов профилактики эндогенного инфицирования [5, 45]. В последнее время с этой целью успешно внедряют методы локальной антимикробной профилактики ИОХВ, позволяющие создать высокие концентрации лекарственных препаратов в тканях раны и препятствовать миграции бактериальной флоры из оперированных полостей и органов [3, 13, 22]. Разработка новых методов профилактики ИОХВ открывает перед исследователями возможность осуществления послойной антибактериальной профилактики ИОХВ, учитывающей вид и характеристики сшиваемых тканей [32, 33, 45].

 

Участие авторов. А.Н.С. — руководитель группы, А.Р.А., Ю.А.И. и Э.М.А. проводили исследования, А.М.М. и Н.А.С. отвечали за сбор и анализ результатов.

Источник финансирования. Исследование не имело спонсорской поддержки.

Конфликт интересов. Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов по представленной ­статье.

×

Об авторах

Алексей Николаевич Сергеев

Тверской государственный медицинский университет

Email: dr.nikolaevich@mail.ru
SPIN-код: 8817-0158

заведующий кафедрой общей хирургии, доктор медицинских наук, доцент

Россия, г. Тверь, Россия

Артем Михайлович Морозов

Тверской государственный медицинский университет

Автор, ответственный за переписку.
Email: ammorozovv@gmail.com
ORCID iD: 0000-0003-4213-5379
SPIN-код: 6815-9332

ассистент кафедры общей хирургии, кандидат медицинских наук

Россия, г. Тверь, Россия

Эльшад Магомедович Аскеров

Тверской государственный медицинский университет

Email: ammorozovv@gmail.ru
SPIN-код: 5529-8581

доцент кафедры общей хирургии, кандидат медицинских наук, доцент

Россия, г. Тверь, Россия

Николай Александрович Сергеев

Тверской государственный медицинский университет

Email: sergnicalex@rambler.ru
SPIN-код: 9295-1942

профессор кафедры общей хирургии, доктор медицинских наук, доцент

Россия, г. Тверь, Россия

Алимжан Равельевич Армасов

Тверской государственный медицинский университет

Email: doctorarmasov@rambler.ru
SPIN-код: 7598-7217

ассистент кафедры общей хирургии, кандидат медицинских наук

Россия, г. Тверь, Россия

Юрий Алексеевич Исаев

Тверской государственный медицинский университет

Email: iura.isaew2015@yandex.ru
SPIN-код: 4887-4394

ассистент кафедры общей хирургии, кандидат медицинских наук

Россия, г. Тверь, Россия

Список литературы

  1. Смекаленков О.А. Анализ ранних инфекционных осложнений у пациентов после хирургических вмешательств на позвоночнике. Хирургия позвоночника. 2017; 14 (2): 82–87. doi: 10.14531/ss2017.2.82-87.
  2. Доброквашин С.В., Измайлов А.Г., Волков Д.Е. Профилактика раневых гнойно-воспалительных осложнений в ургентной хирургии. Вестн. эксперим. и клин. хир. 2011; 4 (1): 143–144. doi: 10.18499/2070-478X-2011-4-1-143-144.
  3. Плечев В.В. Профилактика гнойно-септических осложнений в хирургии. М.: Триада-Х. 2003; 320 с.
  4. Исаев Ю.А. Подвижная слепая кишка: способы оперативного лечения. Верхневолжский мед. ж. 2018; 17 (4): 25–28.
  5. Гостищев В.К. Новые возможности профилактики послеоперационных осложнений в абдоминальной хирургии. Хирургия. Ж. им. Н.Н. Пирогова. 2011; (5): 56–60.
  6. Ларичев А.Б. Профилактика раневой инфекции и морфологические аспекты заживления асептической раны. Вестн. эксперим. и клин. хир. 2011; 4 (4): 728–733.
  7. Щерба С.Н., Савченко Ю.П., Половинкин Ю.П. Способ снижения раневых гнойно-септических осложнений после закрытия кишечных стом. Инфекции в хир. 2014; 12 (4): 5–7.
  8. Edmiston C.E. Bacterial adherence to surgical sutures: can antibacterial-coated sutures reduce the risk of microbial contamination? J. Am. Coll. Surg. 2006; 203 (4): 481–489. doi: 10.1016/j.jamcollsurg.2006.06.026.
  9. Мохов Е.Н., Сергеев А.Н., Великов П.Г. Возможности имплантационной антибиотикопрофилактики инфекции области хирургического вмешательства в неотложной абдоминальной хирургии. Инфекции в хир. 2014; 12 (2): 29–34.
  10. Мохов Е.М., Морозов А.М., Евстифеева Е.А. и др. Качество жизни больных, перенёсших лапароскопическую аппендэктомию с применением в послеоперационном периоде комбинированной противомикробной профилактики с использованием бактериофагов. Соврем. пробл. науки и образования. 2018; (3): 76.
  11. Al Maqbali M.A. Preoperative antiseptic skin preparations and reducing SSI. Br. J. Nurs. 2013; 22 (21): 1227–1233. doi: 10.12968/bjon.2013.22.21.1227.
  12. Suchomel M. Chlorhexidine-coated surgical gloves influence the bacterial flora of hands over a period of 3 hours. BMC. 2018; 7: 108. doi: 10.1186/s13756-018-­0395-0.
  13. Горский В.А. Опыт использования клеевой субстанции, насыщенной антибактериальными препаратами, в хирургии желудочно-кишечного тракта. Хирургия. Ж. им. Н.И. Пирогова. 2012; (4): 48–54.
  14. Винник Ю.С., Маркелова Н.М., Соляников А.С. Анализ эффективности применения биополимера ТахоКомб для профилактики несостоятельности кишечных анастомозов. Врач-аспирант. 2013; (2.1): 130–134.
  15. Жуковский В.А. Полимерные эндопротезы для герниопластики. СПб.: Эскулап. 2011; 104 с.
  16. Кузнецова М.В. Ингибирование адгезии бактерий Staphylococcus на сетчатых имплантатах в комбинации с биоцидами (in vitro). Антибиотики и химиотерапия. 2017; (11–12): 12–20.
  17. Воленко А.В. Капромед — антибактериальный шовный материал. Мед. техника. 1994; (2): 32–34.
  18. Александров К.Р. Пролонгированное антибактериальное действие шовных материалов с полимерным покрытием. Антибиотики и химиотерапия. 1991; (11): 37–40.
  19. Краснопольский В.И. Опыт применения новых синтетических рассасывающихся шовных нитей Капроаг в акушерстве и гинекологии. Мед. техника. 1994; (3): 38–40.
  20. Мохов Е.М., Хомулло Г.В., Сергеев А.Н., Александров И.В. Экспериментальная разработка новых хирургических шовных материалов с комплексной биологической активностью. Бюлл. эксперим. биол. и мед. 2012; (3): 391–396. doi: 10.1007/s10517-012-1728-2.
  21. Мохов Е.М., Евтушенко Н.Г., Сергеев А.Н. Применение биологически активного (антимикробного) шовного материала при хирургическом лечении грыж передней брюшной стенки. Вестн. эксперим. и клин. хир. 2012; (4): 648–654.
  22. Sergeev A.N., Mokhov E.M., Sergeev N.A., Morozov A.M. Antibiotic prophylaxis for prevention of surgical site infection in emergency oncology. Arch. Euromed. 2019; 9 (3): 51–52. doi: 10.35630/2199-885X/2019/9/3.17.
  23. Жуковский В.А. Биологически активные шовные хирургические материалы. Хим. волокна. 2005; (5): ­32–35. doi: 10.1007/s10692-006-0007-2.
  24. Zurita R., Puiggali J. Triclosan release from coated polyglycolide threads. Marcomol. Biosci. 2006; 6 (1): 58–69. doi: 10.1002/mabi.200500147.
  25. Arikanoglu Z. The effect of different suture materials on the safety of colon anastomosis in an experimental peritonitis model. Eur. Rev. Med. Pharmacol. Sci. 2013; 17 (19): 2587–2593. PMID: 24142603.
  26. Justinger C. Surgical-site infection after abdominal wall closure with triclosan-impregnated polydioxanone sutures: results of a randomized clinical pathway facilita­ted trial (NCT00998907). Surgery. 2013; 154 (3): 589–595. doi: 10.1016/j.surg.2013.04.011.
  27. Nakamura N. Triclosan-coated sutures reduce the incidence of wound infections and the cost after colorectal surgery: a randomized controlled trial. Surgery. 2013; 153 (4): 576–583. doi: 10.1016/j.surg.2012.11.018.
  28. Justinger C., Slotta J.E., Schilling M.K. Incisional hernia after abdominal closure with slowly absorbable versus fast absorbable, antibacterial coated sutures. Surgery. 2012; 151 (3): 398–403. doi: 10.1016/j.surg.2011.08.004.
  29. Hoshino S. A study of the efficacy of antibacterial sutures for surgical site infection: a retrospective controlled trial. Int. Surg. 2013; 98 (2): 129–132. doi: 10.9738/CC179.
  30. Дарвин В.В. Оценка эффективности применения шовного материала с покрытием из триклозана в экстренной хирургии. Хирургия. Ж. им. Н.И. Пирогова. 2017; (3): 70–75. doi: 10.17116/hirurgia2017370-75.
  31. Ming X., Rothenburger S., Nichols M. In vivo and in vitro antibacterial efficacy of PDS plus (polidioxanone with triclosan) suture. Surg. Infect. (Larchmt). 2008; 9 (4): 451–457. doi: 10.1089/sur.2007.061.
  32. Baracs J. Surgical site infections after abdominal closure in colorectal surgery using triclosan-coated absor­bable suture (PDS Plus) vs. uncoated sutures (PDS II): a randomized multicenter study. Surg. Infect. (Larchmt). 2011; 12 (6): 483–489. doi: 10.1089/sur.2011.001.
  33. Meijer E.J. The principles of abdominal wound closure. Acta. Chir. Belg. 2013; 113 (4): 239–244. doi: 10.1080/00015458.2013.11680920.
  34. Ruiz-Tovar J. Association between Triclosan-­coated sutures for abdominal wall closure and incisional surgical site infection after open surgery in patients presenting with fecal peritonitis: A randomized clinical trial. Surg. Infect. (Larchmt). 2015; 16 (5): 588–594. doi: 10.1089/sur.2014.072.
  35. McBain A.J., Rickard A.H., Gilbert P. Possible implications of biocide accumulation in the environment on the prevalence of bacterial antibiotic resistance. J. Ind. Mic­robiol. Biotechnol. 2002; 29 (6): 326–330. doi: 10.1038/sj.jim.7000324.
  36. Obermeier A. In vitro evaluation of novel antimic­robial coatings for surgical sutures using octenidine. BMC Microbiol. 2015; 15: 186. doi: 10.1186/s12866-015-0523-4.
  37. Chen X. Antibacterial surgical silk sutures using a high-performance slow-release carrier coating system. ACS Appl. Mater. Interfaces. 2015; 7 (40): 22 394–22 403. doi: 10.1021/acsami.5b06239.
  38. Li Y. New bactericidal surgical suture coating. Langmuir. 2012; 28 (33): 12134–12139. doi: 10.1021/acsami.5b06239.
  39. Pratten J. In vitro attachment of Staphylococcus epidermidis to surgical sutures with and without Ag-contai­ning bioactive glass coating. J. Biomater. Appl. 2004; 19 (1): 47–57. doi: 10.1177/0885328204043200.
  40. Ho C.H. Long-term active antimicrobial coatings for surgical sutures based on silver nanoparticles and hyper branched polylysine. J. Biomater. Sci. Polym. Ed. 2013; 24 (13): 1589–1600. doi: 10.1080/09205063.2013.782803.
  41. Hu W., Huang Z.M., Liu X.Y. Development of brai­ded drug-loaded nanofiber sutures. Nanotechnology. 2010; 21 (31): 315104. doi: 10.1088/0957-4484/21/31/315104.
  42. Чумаков А.А., Фомин С.А. Двухэтапная профилактика гнойно-воспалительных осложнений при аппендэктомии из мини-доступа. Инфекции в хир. 2010; 8 (2): 36–38.
  43. Базылев В.В. Профилактика раневой инфекции в кардиохирургии: насколько оправдано местное применение антибиотиков? Ангиол. и сосудист. хир. 2015; 21 (2): 107–113.
  44. Мохов Е.М., Армасов А.Р., Амруллаев Г.А., Пажетнев А.Г. Использование биологических свойств перфторана при местном лечении гнойных ран. Рос. мед. ж. 2011; (3): 10–13.
  45. Pianka F., Mihaljevic A.L. Prevention of postope­rative infections: Evidence-based principles. Chirurg. 2017; 88 (5): 401–407. doi: 10.1007/s00104-017-0384-5.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML

© 2020 Сергеев А.Н., Морозов А.М., Аскеров Э.М., Сергеев Н.А., Армасов А.Р., Исаев Ю.А.

Creative Commons License

Эта статья доступна по лицензии
Creative Commons Attribution-NonCommercial-ShareAlike 4.0 International License.


СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: ЭЛ № ФС 77 - 75008 от 01.02.2019.


Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах