Особенности динамики содержания кортикостероидных рецепторов в миокарде животных с разной устойчивостью к гипоксии в постреанимационном периоде
- Авторы: Байбурина Г.А.1
-
Учреждения:
- Башкирский государственный медицинский университет
- Выпуск: Том 101, № 1 (2020)
- Страницы: 40-46
- Тип: Экспериментальная медицина
- Статья получена: 31.10.2019
- Статья опубликована: 11.02.2020
- URL: https://kazanmedjournal.ru/kazanmedj/article/view/17569
- DOI: https://doi.org/10.17816/KMJ2020-40
- ID: 17569
Цитировать
Аннотация
Цель. Охарактеризовать особенности динамики уровня кортикостероидных рецепторов в миокарде животных с разной устойчивостью к гипоксии в постреанимационном периоде.
Методы. Экспериментальные исследования проведены на самцах неинбредных белых крыс, разделённых на две группы по устойчивости к гипоксии. 5-минутную остановку системного кровообращения моделировали под эфирным наркозом интраторакальным пережатием сосудистого пучка сердца с последующей реанимацией. Период наблюдения составлял 35 дней. В плазме крови определяли содержание кортикостерона и альдостерона, в гомогенатах миокарда — концентрацию глюкокортикоидных и минералокортикоидных рецепторов.
Результаты. В 1–3-и сутки постреанимационного периода у высокоустойчивых к гипоксии крыс динамика концентрации плазменного кортикостерона и содержания кортикостероидных рецепторов была однонаправленной. Начиная с 5-х суток, на фоне статистически значимого снижения уровня кортикостерона в плазме крови отмечено постепенное нарастание плотности кортикостероидных рецепторов, в большей степени глюкокортикоидных, максимально выраженное на 14-е сутки и сохранившееся до окончания наблюдения. У животных с низкой устойчивостью к гипоксии динамика кортикостероидных рецепторов характеризовалась преобладанием содержания минералокортикоидных почти во все сроки наблюдения. В 1–3-и сутки постреанимационного периода на фоне высоких концентраций кортикостероидных гормонов зарегистрировано минимальное содержание глюкокортикоидных рецепторов. Снижение уровня минералокортикоидных рецепторов зафиксировано только в 1-е сутки, во все последующие сроки эксперимента было характерно существенное превышение контрольных показателей в 1,4–1,6 раза. Усиленная минералокортикоидная сигнализация в миокарде, характерная для животных с низкой устойчивостью к гипоксии, может быть сопряжена с развитием гипертрофии и фиброза, воспалением, нарушением электрической функции. Увеличение уровня глюкокортикоидных рецепторов, характерное для животных с высокой устойчивостью к гипоксии, оказывает адаптивное действие, ограничивая воспалительный ответ, потенциальный механизм может быть связан с усилением экспрессии 11β-гидроксистероиддегидрогеназы 1-го типа.
Вывод. Выявленные особенности могут оказывать существенное влияние на течение постреанимационного периода и определять долгосрочный прогноз.
Полный текст
Многочисленными клинико-экспериментальными исследованиями установлено, что клиническая смерть и последующее оживление организма, в основе которых лежат два взаимосвязанных типовых процесса — гипоксия и реоксигенация, вызывают тяжёлые нарушения функций жизненно важных органов и систем, индуцируют множество как повреждающих, так и защитных реакций [1]. В любой популяции неинбредных животных существуют особи, значительно различающиеся по устойчивости к гипоксии, у которых функциональные и метаболические последствия дефицита кислорода имеют существенные особенности [2], способные влиять на выживаемость и характер течения постреанимационного периода.
Метаболическое обеспечение адаптивно-компенсаторного ответа при экстремальных воздействиях реализуется, в числе прочих, при участии гипоталамо-гипофизарно-адреналовой системы [3]. Отклонения в функциональном состоянии нейроэндокринной системы могут быть обусловлены не только нарушением характера секреции глюкокортикоидов и дизрегуляцией механизмов обратной связи, но и функциональной несостоятельностью гормон-рецепторного взаимодействия, не позволяющей осуществить эффективную трансдукцию сигнала для регуляции контроля разворачивания адаптивного ответа, что способно вызывать развитие дезадаптивных состояний и гибель организма [3].
Реализация большинства эффектов эндогенных глюкокортикоидов осуществляется через близкородственные глюкокортикоидные (ГР) и минералокортикоидные (МР) рецепторы. Концентрации эндогенных глюкокортикоидов превосходят концентрации альдостерона на два-три порядка, поэтому они служат физиологическим лигандом и для МР, и для ГР, за исключением клеток-мишеней альдостерона, в которых происходит предрецепторная инактивация глюкокортикоидов ферментом 11β-гидроксистероиддегидрогеназой 2-го типа [4]. В кардиомиоцитах практически отсутствует указанный фермент [5]. Следовательно, эффекты глюкокортикоидов в кардиомиоцитах потенциально опосредуются как ГР, так и МР. Оба типа рецепторов способны связывать и активировать многие из одних и тех же генов-мишеней, вызывая, тем не менее, разные, а иногда и противоположные эффекты при действии глюкокортикоидов [6]. Таким образом, баланс между экспрессией МР и ГР играет существенную роль в сохранении гомеостаза, а выяснение соответствующих физиологических ролей этих рецепторов в сердечно-сосудистой системе важно для понимания их патофизиологической значимости и разработки новых терапевтических подходов к лечению сердечной патологии.
Цель исследования — охарактеризовать особенности динамики уровня кортикостероидных рецепторов в миокарде животных с разной устойчивостью к гипоксии в постреанимационном периоде.
Экспериментальные исследования проведены в соответствии с этическими принципами, декларированными Европейской конвенцией по защите позвоночных животных, используемых для экспериментальных и других научных целей (принятой в Страсбурге 18.03.1986). Все исследования одобрены локальным этическим комитетом ФГБОУ ВО БГМУ Минздрава России.
Опыты проводили в первой половине дня. В группу исследования после тестирования на устойчивость к гипоксии вошли 160 здоровых половозрелых беспородных белых крыс-самцов с массой тела 200–220 г. Определение устойчивости к острой гипобарической гипоксии проводили с использованием полуколичественной оценки угнетения и восстановления двигательной активности и позных рефлексов при барокамерном «подъёме на высоту» 9000 м, являющуюся пороговой для крыс с наличием заболеваний [7].
В эксперимент брали животных, отнесённых к двум крайним по устойчивости группам: высокоустойчивым (ВУ) и неустойчивым (НУ) к гипоксии. Группы включали по 70 опытных (по 10 животных на каждый срок наблюдения) и 10 контрольных крыс. Через неделю после тестирования под эфирным наркозом воспроизводили остановку системного кровообращения длительностью 5 мин интраторакальным пережатием сосудистого пучка сердца с последующей реанимацией по методу В.Г. Корпачева [8]. У контрольных животных после эфирного наркоза клиническую смерть не моделировали. В 1-е, 3-и, 5-е, 7-е, 14-е, 21-е и 35-е сутки животных под эфирным наркозом выводили из эксперимента декапитацией и осуществляли забор крови и тканей для исследования.
Для определения уровня кортикостерона и альдостерона в плазме крови использовали стандартные тест-системы фирмы IMMUNOTECH (Франция). Содержание ГР и МР в гомогенатах миокарда определяли методом иммуноферментного анализа, используя стандартные тест-наборы ELISA Kit (Китай) фирмы Cloud-Clone Сorp. (США), предназначенные для крыс, строго в соответствии с протоколом производителя.
Для статистической обработки результатов использовали стандартный пакет программ Statistica 6.0. Описательная статистика данных приведена в виде медианы и квартильного размаха Ме [Q1–Q3]. Статистическую значимость различий определяли, используя непараметрический критерий Манна–Уитни (U). Статистические взаимосвязи изучали при помощи непараметрического корреляционного анализа, выполняя расчёт коэффициентов корреляции рангов по Спирмену (R). Различия считали статистически значимыми при р ≤0,05.
К концу первых 24 ч после критического воздействия у ВУ к гипоксии крыс зарегистрирован рост концентрации плазменного кортикостерона, служащего основным лигандом для кортикостероидных рецепторов в миокарде, и уровня ГР (между показателями выявлена значимая корреляционная связь, R=0,78, р=0,0287) (рис. 1, а, табл. 1). Со стороны МР выявлена тенденция к повышению содержания.
Рис. 1. Содержание кортикостерона (а) и альдостерона (б) в плазме крови крыс с разной устойчивостью к гипоксии в динамике постреанимационного периода; статистическая значимость различий в сравнении с группой контроля: #р ≤0,05; ^р ≤0,01; *р ≤0,001.
Таблица 1. Содержание кортикостероидных рецепторов в миокарде крыс с разной устойчивостью к гипоксии в постреанимационном периоде, Me (Q1–Q3)
сутки | Группы животных по устойчивости к гипоксии | |||
Высокоустойчивые | Неустойчивые | Высокоустойчивые | Неустойчивые | |
Глюкокортикоидные рецепторы, мкг/г белка | Минералокортикоидные рецепторы, нг/г белка | |||
контроль | 35,02 (32,44–37,49) | 32,55 (28,71–34,16) р1=0,2899 | 106,16 (102,34–112,31) | 110,34 (105,34–113,26) р1=0,4962 |
n=10, 100% | n=10, 100% | n=10, 100% | n=10, 100% | |
1 сут | 42,99 (34,76–47,51) р=0,0483 | 18,98 (16,59–22,64) р=0,0009, р1=0,0065 | 116,78 (107,09–122,18) р=0,0587 | 76,45 (66,38–84,56) р=0,0002, р1=0,0015 |
n=10, 122,8% | n=10, 58,3% | n=10, 110,8% | n=10, 69,3% | |
3 сут | 25,40 (20,16–30,15) р=0,0002 | 15,52 (12,33–19,77) р=0,0002, р1=0,0012 | 36,16 (32,26–44,56) р=0,0002 | 125,97 (115,23–132,26) р=0,0082, р1=0,0002 |
n=10, 72,5% | n=10, 49,5% | n=10, 34,1% | n=10, 114,2% | |
5 сут | 39,55 (35,66–42,61) р=0,0821 | 24,14 (20,69–30,48) р=0,0342, р1=0,0025 | 150,26 (140,65–155,32) р=0,0002 | 120,03 (115,66–131,27) р=0,0102, р1=0,0002 |
n=10, 112,9% | n=10, 74,2% | n=10, 141,5% | n=10, 109% | |
7 сут | 46,25 (40,13–48,56) р=0,0343 | 40,79 (35,64–45,64) р=0,0005, р1=0,1736 | 111,48 (98,87–12,76) р=0,7623 | 182,68 (174,65–186,56) р=0,0002, р1=0,0002 |
n=10, 132,1% | n=10, 125,3% | n=10, 105% | n=10, 166,5% | |
14 сут | 58,52 (52,69–64,15) р=0,0002 | 28,61 (22,59–38,45) р=0,3257, р1=0,0002 | 109,02 (102,31–115,62) р=0,8798 | 150,86 (142,63–158,64) р=0,0002, р1=0,0002 |
n=10, 167,1% | n=10, 81,8% | n=10, 103,7% | n=10, 136,7% | |
21 сут | 52,40 (45,69–55,67) р=0,0002 | 26,62 (23,44–32,04) р=0,0587, р1=0,0002 | 118,94 (112,36–128,65) р=0,0126 | 154,68 (145,75–168,45) р=0,0002, р1=0,0002 |
n=10, 149,6% | n=10, 93,4% | n=10, 112% | n=10, 140,2% | |
35 сут | 43,77 (39,37–49,09) р=0,0025 | 30,41 (27,60–34,57) р=0,5967, р1=0,0025 | 121,69 (112,13–129,53) р=0,0081 | 160,55 (151,23–175,64) р=0,0002, р1=0,0002 |
n=10, 125% | n=10, 93,4% | n=10, 114,6% | n=10, 145,5% |
Примечание: статистическая значимость различий р — с контролем, р1 — между группами с разной устойчивостью к гипоксии.
Поскольку реализация эффектов глюкокортикоидов осуществляется через ГР и МР, логично предположить, что уровень экспрессии рецепторов отражает степень вовлечения гормонов в регуляцию метаболических процессов в миокарде, позволяющих противостоять вызовам внешней среды. Благотворное влияние глюкокортикоидов при действии ишемии-реперфузии обусловлено в основном их способностью ограничивать острый воспалительный ответ. ГР подавляет активацию генов воспалительного ответа, ингибируя такие факторы транскрипции, как белок-активатор-1 и ядерный фактор-κB, с одной стороны, и увеличивая транскрипцию компонентов противовоспалительных генов — с другой стороны. Эта функция, называемая транспрессией, обусловливает большинство противовоспалительных эффектов глюкокортикоидов [9].
Кроме того, кардиозащитное действие глюкокортикоидов при ишемически-реперфузионном повреждении миокарда может быть связано с избирательным увеличением уровня экспрессии L-простагландин D-синтазы через ГР и активацией синтеза простагландинов с преобладанием простагландина D2 в кардиомиоцитах, что предотвращает агрегацию тромбоцитов, индуцирует эндотелий-зависимую артериальную релаксацию, оказывает несколько противовоспалительных и антиоксидантных эффектов через механизм, опосредованный PPARγ [10].
Начиная с 3-х суток эксперимента, у ВУ к гипоксии животных отмечено снижение уровня кортикостерона, сопровождающееся значительным уменьшением содержания кортикостероидных рецепторов, что отражает в целом физиологичность отношений «рецептор-лиганд». Однако со следующего контрольного отрезка содержание обоих видов рецепторов увеличивалось. После скачка, зарегистрированного на 5-е сутки, уровень МР впоследствии удерживался на цифрах, близких к контрольным, а содержание ГР градуально росло, достигнув максимума на 14-е сутки (167,1% уровня контроля, р=0,0002; см. табл. 1) и оставаясь до окончания эксперимента значимо выше исходных показателей.
Следует отдельно оговорить, что рост уровня рецепторов происходил на фоне сопоставимой с контролем (5–7-е сутки) и статистически значимо сниженной концентрации плазменного кортикостерона (14–21-е сутки). Однако активные глюкокортикоиды также могут быть регенерированы локально из циркулирующих инертных 11-кето-метаболитов ферментом 11β-гидроксистероиддегидрогеназой 1-го типа [5, 11], экспрессия и активность которого в сердце обычно низкие, но могут быстро изменяться в ответ на внешние раздражители [5].
Следуя вышеозначенной логике, можно предполагать, что выявленное нами увеличение уровня ГР в период с 7-х по 35-е, а также МР на 5-е сутки у ВУ к гипоксии животных связано с усилением экспрессии 11β-гидроксистероиддегидрогеназы 1-го типа. Стимулировать индукцию активности этого фермента в миокарде могут, в частности, провоспалительные цитокины интерлейкин-1 и фактор некроза опухоли α [12], масштабное образование которых происходит в период эндотоксикоза постреанимационного периода.
Очевидно, отмеченный на 5-е сутки кратковременный подъём уровня МР, обладающих высоким сродством к глюкокортикоидам, — результат повышенной перекрёстной стимуляции рецепторов не только возросшей концентрацией циркулирующего кортикостерона на фоне минимальных показателей альдостерона, но и локально синтезированным кортикостероном. В дальнейшем по мере повышения концентрации регенерированного кортикостерона начинает расти уровень ГР, обладающих меньшим аффинитетом к кортикостерону. Однако длительное усиление экспрессии фермента может способствовать ремоделированию желудочков, так как глюкокортикоиды, как эндо-, так и экзогенные, подавляют ангиогенез [5]. Кроме того, показано, что 11β-гидроксистероиддегидрогеназа 1-го типа в фибробластах регулирует высвобождение провоспалительных медиаторов [11].
В группе животных НУ к гипоксии рост содержания кортикостерона в крови к концу 1-х суток не только не привёл к увеличению уровня ни ГР (R=–0,82, р=0,0233), ни МР (R=–0,79, р=0,0308), но и сопровождался их снижением соответственно на 42% (р=0,0009) и 31% (р=0,0002) , что служит косвенным свидетельством ослабления гормон-рецепторного взаимодействия. Снижение уровня ГР и МР в раннем восстановительном периоде, возникшее в условиях тяжёлого энергетического дефицита у животных с низкой устойчивостью к гипоксии, — отражение процессов дезадаптации, поскольку глюкокортикоидная регуляция служит необходимым условием для развития адаптивных изменений [13].
На 3-и сутки постреанимационного периода на фоне высокого содержания кортикостерона и альдостерона отмечены минимальный уровень ГР и повышенный МР, которые способствуют экспрессии воспалительных цитокинов [14]. В отсутствие 11β-гидроксистероиддегидрогеназы 2-го типа, превращающей глюкокортикоид в неактивные метаболиты, альдостерон не может конкурировать с кортикостероном за связь с МР, поэтому представляется вероятным, что именно кортикостерон, а не альдостерон, оккупирует МР и влияет на провоспалительный ответ после действия ишемии [15]. Следовательно, кардиозащитное действие глюкокортикоидов может быть нивелировано провоспалительной МР-активацией в ответ на гипоксический стресс [9].
Однако в обычных условиях оккупация МР глюкокортикоидами в ткани миокарда не имитирует эффекты альдостерона [16]. Стимулом для активации комплекса глюкокортикоид-МР могут стать нарушения редокс-равновесия и развитие окислительного стресса [17]. Индукция МР активными метаболитами кислорода приводит к активации НАДФH-оксидазы1, стимулирует дальнейший синтез этих метаболитов и повреждение ткани, тем самым формируя порочный круг [18]. Кроме того, есть данные, что в патологических условиях, включая гипоксию, экспрессия и активность 11β-гидроксистероиддегидрогеназы 2-го типа (которой в сердце обычно мало, за исключением сосудистого эндотелия) увеличиваются, что позволяет альдостерону конкурировать за связь с МР [11].
С 5-х суток постреанимационного периода в группе НУ к гипоксии животных уровень кортикостерона резко снижается при сохранении высокой концентрации альдостерона в плазме крови (рис. 1б). Такая ситуация сохраняется вплоть до окончания эксперимента и позволяет проявиться эффектам альдостерона. К настоящему времени установлен ряд негативных эффектов альдостерона по отношению к сердечно-сосудистой системе, за физиологические эффекты которого отвечают МР. Аномальная активация ренин-ангиотензин-альдостероновой системы — один из важнейших механизмов развития хронической сердечной недостаточности [16]. Повышенная МР-сигнализация в миокарде ассоциируется с развитием воспаления, гипертрофии и фиброза, желудочковых аритмий [19].
Выводы
1. В группе высокоустойчивых к гипоксии животных в постреанимационном периоде в миокарде происходит нарушение баланса содержания кортикостероидных рецепторов с преобладанием глюкокортикоидных, что в целом даёт адаптивный эффект, ограничивая воспалительный ответ. Выявленное нами увеличение уровня глюкокортикоидных рецепторов может быть связано с усилением экспрессии 11β-гидроксистероиддегидрогеназы 1-го типа.
2. В группе неустойчивых к гипоксии животных в постреанимационном периоде в миокарде также нарушается баланс кортикостероидных рецепторов. Усиленная сигнализация посредством минералокортикоидных рецепторов в миокарде может быть сопряжена с развитием гипертрофии и фиброза, воспалением, нарушением электрической функции. Выявленные особенности способны оказать существенное влияние на течение постреанимационного периода и определить долгосрочный прогноз.
Автор заявляет об отсутствии конфликта интересов по представленной статье.
Об авторах
Гульнар Анузовна Байбурина
Башкирский государственный медицинский университет
Автор, ответственный за переписку.
Email: gulnar.2014@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-4741-6295
Россия, г. Уфа, Россия
Список литературы
- Долгих В.Т., Говорова Н.В., Орлов Ю.П. и др. Патофизиологические аспекты гипероксии в практике анестезиолога реаниматолога (мини-обзор). Общая реаниматол. 2017; 13 (3): 83–93. doi: 10.15360/1813-9779-2017-3-83-93.
- Лукьянова Л.Д. Дизрегуляция аэробного энергетического обмена — типовой патологический процесс. В кн.: Дизрегуляционная патология. М.: Медицина. 2002; 188–215.
- Sapolsky R.M., Romero L.M., Munck A.U. How do glucocorticoids influence stress responses? Integrating permissive, suppressive, stimulatory, and preparative actions. Endocr. Rev. 2000; 21 (1): 55–89. doi: 10.1210/edrv.21.1.0389.
- Gomez-Sanchez E. Brain mineralocorticoid receptors in cognition and cardiovascular homeostasis. Steroids. 2014; 91: 20–31. doi: 10.1016/j.steroids.2014.08.014.
- Chapman K., Holmes M., Seckl J. 11β-Hydroxysteroid dehydrogenases: intracellular gate-keepers of tissue glucocorticoid action. Physiol. Rev. 2013; 93 (3): 1139–1206. doi: 10.1152/physrev.00020.2012.
- Richardson R.V., Batchen E.J., Denvir M.A. et al. Cardiac GR and MR: from development to pathology. Trends Endocrinol. Metab. 2016; 27 (1): 35–43. doi: 10.1016/j.tem.2015.10.001.
- Байбурина Г.А., Нургалеева Е.А., Шибкова Д.З., Башкатов С.А. Способ определения степени устойчивости к гипобарической гипоксии мелких лабораторных животных. Патент 2563059 РФ от 19.08.2015. Бюлл. №26.
- Корпачев В.Г., Лысенков С.П., Телль Л.З. Моделирование клинической смерти и постреанимационной болезни у крыс. Патол. физиол. и эксперим. терап. 1982; (3): 78–80.
- John K., Marino J.S., Sanchez E.R., Hinds T.D.Jr. The glucocorticoid receptor: cause of or cure for obesity? Am. J. Physiol. Endocrinol. Metab. 2016; 310 (4): E249–E257. doi: 10.1152/ajpendo.00478.2015.
- Tokudome S., Sano M., Shinmura K. et al. Glucocorticoid protects rodent hearts from ischemia/reperfusion injury by activating lipocalin-type prostaglandin D synthase-derived PGD2 biosynthesis. J. Clin. Invest. 2009; 119 (6): 1477–1488. doi: 10.1172/JCI37413.
- Gray G.A., White C.I., Castellan R.F. et al. Getting to the heart of intracellular glucocorticoid regeneration: 11β-HSD1 in the myocardium. J. Mol. Endocrinol. 2017; 58 (1): R1–R13.
- Esteves C.L., Kelly V., Breton A. et al. Proinflammatory cytokine induction of 11betahydroxysteroid dehydrogenase type 1 (11betaHSD1) in human adipocytes is mediated by MEK, C/EBPbeta, and NF-kappaB/RelA. J. Clin. Endocrinol. Metab. 2014; 99 (1): E160–E168. doi: 10.1210/jc.2013-1708.
- Annane D., Pastores S.M., Arlt W. et al. Critical illness-related corticosteroid insufficiency (CIRCI): a narrative review from a Multispecialty Task Force of the Society of Critical Care Medicine (SCCM) and the European Society of Intensive Care Medicine (ESICM). Intensive Care Med. 2017; 43 (12): 1781–1792. doi: 10.1007/s00134-017-4914-x.
- Marzolla V., Armani A., Feraco A. et al. Mineralocorticoid receptor in adipocytes and macrophages: a promising target to fight metabolic syndrome. Steroids. 2014; 91: 46–53. doi: 10.1016/j.steroids.2014.05.001.
- Coutinho A.E., Campbell J.E., Fediuc S., Riddell M.C. Effect of voluntary exercise on peripheral tissue glucocorticoid receptor content and the expression and activity of 11β-HSD1 in the Syrian hamster. J. Appl. Physiol. 2006; 100 (5): 1483–1488. doi: 10.1152/japplphysiol.01236.2005.
- Ohtake M., Hattori T., Murase T. et al. Glucocorticoids activate cardiac mineralocorticoid receptors in adrenalectomized Dahl salt-sensitive rats. Nagoya J. Med. Sci. 2014; 76 (1–2): 59–72. PMID: 25129992.
- Takahashi K., Murase T., Takatsu M. et al. Roles of oxidative stress and the mineralocorticoid receptor in cardiac pathology in a rat model of metabolic syndrome. Nagoya J. Med. Sci. 2015; 77 (1–2): 275–289. PMID: 25797993.
- Oakley R.H., Cidlowski J.A. Glucocorticoid signaling in the heart: A cardiomyocyte perspective. J. Steroid Biochem. Mol. Biol. 2015; 153: 27–34. doi: 10.1016/j.jsbmb.2015.03.009.
- Young M.J., Rickard A.J. Mineralocorticoid receptors in the heart: lessons from cell-selective transgenic animals. J. Endocrinol. 2015; 224: R1–R13. doi: 10.1530/JOE-14-0471.
Дополнительные файлы
![](/img/style/loading.gif)