Метаболомические исследования в медицине

Обложка


Цитировать

Полный текст

Аннотация

В обзоре литературы затронуты вопросы применения метаболомических исследований в медицине. Основная идея метаболомики заключается в обнаружении специфических биомаркёров в биологическом образце для диагностики ряда заболеваний. В качестве биомаркёров рассматриваются летучие органические вещества - метаболиты, выделенные из различных биологических тканей и жидкостей (крови, мочи, мокроты, выдыхаемого воздуха). Отражены основные методы разделения и идентификации летучих органических веществ образца (газовая хроматография, масс-спектрометрия, спектроскопия ядерного магнитного резонанса), применяемые в метаболомике. Даны сравнительные характеристики масс-спектрометрии и спектроскопии ядерного магнитного резонанса как основных методов детектирования летучих метаболитов. Описан метод твердофазной микроэкстракции, используемый в качестве предварительной подготовки образца. Представлены результаты лабораторных исследований по поиску биомаркёров рака, хронических инфекций, наследственных заболеваний. Показаны качественные характеристики метаболома биологического образца пациента с той или иной патологией. Кроме того, уделено внимание применению возможностей метаболомики в экспериментальной медицине. Описаны результаты исследования изменений летучего метаболома клеточной культуры in vitro в зависимости от добавок в питательные среды; летучих продуктов распада β-каротина как проканцерогенных веществ; летучих органических веществ, выделяемых при распаде позвоночных животных. Дополнительно описан метод полной двухмерной газовой хроматографии, испытанный с целью повышения чувствительности и специфичности метаболомических исследований. Представленный подход может помочь в решении вопросов ранней диагностики многих заболеваний.

Полный текст

­Одно из новых направлений в генетике и молекулярной биологии - метаболомика, которая может помочь практикующим врачам в диагностике и прогнозе различных заболеваний [29]. Метаболомика - область науки, изучающая конечные и промежуточные продукты обмена веществ в биологической системе, будь то клетка, орган или организм в целом [13]. Метаболом, или метаболический профиль, представляет собой совокупность всех низкомолекулярных метаболитов (<1500 Да) биологического образца, являясь уникальным химическим «отпечатком пальцев», специфичным для процессов, протекающих в живых клетках [8]. Идея применения метаболического профиля в диагностике заболеваний была выдвинута Linus Pauling и соавт. ещё в 1971 г. Они предложили производить анализ выдыхаемого воздуха пациентов методом газовой хроматографии в целях выявления метаболических изменений при определённых заболеваниях и выявили более 200 различных летучих органических соединений (ЛОС) [23]. В январе 2007 г. учёные университета Альберта и университета Калгари завершили исследование метаболомического профиля человека. Они каталогизировали около 2500 метаболитов, 1200 лекарств и 3500 компонентов пищи, которые могут быть найдены в биологических образцах человека [35]. В настоящее время описаны метаболомы биологических жидкостей человека и животных - мочи, спинномозговой жидкости, плазмы и т.д. Последние исследования показали, что метаболомика может выявить специфические признаки болезни, так называемые биомаркёры, которые в будущем сыграют большую роль в диагностике и прогнозе заболевания [6, 10, 30]. Исследования метаболического профиля выполняют, как правило, с использованием гибридного метода анализа - сочетания газовой (ГХ) или жидкостной (ЖХ) хроматографии и масс-спектрометрии (МС) или спектроскопии ядерного магнитного резонанса (ЯМР-спектроскопия). ГХ - универсальный метод разделения смеси веществ, испаряющихся без разложения [1, 29]. Моча и мокрота богаты летучими органическими метаболитами, потенциальными биомаркёрами многих заболеваний, их получение не требует применения инвазивных процедур (в отличие от забора крови или спинномозговой жидкости) [11, 15, 29]. В метаболомических исследованиях выделение ЛОС из образца чаще всего производят способом твердофазной микроэкстракции (ТФМЭ). Метод основан на сорбции компонентов газовой фазы образца на нить с полимерным покрытием с её последующей термической десорбцией в предварительно нагретом инжекторе газового хроматографа. Эта методика имеет несколько преимуществ перед традиционными методами извлечения растворителем: ТФМЭ не требует существенных временных затрат, удобна, высокочувствительна, проводится без использования растворителя [29]. Высокого уровня по информативности метаболомических данных достигли две технологии: МС и ЯМР-спектроскопия [22, 26]. Они имеют свои специфические преимущества и недостатки. Основным преимуществом МС является чувствительность: современный уровень масс-спектрометров может обнаружить аналиты в фемтомолярном (10-15) и аттомолярном (10-18) диапазоне. Связь МС с ЖХ или ГХ позволяет измерять сотни отдельных метаболитов в пределах одного образца и вместе с постоянно пополняемыми базами данных делает идентификацию этих метаболитов более рутинной. Одна из слабых сторон МС - определение концентрации искомого метаболита. Также к недостаткам можно отнести и тот факт, что интенсивность МС-сигнала любого соединения зависит от подготовки образца и его молекулярного окружения [34]. Основные слабые стороны МС являются основными сильными сторонами ЯМР-спектроскопии. Высота пика конкретного метаболита в ЯМР-спектре напрямую связана с концентрацией ядер химического соединения, что делает его количественное определение в сложной смеси очень точным. Другой недооценённой характерис­тикой ЯМР-спектроскопии является её универсальность для анализа метаболитов в жидком состоянии (таких, как сыворотка крови, моча и т.д.), в неповреждённых тканях (например, опухоли) или в естественных условиях (in vivo) [34]. Хотя метаболомика - относительно молодое направление по сравнению с геномикой и протеомикой, её уже применяют в разнообразных областях медицины, в том числе при скрининге патологии новорождённых, в токсикологии и фармакологии. В сравнении с геномикой и протеомикой на метаболомику возлагают большие надежды в поиске биомаркёров заболеваний, в первую очередь онкологических. К примеру, Sreekumar и соавт. выделили метаболический профиль 42 образцов ткани, 110 образцов мочи и 110 образцов плазмы крови пациентов, страдающих доброкачественными заболеваниями простаты, ограниченной и распространённой формой рака предстательной железы. Они в состоянии отличить эти три состояния на основе данных ГХ и ЯМР-спектроскопии. Также ими обнаружено, что концентрация конкретного метаболита - саркозина (в том числе в моче) - была существенно увеличена на этапе метастатического прогрессирования рака предстательной железы [30]. В исследовании рака яичника лаборатория доктора Fiehn провела метаболомический скрининг тканей 66 образцов инвазивной формы рака и 9 образцов доброкачественных опухолей яичников [9]. Исследователи обнаружили различие между данными группами образцов более чем по 50 метаболитам. Многие из этих метаболитов играют важную роль в обмене пуринов, пиримидинов, глицеролипидов и в энергетическом обмене. Xue и соавт. использовали этот метод для исследования ЛОС крови, связанных с раком печени. Было установлено, что группа больных раком печени и контрольная группа различались по 19 ЛОС крови (р <0,05). Из этих 19 соединений 3 (гексанал, 1-октен-3-ол и октан) были найдены в повышенных концентрациях в крови группы больных раком печени по сравнению с контрольной группой [37]. Чтобы исследовать летучие метаболиты мочи как потенциальные биомаркёры рака C.L. Silva и соавт. качественно и количественно проанализировали образцы мочи 33 больных злокачественными новообразованиями (14 больных лейкозом, 12 - колоректальным раком, 7 - лимфомами) и 21 здорового пациента, используя ТФМЭ-ГХ-МС. В общей сложности в онкологической и контрольной группах идентифицировано 82 летучих метаболита, принадлежащих к различным химическим классам. Производные бензола, терпеноиды и фенолы были наиболее распространёнными классами в онкологической группе, тогда как кетоны и серосодержащие вещества оказались основными классами соединений, выделенными из мочи здоровых пациентов [29]. Метод идентификации летучих биомаркёров даёт возможность дополнить гистопатологическую характеристику опухоли метаболомическими данными. M.V. Brown и соавт. разработали методику параллельного выделения метаболитов и гистологического анализа неповреждённых биоптатов. Ими также было обнаружено 69 метаболитов, отличающих раковую опухоль почки от образцов доброкачественной опухоли, и определены 83 метаболита, статистически значимо (р <0,05) отличающих биоптаты рака от доброкачественных образований предстательной железы. Выделение определённых метаболических характеристик опухолевой ткани, по данным M.V. Brown и соавт., может свидетельствовать не только о стадии рака, но и о степени злокачественности [4]. Ряд других метаболомических исследований указывает на возможность построения прогностической модели на наличие у пациентов хронической инфекции путём обнаружения ЛОС-биомаркёров микроорганизмов в биологических средах (мокроте, крови, моче, выдыхаемом воздухе и др.). ЛОС синтезируются всеми микроорганизмами, являясь частью их нормального обмена веществ. Типы и классы производимых микробами ЛОС обширны и включают жирные кислоты и их производные (например, углеводороды, алифатические спирты и кетоны), ароматические соединения, азотсодержащие вещества и летучие соединения серы [28]. P.C. Goeminne и соавт. определяли ЛОС, вырабатываемые Pseudomonas aeruginosa, в мокроте больных муковисцидозом (кистозным фиброзом) лёгких методом ТФМЭ-ГХ-МС [11]. Они обнаружили связь между присутствием Pseudomonas aeruginosa в организме пациента и высокой концентрацией терпенов 1-ундецена, 1-α-пинена и соединений додекана, терпинен-4-ола и 2,2,6-триметил-октана в образцах мокроты. На основе обзора литературы и своих результатов авторы пришли к выводу, что не одно ЛОС, а их сочетание может свидетельствовать о наличии Pseudomonas aeruginosa в организме [11]. Колонии Aspergillus fumigates из дыхательных путей пациентов с хроническими заболеваниями лёгких были ассоциированы с присутствием летучего вещества 2-пентилфурана при анализе выдыхаемого воздуха методом ГХ-МС, что в настоящее время разрабатывается в качестве нового диагнос­тического дыхательного теста [7]. Метаболомика как современная методика также может помочь определить значимость экологического воздействия экзогенных ЛОС на здоровье человека. Источники ЛОС включают табачный дым, нефтепродукты и хлорированную воду [3]. Длительная экспозиция токсичных ЛOC может увеличить риск лейкоза, рака мочевого пузыря, врождённых дефектов и нейрокогнитивных нарушений [16, 27]. Индивидуальные особенности в поглощении, распределении, метаболизме и выделении экологических ядов человеком усложняет оценку экспозиции ЛOC. Методом ТФМЭ-ГХ-МС B.C. Blount и соавт. определили 14 галогенизированных алканов, 5 галогенизированных алкенов, 10 соединений ароматического ряда и некоторых других ЛОС в образцах человеческой крови. В большинстве этих образцов данный метод зарегистрировал в крови бензол, 1,4-дихлорбензол, этилбензол, толуол, м/п-ксилол. Некоторые из образцов крови содержали также 13 дополнительных соединений: стирол, хлороформ, o-ксилол, тетрахлорэтен, 2,5-диметилфуран, метил-трет-бутиловый эфир, бромдихлорометан, дибромхлорметан, бромоформ, тетрахлорметан, трихлорэтан, метиленхлорид и 1,2-дихлорэтан [3]. В настоящее время метаболомика имеет широкое применение в различных областях науки, в том числе и в экспериментальной медицине. Сегодня различные клеточные культуры широко используют в науке, эксперименты in vitro применяют в таких фундаментальных исследованиях, как характеристика метаболизма клетки [38] или анализ митоза [36]. В других научных работах культивированные клетки используют как тест-системы для оценки воздействия химиотерапевтических препаратов на клетку [14]. Для поддержания клеточных культур необходимо добавление в питательные среды животной сыворотки, например сыворотки эмбриона телёнка. К сожалению, животные сыворотки имеют ряд недостатков, таких как возможное загрязнение образцов и высокая себестоимость. Для определения влияния искусственных заменителей сыворотки на жизнедеятельность и метаболизм культивируемых клеток M. Hartmann и соавт. использовали метод определения летучих метаболомов опухолевых клеток с помощью ГХ-МС [12]. В целом было проанализировано около 50 ЛОС и установлено, что метаболизм культивируемых клеток сильно меняется при добавлении в питательную среду заменителя животной сыворотки. Таким образом, учёные пришли к выводу, что для роста и метаболизма опухолевых клеток и, соответственно, достоверности экспериментов с культурами клеток необходимо добавление в питательную среду животной сыворотки [12]. Как отмечено выше, ГХ в сочетании с МС является наиболее «естественной» комбинацией для исследования метаболомического профиля биологических образцов. В своей работе G. Martano и соавт. стремились оптимизировать метод ГХ-MС с предшествующей ТФМЭ для определения концентрации летучих продуктов расщепления β-каротина в клеточной культуре [17]. Известно, что β-каротин, предшественник витамина А, уменьшает риск сердечно-сосудистых болезней, катаракты и дегенерации макулы. Однако было замечено, что при ежедневном приеме 20-30 мг β-каротина пациентами с большим стажем курения на 16-28% увеличилась заболеваемость раком лёгкого, влекущая за собой повышенный риск смертности по сравнению с плацебо-контролем. Этот кажущийся парадокс был связан с прооксидантными и проканцерогенными свойствами продуктов распада β-каротина в сочетании с высоким парциальным давлением кислорода, окислительным стрессом и высоким уровнем реактивных форм кислорода в ткани лёгкого курильщиков [2, 5, 19, 20]. Очевидно, продукты распада β-каротина образуются эксцентральным (неферментативным) расщеплением в богатой радикалами окружающей среде лёгкого курильщика, и эти продукты распада β-каротина могут провоцировать канцерогенез разнообразными путями. Набор продуктов распада β-каротина содержит β-ионон, циклоцитраль, дигидроактинидиолид и 1,1,6-триметилтетралин. Эти продукты распада β-каротина являются пусковым механизмом в развитии скрытых опухолей [19, 21]. Таким образом, представленный метод позволил определить биологически значимые летучие продукты распада β-каротина в клеточных системах in vitro [17]. В другой работе с целью улучшения понимания процесса посмертного распада позвоночных животных S. Paczkowski и S. Schutz объединили результаты исследований биохимической структуры ЛОС, обнаруженных во время процесса разложения [18]. Ими выдвинуто предположение о возможности существования зависимой от времени структуры ЛОС некротических масс, что может быть использовано в таких областях, как судебная медицина и диетология. Поиск жертв стихийных бедствий, например погребённых при землетрясениях [32], может быть ускорен с помощью методики идентификации ЛОС [31]. В пищевой промышленности применение детектора для регистрации ранних посмертных ЛОС позвоночных может помочь в определении степени порчи или оценке сроков хранения рыбных и мясных продуктов. Rajamaki и соавт. нашли большое количество диметилдисульфида (образующегося из метантиола) в образцах испорченных цып­лят-бройлеров [24]. Таким образом, метантиол или связанные метилированные сульфиды могут быть маркёрами неправильного хранения мясных продуктов. Несмотря на всё вышесказанное, в метаболомике существует серьёзная проблема - все биологические образцы содержат многочисленные соединения с различными физико-химическими свойствами и в широком диапазоне концентраций, что делает метаболомическое профилирование достаточно сложной задачей, требующей улучшения метода с точки зрения чувствительнос­ти и специфичности. Полная двухмерная ГХ (ГХ-ГХ) с время-пролётной МС - относительно новая методика с очень высокой разрешающей способностью, которая была опробована в метаболомических исследованиях. Используя колонки с двумя разными стационарными фазами (например, полярная-неполярная) в одной процедуре, ГХ-ГХ добавляет второе хроматографическое разделение компонентов исследуемого образца. При ГХ-ГХ-анализе пики веществ достаточно разграничены, чтобы следовые компоненты можно было легко детектировать и измерять их концентрацию. S.M. Rocha и соавт. применили полную ГХ-ГХ с время-пролётной МС в сочетании с ТФМЭ образца для всестороннего изу­чения летучих соединений мочи человека [25]. Было идентифицировано около 300 соединений, которые были распределены по следующим химическим группам: углеводороды, амины, амиды, сложные эфиры, кетоны, альдегиды, спирты, карбоновые кислоты, эфиры, нитрилы, галогениды, сульфиды, тиолы, терпеноиды и гетероцик­лические соединения. Это наиболее полная на сегодняшний день информация о составе человеческой мочи, которая представляет собой ценные данные для будущих исследований в клинической медицине. Полная ГХ-ГХ с время-пролётной МС образцов мочи была применена K.А. Kouremenos и соавт. для диагностики врождённых нарушений обмена веществ у детей и детального анализа сложных профилей, которые часто связаны с этими расстройствами [15]. Врождённые нарушения обмена веществ можно диагностировать на основе обнаружения в моче аномально повышенных органических кислот, связанных с соответствующей ферментопатией. Повышенная чувствительность метода ГХ-ГХ с время-пролётной МС позволила обнаружить следовые уровни многих органичес­ких кислот, присутствующих в образцах, что бывает довольно сложно сделать при использовании подхода одномерного разделения ГХ. Метилмалоновая и метиллимонная кислоты служат основными маркёрами метилмалоновой ацидемии. В свою очередь адипиновая и 3-метил-адипиновая кислоты не связанны с метилмалоновой ацидемией, но могут отражать вторичное торможение других метаболических путей. Гексаноилглицин является основным маркёром недостаточности среднецепочечной ацил-КoA дегидрогеназы. 3-Метил-кротонил-глициновая и 3-гидрокси-изовалериановая кислоты - индикаторы недостаточности 3-метилкротонил КоА карбоксилазы [15]. Таким образом, на метаболомику возлагаются большие надежды в поиске биомаркёров заболеваний, таких как злокачес­твенные новообразования, наследственные и инфекционные заболевания. В заключение отметим, что применение многих из вышеописанных методов по-прежнему в значительной степени ограничивается научно-исследовательской работой, но предполагается, что в будущем профилирование ЛОС «у постели больного» откроет возможность быстрой характерис­тики заболевания, обеспечивая жизненно важной информацией пациентов и медицинских работников [33].
×

Об авторах

Раиса Рустэмовна Фурина

Республиканская клиническая больница, г. Йошкар-Ола

Email: furina_raisa@mail.ru

Нина Николаевна Митракова

Республиканская клиническая больница, г. Йошкар-Ола

Виктор Леонидович Рыжков

Республиканская клиническая больница, г. Йошкар-Ола

Ильдар Кавилович Сафиуллин

Мари-Турекская центральная районная больница, Республика Марий Эл, пос. Мари-Турек

Список литературы

  1. Царёв Н.И., Царёв В.И., Катраков И.Б. Практическая газовая хроматография. - Барнаул: Изд-во Алт. унта, 2000. - 156 с.
  2. Arora A., Willhite C.A., Liebler D.C. Interactions of β-carotene and cigarette smoke in human bronchial epithelial cells // Carcinogenesis. - 2001. - Vol. 22, N 8. - P. 1173-1178.
  3. Blount B.C., Kobelski R.J., McElprang D.O. et al. Quantification of 31 volatile organic compounds in whole blood using solid-phase microextraction and gas chromatography-mass spectrometry // J. Chromatography B. - 2006. - Vol. 832. - P. 292-301.
  4. Brown M.V., McDunn J.E., Gunst P.R. et al. Cancer detection and biopsy classification using concurrent histopathological and metabolomic analysis of core biopsies // Gen. Med. - 2012. - Vol. 4. - P. 33.
  5. Burton G., Ingold K. Beta-carotene: an unusual type of Передовая статья lipid antioxidant // Science. - 1984. - Vol. 224, N 4649. - P. 569-573.
  6. Catchpole G., Platzer A., Weikert C. et al. Metabolic profiling reveals key metabolic features of renal cell carcinoma // J. Cell. Mol. Med. - 2011. - Vol. 15. - P. 109-118.
  7. Chambers S.T., Bhandari S., Scott-Thomas A., Syhre M. Novel diagnostics: progress toward a breath test for invasive Aspergillus fumigatus // Med. Mycol. - 2011. - Vol. 49. - P. 54-61.
  8. Daviss В. Growing pains for metabolomics // The Scientist. - 2005. - Vol. 19, N 8. - P. 25-28.
  9. Denkert C., Budczies J., Kind T. et al. Mass spectrometry-based metabolic profiling reveals different metabolite patterns in invasive ovarian carcinomas and ovarian borderline tumors // Cancer Res. - 2006. - Vol. 66. - P. 10 795- 10 804.
  10. Denkert C., Budczies J., Fiehn O. et al. Metabolite profiling of human colon carcinoma - deregulation of TCA cycle and amino acid turnover // Mol. Cancer. - 2008. - Vol. 7. - P. 72.
  11. Goeminne P.C., Vandendriessche T., Eldere J.V. et al. Detection of Pseudomonas aeruginosa in sputum headspace through volatile organic compound analysis // BioMed. Central. - 2012. - Vol. 13. - P. 83-87.
  12. Hartmann M., Zimmermann D., Nolte J. Changes of the metabolism of the colon cancer cell line SW-480 under serum-free and serum-reduced growth conditions // In Vitro Cell. Dev. Biol. Animal. - 2008. - Vol. 44. - P. 458-463.
  13. Jordan K.W., Nordenstam J., Lauwers G.Y. et al. Metabolomic characterization of human rectal adenocarcinoma with intact tissue magnetic resonance spectroscop // Dis. Colon & Rectum. - 2009. - Vol. 52, N 3. - P. 520-525.
  14. Jiang S., Jung S.M., Shin E.-C. et al. Apoptosis in human hepatoma cell lines by chemotherapeutic drugs via fas-dependent and fas-independent pathways // Hepatol. - 1999. - Vol. 291. - P. 101-110.
  15. Kouremenos K.А., Pitt J., Marriott P.J. Metabolic profiling of infant urine using comprehensive two-dimensional gas chromatography: application to the diagnosis of organic acidurias and biomarker discovery // J. Chromatography A. - 2010. - Vol. 1217. - P. 104-111.
  16. Lynberg M., Nuckols J.R., Langlois P. et al. Environ // Health Perspect. - 2001. - Vol. 109. - P. 597.
  17. Martano G., Vogl C., Bojaxhi E. et al. Solid-phase extraction and GC-MS analysis of potentially genotoxic cleavage products of β-carotene in primary cell cultures // Anal. Bioanal. Chem. - 2011. - Vol. 400. - P. 2415-2426.
  18. Paczkowski S., Schutz S. Post-mortem volatiles of vertebrate tissue // Appl. Microbiol. Biotechnol. - 2011. - Vol. 91, N 4. - P. 917-935.
  19. Palozza P., Serini S., Di Nicuolo F. et al. β-Carotene exacerbates DNA oxidative damage and modifies p53-related pathways of cell proliferation and apoptosis in cultured cells exposed to tobacco smoke condensate // Carcinogenesis. - 2004. - Vol. 25, N 8. - P. 1315-1325.
  20. Paolini M., Antelli A., Pozzetti L. et al. Induction of cytochrome p450 enzymes and over-generation of oxygen radicals in beta-carotene supplemented rats // Carcinogenesis. - 2001. - Vol. 22, N 9. - P. 1483-1495.
  21. Paolini M., Abdel-Rahman S.Z., Sapone A. et al. β-Carotene: a cancer chemopreventive agent or a co-carcinogen? // Mutat. Res., Rev. Mutat. Res. - 2003. - Vol. 543, N 3. - P. 195-200.
  22. Patti G.J., Yanes O., Siuzdak G. Innovation: metabo lomics: the apogee of the omics trilogy // Nat. Rev. Mol. Cell. Biol. - 2012. - Vol. 13. - P. 263-269.
  23. Pauling L., Robinson A.B., Teranishi R., Cary P. Quantitative analysis of urine vapor and breath by gas-liquid partition chromatography // Proc. Natl Acad. Sci. USA. - 1971. - Vol. 68. - P. 2374-2376.
  24. Rajamaki T., Alakomi H.L., Ritvanen T. et al. Application of an electronic nose for quality assessment of modified atmosphere packaged poultry meat // Food Control. - 2006. - Vol. 17. - P. 5-13.
  25. Rocha S.M., Caldeira M., Carrola J. et al. Exploring the human urine metabolomic potentialities by comprehensive two-dimensional gas chromatography coupled to time of flight mass spectrometry // J. Chromatography A. - 2012. - Vol. 1252. - P. 155-163.
  26. Sands C.J., Coen M., Ebbels T.M. et al. Data-driven approach for metabolite relationship recovery in biological1H NMR data sets using iterative statistical total correlation spectroscopy // Anal. Chem. - 2011. - Vol. 83. - P. 2075- 2082.
  27. Schnatter A.R., Rosamilia K., Wojcik N.C. Review of the literature on benzene exposure and leukemia subtypes // Chem.-Biol. Interact. - 2005. - Vol. 153. - P. 9-21.
  28. Schulz S., Dickschat J.S. Bacterial volatiles: the smell of small organisms // Nat. Prod. Rep. - 2007. - Vol. 24. - P. 814-842.
  29. Silva C.L., Passos M., Camara J.S. Investigation of urinary volatile organic metabolites as potential cancer biomarkers by solid-phase microextraction in combination with gas chromatography-mass spectrometry // Brit. J. Cancer. - 2011. - Vol. 105. - Р. 1894-1904.
  30. Sreekumar A., Poisson L.M., Rajendiran T.M. et al. Metabolomic profiles delineate potential role for sarcosine in prostate cancer progression // Nature. - 2009. - Vol. 457. - P. 910-914.
  31. Statheropoulos M., Mikedi K., Agapiou A. et al. Discriminant analysis of volatile organic compounds data related to a new location method of entrapped people in collapsed buildings of an earthquake // Anal. Chim. Acta. - 2006. - Vol. 566. - P. 207-216.
  32. Statheropoulos M., Agapiou A., Spiliopouiou C. et al. Environmental aspects of VOCs evolved in the early stages of human decomposition // Sci. Total. Environ. - 2007. - Vol. 385. - P. 221-227.
  33. Thorn R.M., Reynolds D.M., Greenman J. Multivariate analysis of bacterial volatile compound profiles for discrimination between selected species and strains in vitro // J. Microbiol. Methods. - 2011. - Vol. 84. - P. 258-264.
  34. Veenstra T.D. Metabolomics: the final frontier // Gen. Med. - 2012. - Vol. 4. - P. 40.
  35. Wishart D.S., Tzur D., Knox C. et al. HMDB: the Human Metabolome Database // Nucl. Acids Res. - 2007. - Vol. 35. - P. 521-526.
  36. Wolf F., Wandke C., Isenberg N., Geley S. Dose-dependent effects of stable cyclin B1 on progression through mitosis in human cells // EMBO J. - 2006. - Vol. 25. - P. 2802-2813.
  37. Xue R., Dong L., Zhang S. et al. Rapid Commun // Mass Spectrom. - 2008. - Vol. 22. - P. 1181-1186.
  38. Zimmermann D., Hartmann M., Moyer M.P. et al. Determination of volatile products of human colon cell line metabolism by GC/MS analysis // Metabolomics. - 2007. - Vol. 31. - P. 13-17.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML

© 2014 Фурина Р.Р., Митракова Н.Н., Рыжков В.Л., Сафиуллин И.К.

Creative Commons License

Эта статья доступна по лицензии
Creative Commons Attribution-NonCommercial-ShareAlike 4.0 International License.


СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: ЭЛ № ФС 77 - 75008 от 01.02.2019.


Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах