Leading signs of current methicillinresistant staphylococci

Cover Page


Cite item

Full Text

Abstract

As a result of the combined study of the hospital strains S. aureus it is stated that methicillinresistant strains are characterized by simultaneous resistance to 5—9 antibiotics (84,9%), product of hemolysins, fibronolysin and hyaluronidase. MRSA are resistant (56,6%) to lytic action of phages of the commercial kit. Phages 85 (39,1%) and 52A (21,7%) prevail over phagolysed phages. Electrophoretic analysis of exoproteins permits to differentiate MRSA not typified by phages and to assign them to phage 85 as well as to set off within the phages 85 and 94/96 two types of strains varying in spectra of protein composition.

Full Text

В последние годы отмечается возрастание числа полирезистентных к антибиотикам штаммов S. aureus и прежде всего метициллинрезистентных (MRSA), одновременно устойчивых к большинству применяемых препаратов [5, 12, 13]» По данным разных авторов, на их долю приходится 8 — 50% от общего количества всех выделенных стафилококков [3, 4, 8]. Метициллинрезистентные S. aureus обычно связывают с тяжелыми случаями заболевания и с эпидемическим распространением внутрибольничных инфекций [10, 11].
По мнению некоторых исследователей, популяция S. aureus, циркулирующая вне стационаров, за исключением метициллинрезистентных вариантов, мало отличается от госпитальных штаммов. Поэтому устойчивость к метициллину можно рассматривать как генетический маркер, имеющий особо важное эпидемиологическое значение [9].
Целью нашего исследования являлось изучение уровня и особенностей метициллинрезистентных стафилокков, циркулирующих в лечебных учреждениях.
Всего изучено 657 штаммов S. aureus, изолированных из различных источников в родовспомогательных и хирургических учреждениях. Лекарственную устойчивость к 12 химиопрепаратам определяли методом диффузии в агар и на MIC-2000 («Dynatech»). Для идентификации Р-лактамаз у стафилококков использовали оксид-палочки, пропитанные ниФроцефином, фирмы «Glaxo». Фаговаваровую принадлежность S. aureus устанавливали по модифицированному методу с помощью международного набора диагностических типовых бактериофагов. Наличие 10 биологических признаков изучали по методам, описанным в отечественных руководствах [1, 6], ДНКазную активность— с помощью DNA-test-agar «Difco».
Исследованы спектры внеклеточных белков культур MPSA. Электрофорез в щелочной системе полиакриламидного геля и обработку гелей проводили по Г. К. Дегтевой и соавт.
[7] . Для объективной оценки сходства штаммов по белковым спектрам использовали расчеты показателей подобия [2].
Анализ полученных данных показал, что среди золотистых стафилококков, циркулирующих в лечебных учреждениях, метициллинрезистентные S. aureus составляют 8,1%, причем в хирургических отделениях штаммы, устойчивые к метициллину, были изолированы в 12% случаев от больных гнойно-воспалительными заболеваниями, в 3,7% (Т=2,6)—от персонала. Среди стафилококков, принявших участие в колонизации новорожденных, MRS А составили 16,2%, среди выделенных от медперсонала акушерских стационаров—6,2% (Т=2,2).
При анализе резистентности к антибиотикам MRISA и MSSA выявлены различия в степени и спектре устойчивости к химиопрепаратам. Стафилококки, резистентные к метициллину, по сравнению с чувствительными достоверно чаще были устойчивы к хлорамфениколу (соответственно в 60,4% и 21,7% случаев) эритромицину (в 84,9% и 17,1%), гентамицину (в 34% и 0,7%), тетрациклину (в 54,7% и 14,9%) канамицину (в 58,5% и 2,6%), линкомицину (в 32,1% и 0,2%). MRSA были устойчивы к цефалотину в 22,4% случаев; среди MSSA таких штаммов не найдено.
Минимальная подавляющая концентрация (МПК) метициллина в отношении MRSA колебалась в пределах 32 — 256 мкг/мл, доминирующее значение МПК (МО) составило 32 мкг/мл.
Метициллинрезистентные стафилококки обладали более высокими средними значениями МПК, чем чувствительные штаммы, в отношении всех изученных антибиотиков. МПКэо пенициллина, хлорамфеникола, канамицина и тетрациклина у MRSA и MSSA находились в пределах МПК для резистентных культур и различались по уровню устойчивости (соответственно 512, 128, 256, 256, 256, 64, 16, 32 мкг/мл). Для метициллинрезистентных S. aureus МПК90 эритромицина, метициллина, оксициллина составила 128 мкг/мл, гентамицина и рифампицина — соответственно 32 и 8 мкг/мл. В отношении MSSA эти антибиотики были более активны; концентрации, задерживающие рост 90% чувствительных к метициллину культур, находились ниже пограничных значений МПК.
Анализ устойчивости к антибиотикам MRSA и MSSA четко продемонстрировал не только качественные (в уровнях и спектре устойчивости), но и количественные (по числу обнаруживаемых маркеров устойчивости) различия двух сопоставляемых групп. Подавляющее большинство (84,9%) MRSA были одновременно устойчивы к действию пяти — девяти антибиотиков, среди MSSA (рис. 1) такие штаммы выделены только в 0,4% случаев (Т—17,2).
Доминирующими спектрами детерминант устойчивости у MRSA были следующие: PEN, ERY, DXA, МЕТ, CLT (19,2%), PEN, CMP, ERY, DXA, MET, TET, KAN, LIN (13,5%), PEN, GMP, ERY, GEN, DXA, MET, TET, KAN (13,5%), PEN, CMP, ERY, GEN, DXA, MET, TET, KAN, LIN (11,5%).
Среди MSSA наиболее многочисленными (61,5%) оказались штаммы, обладающие одной детерминантой резистентности (PEN). На долю несущих одновременно два маркера пришлось 20,7% штаммов; к действию трех— четырех препаратов были устойчивы 17,4%.
Продукцию (3-лактомазы зарегистрировали у MRSA и MSSA соответственно в 100% и 79,1% случаев (Т-9,3).
Анализ фаговаровой принадлежности показал, что MRSA значительно реже типируются фагами коммерческого набора, чем MSSA,— соответственно в 43,4% и 71,3% случаев (Т—4,0).
При распределении культур MSRA по фагогруппам установлено, что 47,8% штаммов принадлежали к III группе, 30,4% — к I, 13% — к V; 8,8% типировались фагами смешанных групп (1 + Ш, I-J-V). У метициллинрезистентных стафилококков было определено 8 фаговаров, среди которых доминировали 85 (39,1%) и 52А (21,7%).
Выявлены различия литической активности фагов II и III групп в от-ф ношении MRSA и MSSA. Бактериофаги II группы не лизировали MRSA, в то же время MSSA типировались этой группой фагов в 23,4% случаев. Фаги III группы чаще лизировали резистентные к метициллину штаммы, чем чувствительные,— соответственно в 47,3% и 12,5% случаев (Т —3,4).
Преимущественное распространение метициллинрезистентных стафилококков среди стафилококков I и III групп, очевидно, связано с повышенной способностью фагов этих групп к трансдукции маркеров лекарственной устойчивости.
Данные изучения биологических свойств свидетельствуют о том, что MRSA обладают широким спектром факторов патогенности и достоверно чаще, чем чувствительные, продуцируют а-гемолизин (соответственно в 88,9% и 76,9'% случаев), 6-гемолизин (в 95,9% и 76,5%), р-гемолизин (в 31,1% и 17,2%), фибринолизин (в 84,4% и 56,7%), гиалуронидазу (в 97,8% и 91,6%).
Выраженность факторов патогенности у MRSA, по-видимому, связана с тем, что в состав R-плазмид, кроме маркеров антибиотикоустойчивости, входят гены, ответственные за синтез биологически активных субстанций. Передача плазмид в популяциях стафилококков происходит с высокой частотой, что приводит к широкому распространению генов, кодирующих синтез факторов патогенности.
В результате изучения электрофореграмм экзопродуктов метициллинрезистентных культур установлена гетерогенность белкового состава. В протеинограммах насчитывалось от 10 до 22 фракций. Дифференциация белковых фракций по относительной скорости миграции и вычисление показателей подобия белковых спектров позволили разделить культуры стафилококков на 8 групп. Каждая группа состояла из культур, обладающих одинаковым «рисунком» спектра, и принята нами за один штамм (рис. 2).
В первую группу вошли 12 метициллинрезистентных стафилококков, спектр внеклеточных белков которых характеризовался 15 общими фракциями с Rf 2,5; 7,5; 10,0; 12,5; 16,25; 17,5; 20,0; 23,75 — 25,0; 31,25; 35,0 — 40,0; 48,75 — 50,0; 58,75 — 60,0; 71,25— 73,75; 76,25 — 77,5; 97,5— 100,0. Вторая группа из 2 культур имела 15 общих фракций с Rf 16,7; 21,4; 26,2; 33,3; 40,5; 44,0; 52,4; 58,3; 64,3; 70,2; 76,2; 83,3; 88,1; 92,9; 97,6 — 100,0. В составе остальных 6 групп было по одному штамму.
Следующий этап исследования заключался в сопоставлении электрофореграмм внеклеточных белков культур с их фаговаровой принадлежностью. Из 12 штаммов первой группы, объединенных ранее по сходству спектров внеклеточных белков, 4 принадлежали фаговару 85, остальные не типировались коммерческим набором бактериофагов. Во вторую группу вошли MSRA с фаговаром 85, не типируемые фагами, в третью и четвертую — стафилококки с фаговаром 94/96, в пятую—с фаговаром 94/95/96, в шестую — с фаговаром 80, в седьмую и восьмую — стафилоккоки, не типируемые коммерческим набором бактериофагов.
ВЫВОДЫ
1. Среди S. aureus, циркулирующих в лечебных стационарах, MRSA составили 8,1%. Выявлены статистически значимые отличия MRSA, выделенных от различных источников.
2. Штаммы, устойчивые к метициллину, отличаются одновременной резистентностью к 5 — 9 антибиотикам (84,9%), продукцией гемолизинов, фибринолизина, гиалуронидазы. MRSA устойчивы (56,6%) к литическому действию фагов коммерческого набора. Среди фаголизабельных доминируют фаговары 85 (39,1%) и 52А (21,7%).
3. Электрофоретический анализ экзобелков позволил дифференцировать MRSA, не типируемые фагами, и отнести их к фаговару 85, а также выделить внутри фаговаров 85 и 94/96 два типа штаммов, различающихся по спектрам белкового состава.

×

About the authors

L. T. Musina

Kazan Order of the Red Banner of Labor of the Medical Institute named after S.V. Kurashov; Central Research Institute of Epidemiology, Moscow

Author for correspondence.
Email: info@eco-vector.com
Russian Federation

N. A. Semina

Kazan Order of the Red Banner of Labor of the Medical Institute named after S.V. Kurashov; Central Research Institute of Epidemiology, Moscow

Email: info@eco-vector.com
Russian Federation

K. K. Gladkova

Kazan Order of the Red Banner of Labor of the Medical Institute named after S.V. Kurashov; Central Research Institute of Epidemiology, Moscow

Email: info@eco-vector.com
Russian Federation

O. S. Darbeeva

Kazan Order of the Red Banner of Labor of the Medical Institute named after S.V. Kurashov; Central Research Institute of Epidemiology, Moscow

Email: info@eco-vector.com
Russian Federation

References

  1. Акатов А. К., Бароян О. В., Беляков B. Д. и др. Стафилококки и стафилококковые инфекции.—Саратов, 1980.
  2. Дегтева Г. К., Беляев Е. И., Калина А. П. Журн. микробиол.—1971.—№ 8.—С. 112—116.
  3. Буева В. С., Дмитриенко О. А., Акатов А. К. и др. Журн. микробиол.—1988—№ 4.—C. 100—102.
  4. Имшенецкая В. Ф. Проблемы стафилококковых инфекций.—Саратов, 1986.
  5. Панченков И. Р., Муразян Р. И., Палей О. С. Антибиотики.—1983.—№ 10.—С. 767— 771.
  6. Смирнова А. М., Трояшкин А. А., Падерина Е. М. Микробиология и профилактика стафилококковых инфекций.—Л., 1977.
  7. Электрофоретические методы идентификации стафилококков.—Горький, 1985.
  8. Acar J. F./[Sem. Hop. Paris.— 1987.— Vol. 63.—Р. 3542-3545.
  9. Bradley J. M. I international conf, of the hospital infection society.—England, 1987.—Ref. P. 2/1.
  10. Gilder S. B. f/S. Afr. Med. J.1986.— Vol. 70.—P. 520.
  11. Haiduven-Sriffiths DJ/Amer. J. Infec. Contr.— 1988.—Vol. 16.—P. 123—127.
  12. Parent X., Lionsguy G. Biologiste.— 1987.—Vol. 21.—P. 541/45—545/49.
  13. Scehito G. G., Varaldo P. Е.ЦУ Artimicrob. Chemother.—1988.—Vol. 21.—P. 67— 81.

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML

© 1993 Musina L.T., Semina N.A., Gladkova K.K., Darbeeva O.S.

Creative Commons License

This work is licensed
under a Creative Commons Attribution-NonCommercial-ShareAlike 4.0 International License.





This website uses cookies

You consent to our cookies if you continue to use our website.

About Cookies