Нейтрофилы крови и изменение их функциональной активности при шокогенных повреждениях
- Авторы: Сабитова А.М.1
-
Учреждения:
- Казанский медицинский университет
- Выпуск: Том 75, № 4 (1994)
- Страницы: 322-324
- Раздел: Обзоры
- Статья получена: 14.12.2021
- Статья одобрена: 14.12.2021
- Статья опубликована: 15.07.1994
- URL: https://kazanmedjournal.ru/kazanmedj/article/view/90410
- DOI: https://doi.org/10.17816/kazmj90410
- ID: 90410
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Фагоцитарные реакции занимают одно из центральных мест в регуляции гомеостаза и играют важную роль в формировании патологических процессов. Особое значение среди последних имеет шок, развивающийся при мощных агрессивных воздействиях на организм и сопровождающийся значительными структурно-функциональными сдвигами, которые охватывают все системы, в том числе и фагоцитарные. По происхождению и структурно-функциональным особенностям все фагоцитирующие клетки делятся на микрофаги (нейтрофилы) и макрофаги (альвеолярные, клетки Купфера, моноциты и др.).
Ключевые слова
Полный текст
Фагоцитарные реакции занимают одно из центральных мест в регуляции гомеостаза и играют важную роль в формировании патологических процессов. Особое значение среди последних имеет шок, развивающийся при мощных агрессивных воздействиях на организм и сопровождающийся значительными структурно-функциональными сдвигами, которые охватывают все системы, в том числе и фагоцитарные. По происхождению и структурно-функциональным особенностям все фагоцитирующие клетки делятся на микрофаги (нейтрофилы) и макрофаги (альвеолярные, клетки Купфера, моноциты и др.).
Большинство клинических исследований по фагоцитозу проведено на нейтрофилах, так как именно они составляют основную часть фагоцитирующих клеток крови и служат наиболее удобным объектом для наблюдений. Нейтрофил называют «зеркалом гомеостаза», подразумевая его способность к быстрому и точному отражению разнообразных нарушений в организме, а также высокую скорость обновления нейтрофилов крови, которые полностью заменяются каждые 6—10 часов и, следовательно, фиксируют те сдвиги, которые произошли за этот период в организме [8].
Функции зрелых нейтрофилов в организме многообразны и расшифрованы не до конца, но ведущая из них, безусловно, антимикробная, которая реализуется посредством фагоцитоза бактерий и иммунных комплексов либо путем активной секреции бактерицидных факторов, преформированных в гранулах в инфицированную ткань.
Условно в процессе фагоцитоза выделяют несколько стадий [9]: хемотаксис (направленное движение в сторону фагоцитируемого объекта), сорбцию (или рецепцию) объекта фагоцитоза на плазматической мембране нейтрофила, поглощение (или собственно фагоцитоз), киллинг и внутриклеточное переваривание.
Биоцидная система нейтрофила состоит из двух принципиально отличающихся друг от друга групп: компонентов кислородзависимой бактерицидности и кислороднезависимых факторов. Обладая способностью к разнообразным реакциям, нейтрофилы не всегда активируются одновременно по каждой из них [8].
Нейтрофил как элемент «первой линии» защиты организма от нарушений гомеостаза активно вовлекается в патологические процессы, развивающиеся при различных угрожающих жизни (терминальных) состояниях: обширных ожогах, механической травме, синдроме ДВС. В настоящее время основными причинами смерти при этих состояниях являются шок и инфекционные осложнения (ожоговый и раневой сепсис). Развитие сепсиса объясняется не только и не столько наличием широких входных ворот инфекции, сколько несостоятельностью систем неспецифической резистентности и иммунитета [7].
В разделе изучения активности факторов неспецифической резистентности большинство исследований в клинике и эксперименте посвящено оценке различных стадий фагоцитоза полиморфноядерными лейкоцитами (ПМЛ) периферической крови. В этих работах обращает на себя внимание стереотипность происходящих во времени событий при ожоговой и механической травмах, а также при обширном хирургическом вмешательстве [6]. В ранней стадии шока (в эректильной фазе) поглотительная способность нейтрофилов, оцениваемая по фагоцитарной активности (ФА) и фагоцитарному индексу (ФИ), у части обследованных повышена или нормальная [1, 5], у других — значительно снижена [4, 5]. При этом во всех случаях регистрируются низкие показатели завершенности фагоцитоза (ПЗФ). Эти сдвиги сопровождаются кратковременной лейкопенией [1], вызванной, по-видимому, краевым стоянием стимулированных нейтрофилов в сосудистом русле. В дальнейшем в торпидной фазе шока и постшоковом периоде наблюдаются лейкоцитоз, нейтрофилез с увеличением числа сегментоядерных клеток, анэозинофилия, лимфопения. Количество моноцитов остается нормальным или повышено [4, 12]. Для поздних проявлений шока характерно угнетение всех факторов неспецифической защиты: снижение уровней комплемента, лизоцима, пропердина, иммуноглобулинов [1, 3, 10], фибронектина [16], метаболической активности нейтрофилов, уменьшение числа поглощаемых нейтрофилом микробов и их разрушение в клетке [4, 5, 25]. Лизосомальная секреция ПМЛ, оцениваемая по суммарной бактерицидной активности сыворотки крови, имеет тенденцию к снижению [4], уменьшается и уровень катионных белков в гранулах нейтрофилов [2, 11]. При исследовании больных в раннем постшоковом периоде травматической болезни выявлено значительное угнетение хемотаксиса лейкоцитов [17]. Степень угнетения фагоцитоза коррелирует с тяжестью состояния больных и прогрессирует по мере развития ожоговой болезни. У части больных изучаемые показатели не достигают нормальных цифр даже в периоде выздоровления [5].
Проведенные нами исследования [13, 14] подтвердили подавление функциональной активности нейтрофилов и зависимость степени угнетения фагоцитоза от тяжести травматического и ожогового шока. Установлено, что при ранней реакции организма на травму, несмотря на высокую поглотительную способность нейтрофилов, отмечается снижение их микробицидной активности. Сопоставление полученных результатов с литературными данными [16] свидетельствует о корреляции прослеженных изменений с падением уровня плазменного фибронектина и подавлением клиринговой функции РЭС. Стимуляция системы мононуклеарных фагоцитов, не оказывая заметного влияния на поглотительную способность нейтрофилов, приводит к усилению их микробицидных свойств до значений, которые у части животных превышают нормальные показатели. Одновременно отмечаются повышение резистентности к шоковому воздействию и увеличение числа выживших животных к исходу торпидной фазы шока.
Таким образом, развитие шока вызывает серьезные расстройства механизмов антиинфекционной защиты, что является предрасполагающим фактором для развития инфекции. Сочетание нарушений внешнего защитного барьера и внутренних защитных систем приводит уже в самые ранние сроки к появлению бактериемии. В раннем периоде из крови выделяются главным образом E. coli и S. epidermidis. Число бактерий достигает максимума через 2—4 часа после травмы, к 12 часам их количество несколько снижается. Исследования, проведенные для выяснения источника развивающейся ранней бактериемии, позволили установить, что в первые часы после шокогенной травмы в кровоток поступают в основном представители нормальной и условно-патогенной микрофлоры кишечника [4]. Бактериемия играет важную роль в патогенезе шока, вызывая микробную интоксикацию и сенсибилизацию организма, утяжеляя течение шока и предопределяя в последующем развитие септических осложнений [7]-
Изменение функции нейтрофилов при шоке не ограничивается подавлением фагоцитоза и антимикробной активности. Шоковый процесс любой этиологии характеризуется развитием полиорганной недостаточности. При этом тяжесть состояния больного во многом определяется поражением жизненно важных органов.
Важнейшими факторами, способствующими повреждению эндотелия сосудов микроциркуляторного русла и тканей «шоковых» органов, являются активированные нейтрофилы [28, 34]. В последнее время утвердилось мнение, что ПМЛ-обусловленное повреждение клеток инициируется эндотоксином — биологически активным веществом, освобождающимся при гибели грамотрицательных бактерий [20, 30]. Эндотоксемия развивается в тех случаях, когда количество поступающего в кровь эндотоксина превосходит возможности клеток РЭС по его элиминации. Такая ситуация складывается при развитии любого шокового процесса, который характеризуется повышенным поступлением эндотоксина через ишемизированную стенку кишечника в кровоток в связи с повреждением печеночного барьера [16, 18]. Нейтрофильные гранулоциты являются основными акцепторами эндотоксина. Связывание нейтрофилов с липополисахаридом (ЛПС) приводит к перераспределению этих клеток в микроциркуляторном русле и сопровождается повышением способности их к адгезии и агрегации [15, 24, 28]. Аккумуляция нейтрофилов в легких при респираторном дистресс-синдроме (РДС) может происходить под воздействием хематтрактантов, выделяемых активированными макрофагами [30].
При адгезии нейтрофилы подвергаются активации и секретируют комплекс биологически активных эффекторных субстанций: лизосомальные ферменты, супероксидные радикалы, кинины, комплексное воздействие которых ведет к повреждению эндотелия и повышению проницаемости альвеолярно-капиллярного барьера [26]. Большинством авторов признается ведущая роль в этом процессе свободных радикалов кислорода, образующихся в результате «респираторного взрыва», освобождаемых нейтрофилами и активирующих перекисное окисление липидов [23, 29].
Эффекты воздействия эндотоксина на нейтрофилы могут опосредоваться комплементом и другими гуморальными факторами. Так, введение подопытным животным интерлейкина-1 и фактора некроза опухолей ведет к активации нейтрофилов и развитию клиники РДС [22, 31].
Лейкостаз в легочных капиллярах заканчивается выходом части нейтрофилов в просвет бронхов. Этот процесс сопровождается изменением их функциональных свойств. Гранулоциты лаважной жидкости обладают значительно сниженной адгезивностью и фагоцитарной активностью [24]. Депрессия фагоцитоза может частично объяснить снижение бактериального клиренса и высокий риск развития легочного сепсиса при шоке. Нейтропения уменьшает клинические проявления РДС, но не предотвращает его развития [33]. Активация гранулоцитов в легочных капиллярах является важным, но не единственным механизмом повреждения легких при шоке.
Дестабилизация гомеостаза, наблюдающаяся при шоке, приводит к развитию острого генерализованного воспалительного процесса. К центральным эффекторам воспаления принадлежит активированный нейтрофил, секретирующий продукты, инициирующие и поддерживающие этот процесс (лейкотриены, простагландины, тромбоцитактивирующий фактор, лизосомальные ферменты, токсические оксиметаболиты) [26, 32]. Гистоны и катионные белки, выделяемые нейтрофильными гранулоцитами, выступают как медиаторы воспаления, вызывая дегрануляцию тучных клеток с выходом в плазму крови биологически активных веществ (гистамина и др.) [9].
Гранулоциты вносят свой вклад в развитие синдрома внутрисосудистого свертывания крови (ДВС), так как при стимуляции способны выделять прокоагулирующие факторы [27]. В нейтрофилах содержатся тромбопластин и факторы свертывания VIII, IX и XII. Этот факт доказывают опыты, проведенные на животных, лишенных нейтрофилов [21]: у них не удается воспроизвести феномен Швартцмана. Токсические субстанции, продуцируемые нейтрофилами, — свободные радикалы кислорода, лизосомальные ферменты, тромбоцитактивирующий фактор — способны повредить эндотелий и тем самым инициировать или усугублять проявления ДВС [19]. Развитие синдрома ДВС при шоке сопровождается активацией калликреин-кининовой системы, степень которой коррелирует с тяжестью течения шока [11]. Кининогеназа нейтрофилов, выделяющаяся при дегрануляции, потенцирует процесс образования биологически активных кининов [8], вызывая дополнительную активацию фактора XII, повышение проницаемости и снижение тонуса сосудов.
Таким образом, гиперактивация нейтрофилов может быть ответственной за повреждение органов и тканей при шоке. Вместе с тем необходимо отметить и важное адаптивное значение системы полиморфноядерных лейкоцитов при шоке. Развитие нейтропении является плохим прогностическим признаком [18].
Следовательно, нейтрофилы активно участвуют в патогенезе шока и его последствий. Изучение различных морфофункциональных их особенностей после шокогенных воздействий на организм может способствовать разработке дополнительных критериев диагностики тяжести и прогнозирования исходов постагрессивных состояний, оценке резистентности организма и эффективности лечебных мероприятий как в лечебной, так и в экспертной практике.
Об авторах
А. М. Сабитова
Казанский медицинский университет
Автор, ответственный за переписку.
Email: info@eco-vector.com
Кафедра судебной медицины, кафедра детских инфекций
Россия, КазаньСписок литературы
- Беловолова Р.А., Сааков Б.А. // Пат. физиол.— 1980 — № 4 — С. 52 — 56.
- Глибин В.Н., Шевченко М.А. Общие и частные вопросы воспаления. — Л.— 1988.
- Голубев Г.Ш., Поляк А.И. // Вестн. хир.— 1985.—№ 8. —С. 115—120.
- Долгушин И.И., Эберт Л.Я., Лифшиц Р.И. Иммунология травм. — Свердловск, 1989.
- Жуковский Ю.М., Шведов Л.М., Железный В.И. // Клин. хир.— 1987.— № 3.—С. 36 —38.
- Зимин Ю.И. // Вопр. мед. химии. —1990.—№ 2.—С. 53 — 55.
- Колкер И.И., Каем Р.И., Буль С.М. // Арх. патол. — 1974.— № 1.— С. 3—12.
- Маянский А.Н., Маянский Д.Н. Очерки о нейтрофиле и макрофаге. — Новосибирск, 1989.
- Пигаревский В.Е. Зернистые лейкоциты и их свойства. — М., 1978.
- Подосинников И.С., Худайберенов Г.С. // Вести. хир.— 1981.— № 8.— С. 116 — 120.
- Проценко В.А., Богадельников И.В., Харченко В.З., Шпак С.И. Шок: патогенез и экспериментальная терапия. — Киев, 1988.
- Редькин Ю.В., Соколова Т. Ф. // Лабор. дело, — 1985.— № 5.— С. 285 — 289.
- Сабитова А.М., Шакирова А.З., Анохин В.А., Харин Г.М. Медицина катастроф: Материалы научно-практической конференции. — Набережные Челны, 1992.
- Сабитова А.М. Новые средства и методы противомикробной и противовоспалительной терапии в современной клинике. Материалы научно-практической конференции. — Харьков, 1992.
- Саркисов Д.С., Пальцын А.А., Колкер И.И. // Арх. патол. — 1986.— № 12.— С. 6 — 13.
- Харин Г.М., Зинкевич О.Д., Литвинов Р.И. // Гематол. и трансфузиол. — 1992.— № 2.—С. 21 —24.
- Худайберенов Г.С., Селезнев С.А., Подосинников И.С.// Вестн. хир.— 1981.—№ 11.—С. 56 — 59.
- Яковлев М.Ю. // Казанский мед. ж.— 1988. —№ 5.—С. 353 — 358.
- Braquet P.L., Touqui T.J. // Pharmacol. Rev.— 1987.—Vol. 39, —P. 97—145.
- Briqham K., Meyrick B. // Resp. Dis.— 1986.—Vol. 133.—P. 913—927.
- Bohn E., Muller-Berqhaus G. // Amer. J. Path.— 1976. — Vol. 84. — P. 239—258.
- Goldblum S.E., Jay M., Ioneda K. et al. // J. Appl. Physiol.— 1987. — Vol. 63.— P. 2093—2100.
- Grisham M.O., Everse J., Janssen H.F. // Am. J. Phys.—1988. —Vol. 254. —P. 1017—1022.
- Gwiswold J., Maget R. // J. Surg. Res.— 1984.—Vol. 44.—P. 417—424.
- Hescelik G., Erguven S., Ozalp M., et al // Sth. Eur. Congr. Clin. Microbiol. and Infect. Diseases. — Oslo, 1991.
- Hogg J.C. // Physoli. Rep.— 1987.— Vol. 67,—P. 1249—1295.
- Lerner R.G., O'Shea J., Shused T. et al. // J. exp. Med.— 1984.— Vol. 159.— P. 137— 151.
- Regel G., Nerlick M.L., Dwenger A. et al. // J. Surg. research.— 1987.— Vol. 42.— P. 74—84.
- Rivkind A.I., Siegel J.H. // Circ. shok. — 1991.—Vol. 33.—P. 48—62.
- Rinaldo J.E., Dauber J.H., Christman J., Robers R.M. // Tissue Cell. — 1985.— Vol. 17.—P. 461—472.
- Stephens K.E., Ishizaka A., Wu Z. et al. // Am. Rev. Resp. Dis.— 1988.— Vol. 138.— P. 1300—1307.
- Tate R., Repine J. // Am. Rev. Resp. Dis.— 1983.—Vol. 128.—P. 552—559.
- Till D., Johson K.J., Kunkel R., Ward P.A. // J. Clin. Invest. — 1982.—Vol. 69.—P. 1126—1135.
- Traber D., Schlang G., Redl H. et al. // Circulat. Shock. — 1987.— Vol. 22.— P. 185— 193.
Дополнительные файлы
