Экспрессия иммунных контрольных точек Т-лимфоцитами в регионарных лимфатических узлах у больных колоректальным раком
- Авторы: Крюкова В.В.1, Цепелев В.Л.1, Терешков П.П.1
-
Учреждения:
- Читинская государственная медицинская академия
- Выпуск: Том 106, № 3 (2025)
- Страницы: 341-348
- Раздел: Теоретическая и клиническая медицина
- Статья получена: 22.01.2025
- Статья одобрена: 11.03.2025
- Статья опубликована: 30.05.2025
- URL: https://kazanmedjournal.ru/kazanmedj/article/view/646505
- DOI: https://doi.org/10.17816/KMJ646505
- EDN: https://elibrary.ru/UXXNJY
- ID: 646505
Цитировать
Полный текст



Аннотация
Актуальность. Изучение экспрессии иммунных контрольных точек T-лимфоцитами необходимо для определения стратегии иммунотерапии колоректального рака.
Цель. Изучить экспрессию иммунных контрольных точек Т-лимфоцитами в регионарных лимфатических узлах у больных колоректальным раком.
Материал и методы. Методом проточной цитометрии исследован уровень экспрессии иммунных контрольных точек (CTLA-4, PD-1, TIM-3) Т-лимфоцитами в регионарных лимфатических узлах у 105 больных колоректальным раком III стадии. Контрольную группу составили 75 пациентов с неопухолевыми заболеваниями толстой кишки. Для сравнения двух независимых групп применяли критерий Манна–Уитни. Оценку порога диагностической значимости показателей проводили с помощью ROC-анализа. Статистически значимыми считали различия при р <0,05.
Результаты. У больных колоректальным раком в регионарных лимфатических узлах увеличивалась экспрессия CTLA-4 Т-хелперами в 7,9 раза [42,9 (25,1; 59,8) % — в основной группе и 5,4 (2,8; 7,8) % — в контрольной, p <0,001] и цитотоксическими Т-лимфоцитами — в 4,5 раза [35,0 (16,9; 52,8) % у больных колоректальным раком и 7,8 (3,5; 12,7) % в контроле, p <0,001]. Зарегистрировано увеличение экспрессии PD-1 CD4-позитивными Т-лимфоцитами в регионарных лимфатических узлах при колоректальном раке в 1,5 раза [46,9 (33,5; 62,9) % у больных раком толстой кишки и 31,7 (18,9; 42,7) % — в контрольной группе, p <0,001] и на поверхности цитотоксических Т-лимфоцитов — в 2,2 раза (p <0,001). Экспрессия молекулы TIM-3 цитотоксическими Т-лимфоцитами в регионарных лимфатических узлах составила 3,8 (2,3; 6,6) % у больных колоректальным раком, что превышает данный показатель группы контроля, равный 2,3 (1,5; 4,1) %, в 1,7 раза (p <0,001). Установлен статистически значимый порог превышения уровня экспрессии белка CTLA-4 на поверхности Т-хелперов регионарных лимфатических узлов — 11,1% и более, а на цитотоксических Т-лимфоцитах — более 20,1%.
Заключение. У больных колоректальным раком в регионарных лимфатических узлах увеличивается экспрессия ко-ингибирующего белка CTLA-4 и PD-1 на поверхности как Т-хелперов, так и цитотоксических Т-лимфоцитов, а также молекулы TIM-3 — на CD8+-лимфоцитах.
Ключевые слова
Полный текст

Об авторах
Виктория Викторовна Крюкова
Читинская государственная медицинская академия
Email: oigen72@yandex.ru
ORCID iD: 0009-0008-2228-3351
SPIN-код: 7136-0110
кандидат медицинских наук, доцент, каф. госпитальной хирургии с курсом детской хирургии
Россия, 672000, Чита, ул. Горького, д. 39аВиктор Львович Цепелев
Читинская государственная медицинская академия
Автор, ответственный за переписку.
Email: viktorcepelev@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-2166-5154
SPIN-код: 4624-4537
Scopus Author ID: 55548678900
ResearcherId: MCJ-0526-2025
доктор медицинских наук, профессор, заведующий, каф. госпитальной хирургии с курсом детской хирургии
Россия, 672000, Чита, ул. Горького, д. 39аПавел Петрович Терешков
Читинская государственная медицинская академия
Email: tpp6915@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-8601-3499
SPIN-код: 5228-8808
кандидат медицинских наук, заведующий, лаб. экспериментальной и клинической биохимии и иммунологии
Россия, 672000, Чита, ул. Горького, д. 39аСписок литературы
- Arasa J, Collado-Diaz V, Halin C. Structure and immune function of afferent lymphatics and their mechanistic contribution to dendritic cell and T cell trafficking. Cells. 2021;10(5):1269. doi: 10.3390/cells10051269 EDN: IBMPJF
- Lei PJ, Fraser C, Jones D, et al. Lymphatic system regulation of anti-cancer immunity and metastasis. Front Immunol. 2024;15:1449291. doi: 10.3389/fimmu.2024.1449291 EDN: WTIORR
- Zheng Z, Wieder T, Mauerer B, et al. T cells in colorectal cancer: unravelling the function of different T cell subsets in the tumor microenvironment. Int J Mol Sci. 2023;24(14):11673. doi: 10.3390/ijms241411673 EDN: MMPGVR
- Morisaki T, Morisaki T, Kubo M, et al. Lymph nodes as anti-tumor immunotherapeutic tools: intranodal-tumor-specific antigen-pulsed dendritic cell vaccine immunotherapy. Cancers. 2022;14(10):2438. doi: 10.3390/cancers14102438 EDN: VLNLUH
- Goode EF, Roussos Torres ET, Irshad S. Lymph node immune profiles as predictive biomarkers for immune checkpoint inhibitor response. Front Mol Biosci. 2021;8:674558. doi: 10.3389/fmolb.2021.674558 EDN: EHYQZH
- Fransen MF, van Hall T, Ossendorp F. Immune checkpoint therapy: tumor draining lymph nodes in the spotlights. Int J Mol Sci. 2021;22:9401. doi: 10.3390/ijms22179401 EDN: JHZXWH
- Zhang Y, Zheng J. Functions of immune checkpoint molecules beyond immune evasion. Adv Exp Med Biol. 2020;1248:201–226. doi: 10.1007/978-981-15-3266-5_9
- Zhang H, Dai Z, Wu W, et al. Regulatory mechanisms of immune checkpoints PD-L1 and CTLA-4 in cancer. J Exp Clinic Cancer Res. 2021;40(1):184. doi: 10.1186/s13046-021-01987-7 EDN: TEVMDU
- Saleh R, Taha RZ, Toor SM, et al. Expression of immune checkpoints and T cell exhaustion markers in early and advanced stages of colorectal cancer. Cancer Immunology, Immunotherapy. 2020;69:1989–1999. doi: 10.1007/s00262-020-02593-w EDN: FUYBXJ
- Chetveryakov AV, Tsepelev VL. Level of co-inhibitory immune checkpoints in tumor tissue in patients with colon neoplasms. Mol Med. 2023;21(1):56–60. doi: 10.29296/24999490-2023-01-08
- Chetveryakov AV, Tsepelev VL. Concentration of co-inhibitory immune checkpoints and their ligands in the blood of patients with colon tumor. Pathological physiology and experimental therapy. 2023;67(1):56–62. doi: 10.25557/0031-2991.2023.01.56-62 EDN: HDLEXN
- Xie YH, Chen YX, Fang JY. Comprehensive review of targeted therapy for colorectal cancer. Signal Transduct Target Ther. 2020;5(1):1–30. doi: 10.1038/s41392-020-0116-z EDN: DCYDFN
- Kudryavtsev IV, Borisov AG, Krobinets II, et al. Determination of the main subpopulations of cytotoxic T-lymphocytes by multicolor flow cytometry. Medical Immunology. 2015;17(6):525–538. doi: 10.15789/1563-0625-2015-6-525-538
- Mudrov VA. Algorithm for applying roc-analysis in biomedical research using the SPSS software package. Transbaikal Medical Bulletin. 2021;1:148–153. doi: 10.52485/19986173_2021_1_148
- Van Coillie S, Wiernicki B, Xu J. Molecular and cellular functions of CTLA-4. Adv Exp Med Biol. 2020;1248:7–32. doi: 10.1007/978-981-15-3266-5_2 EDN: CNNTKJ
- Kanunova TA, Makarova YuA, Belova LA, Shamrova EA. Pathophysiological mechanisms of the use of checkpoint inhibitors in the regulation of the antitumor immune response. Scientific review. Medical Sciences. 2020;4:33–37. EDN: QYXMUZ
- Pauken KE, Torchia JA, Chaudhri A, et al. Emerging concepts in PD-1 checkpoint biology. Semin Immunol. 2021;52:101480. doi: 10.1016/j.smim.2021.101480 EDN: UVBAWR
- Han Y, Liu D, Li L. PD-1/PD-L1 pathway: current researches in cancer. Am J Cancer Res. 2020;10(3):727. Available from: https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC7136921/
- Acharya N, Sabatos-Peyton C, Anderson AC. Tim-3 finds its place in the cancer immunotherapy landscape. J Immunother Cancer. 2020;8(1):000911. doi: 10.1136/jitc-2020-000911 EDN: NGEVXE
- Joller N, Anderson AC, Kuchroo VK. LAG-3, TIM-3, and TIGIT: distinct functions in immune regulation. Immunity. 2024;57(2):206–222. doi: 10.1016/j.immuni.2024.01.010 EDN: OEDHIT
- Hossain MA, Liu G, Dai B, et al. Reinvigorating exhausted CD8+ cytotoxic T lymphocytes in the tumor microenvironment and current strategies in cancer immunotherapy. Med Res Rev. 2021;41(1):156–201. doi: 10.1002/med.21727 EDN: RKQBGZ
Дополнительные файлы
