Апоптоз лимфоцитов у пациентов с коронавирусной инфекцией COVID-19

Обложка


Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Доступ платный или только для подписчиков

Аннотация

Актуальность. Лимфопения у пациентов с коронавирусной инфекцией COVID-19 ассоциируются с риском развития тяжёлых форм и неблагоприятного исхода. Одна из причин развития лимфопении — апоптоз.

Цель. Оценка выраженности апоптоза лимфоцитов периферической крови у пациентов со среднетяжёлым и тяжёлым течением COVID-19.

Материал и методы. Обследованы 42 пациента с COVID-19 в возрасте от 37 до 90 лет, госпитализированных в ГАУЗ «Республиканская клиническая инфекционная больница имени профессора А.Ф. Агафонова», г. Казань, в период с 24 октября 2021 г. по 1 марта 2022 г. У 13 пациентов объём поражения лёгких составил от 10 до 25% (КТ-1), у 20 — от 25 до 50% (КТ-2), у 9 — от 50 до 75% (КТ-3). Рибонуклеиновая кислота вируса SARS-CoV-2 из носоглотки была выделена у 35 (83%) пациентов. У 14 больных было среднетяжёлое течение COVID-19, у 28 — тяжёлое. Контрольную группу составили 10 условно здоровых людей аналогичного возраста. Оценку апоптоза лимфоцитов осуществляли на основании количественного определения гиподиплоидных клеток по изменению интенсивности их окраски пропидия йодидом с помощью проточной цитометрии. Для определения достоверности различий показателей между сравниваемыми группами применяли U-критерий Манна–Уитни, при сравнении процентных долей — критерий χ2. Достоверность различий устанавливали при р <0,05.

Результаты. Выявлено, что у пациентов с COVID-19 достоверно более высокая активность апоптоза лимфоцитов по сравнению с контрольной группой. Медиана изучаемого показателя у больных COVID-19 составила 39,3%, тогда как в контрольной группе — 15,1% (р <0,001). Выраженность апоптоза лимфоцитов коррелировала с тяжестью заболевания: наиболее высокие показатели зарегистрированы у пациентов с тяжёлым течением COVID-19 (р=0,02). При этом апоптоз лимфоцитов >55% ассоциировался с риском летального исхода (р=0,03). Была установлена умеренно выраженная корреляционная связь между показателями апоптоза лимфоцитов и уровнем в крови ферритина (коэффициент Спирмена р=0,39, p <0,05).

Вывод. Коронавирусная инфекция COVID-19 сопровождается повышением активности апоптоза лимфоцитов периферической крови; наиболее высокие показатели апоптоза зарегистрированы у пациентов с тяжёлым течением COVID-19.

Полный текст

АКТУАЛЬНОСТЬ

Дисрегуляция иммунной системы играет ведущую роль в патогенезе тяжёлых форм COVID-19 (от англ. COronaVIrusDisease 2019 — коронавирусная инфекция 2019 г.) [1]. Известно, что поражение лёгких при COVID-19 обусловлено гипервоспалительной реакцией, характеризующейся повышением в крови провоспалительных цитокинов, С-реактивного белка и ферритина [2]. С другой стороны, характерным лабораторным признаком тяжёлых форм COVID-19 бывает выраженная лимфопения [1], с которой ассоциируется риск летального исхода [3].

Будучи клетками адаптивного иммунитета, лимфоциты играют ключевую роль в формировании специфического иммунного ответа и элиминации патогенных микроорганизмов. Лимфопения при COVID-19 может быть обусловлена несколькими причинами: гибелью лимфоцитов, чрезмерным образованием провоспалительных цитокинов, ингибированием лимфопоэза, миграцией лимфоцитов в органы дыхания [4].

Механизм гибели лимфоцитов при COVID-19 может реализоваться несколькими путями: апоптозом, пироптозом, аутофагией, вирус-специфической CD8+-Т-лимфоцит-зависимой цитотоксичностью и антителозависимой клеточно-опосредованной цитотоксичностью [4].

Учитывая важную роль лимфопении в формировании тяжёлых форм COVID-19, представляется актуальным изучение выраженности апоптоза лимфоцитов у пациентов с COVID-19, что позволит обосновать новые направления патогенетической терапии.

Цель исследования — оценка выраженности апоптоза лимфоцитов периферической крови у пациентов со среднетяжёлым и тяжёлым течением COVID-19.

МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ

Обследованы 42 пациента с COVID-19 в возрасте от 37 до 90 лет, находившихся на стационарном лечении в ГАУЗ «Республиканская клиническая инфекционная больница имени профессора А.Ф. Агафонова» в период с 24 октября 2021 г. по 1 марта 2022 г. Средний возраст пациентов составил 67,3±13,7 года.

Критерием включения пациентов в исследование было развитие среднетяжёлого или тяжёлого течения COVID-19, критерием невключения — лёгкое течение заболевания.

Диагностику COVID-19 осуществляли в соответствии с временными методическими рекомендациями «Профилактика, диагностика и лечение новой коронавирусной инфекции COVID-19», версия 10 от 08.02.2021 [5]. У 14 пациентов было диагностировано среднетяжёлое течение COVID-19, у 28 — тяжёлое.

У всех пациентов при проведении компьютерной томографии (КТ) органов грудной клетки выявлены изменения в лёгких в виде «матового стекла». У 13 больных объём поражения лёгких составил от 10 до 25% (КТ-1), у 20 — от 25 до 50% (КТ-2), у 9 — от 50 до 75% (КТ-3). В 35 (83%) случаях диагноз COVID-19 был подтверждён выделением рибонуклеиновой кислоты (РНК) SARS-CoV-2 (от англ. Severe acute respiratory syndrome-related coronavirus-2 — второй коронавирус тяжёлого острого респираторного синдрома) из носоглотки (код заболевания U07.1). В остальных 7 (17%) случаях диагноз заболевания был выставлен на основании клинической картины (лихорадка, кашель, признаки дыхательной недостаточности) и изменений в лёгких в виде «матового стекла», выявленных при проведении КТ органов грудной клетки (код заболевания U07.2).

У 33 (88%) из 42 пациентов установлены коморбидные заболевания, среди которых чаще регистрировали гипертоническую болезнь (71%), сахарный диабет (33%) и ожирение (28%). Абсолютная лимфопения (менее 1×109/л) выявлена у 18 (43%) из 48 пациентов. Все больные нуждались в респираторной поддержке, 6 из них находились на искусственной вентиляции лёгких. В 6 случаях заболевание завершилось летальным исходом. Характеристика пациентов представлена в табл. 1. Контрольную группу составили 10 условно здоровых людей аналогичного возраста (р=0,1).

 

Таблица 1. Клинико-лабораторная характеристика пациентов с COVID-19

Параметр

Пациенты с COVID-19, n=42

Контрольная группа, n=10

Значимость

Возраст, годы, М±SD

67,3±13,7

60,6±8,2

р=0,1

Женский пол, абс. (%)

25 (59,5)

6 (60)

χ2=0,02; р=0,8

День госпитализации, Ме [межквартильный размах]

7 [5–8]

Выделение РНК SARS-CoV-2, абс. (%)

35 (83)

Объём поражения лёгких, абс. (%):

  • КТ-1;
  • КТ-2;
  • КТ-3

13 (31)

20 (48)

9 (21)

Сопутствующие заболевания, абс. (%):

  • гипертоническая болезнь;
  • сахарный диабет
  • ожирение;
  • нарушения ритма сердца;
  • ХОБЛ;
  • ХБП;
  • онкологические заболевания

33 (78,5)

30 (71)

14 (33)

12 (28)

4 (9)

3 (7)

2 (4)

2 (4)

8 (80)

6 (60)

2 (20)

1 (10)

1 (10)

χ2=0,12; р=0,7

χ2=2,6; р=0,1

χ2=1,7; р=0,1

χ2=0,05; р=0,8

χ2=0,57; р=0,4

Респираторная поддержка, абс. (%):

  • НПО;
  • ВПО;
  • ИВЛ

31(74)

5 (12)

6 (14)

Лейкоциты (абс.), ×109/л, Ме [межквартильный размах]

7,2 [5, 4–10, 2]

5,2 [4, 5–6, 3]

0,01

Лимфоциты (абс.), ×109/л, Ме [межквартильный размах]

1,1 [0, 6–1, 5]

2,5 [2, 1–3, 4]

0,0002

Лимфоциты <109/л, абс. (%)

18 (43)

С-реактивный белок, Ме [межквартильный размах]

37,9 [9, 1–70]

0

Ферритин, нг/мл, Ме [межквартильный размах]

472 [229, 8–855]

107,5 [86–121]

0,00003

Примечание: РНК — рибонуклеиновая кислота; SARS-CoV-2 — второй коронавирус тяжёлого острого респираторного синдрома; КТ — компьютерная томография; ХОБЛ — хроническая обструктивная болезнь лёгких; ХБП — хроническая болезнь почек; НПО — низкопоточная оксигенация; ВПО — высокопоточная оксигенация; ИВЛ — искусственная вентиляция лёгких.

 

Наиболее распространённой коморбидной патологией в данной группе, как и в основной, была гипертоническая болезнь — 60% случаев. Пациенты основной группы и представители контрольной были сравнимы по возрасту, полу и коморбидной патологии (см. табл. 1).

Дана оценка выраженности спонтанного апоптоза лимфоцитов периферической крови в остром периоде COVID-19 по числу гиподиплоидных клеток и изменению интенсивности их окраски пропидия йодидом (Sigma Aldrich, CША) на проточной цитофлуориметрии (FACs Canto II, Becton Dickinson, США). Результаты оценивали через 96 ч культивирования лимфоцитов в плоскодонных 24-луночных планшетах (Corning, CША) в полной культуральной среде RPMI-1640 c добавлением L-глутамина, антибиотиков (стрептомицина и пенициллина) и 10% эмбриональной телячьей сыворотки (все реагенты ПАНЭКО, Москва, Россия). Забор крови для исследования проводили однократно, в первые 3 дня госпитализации и в среднем на 9-й день заболевания (95% доверительный интервал 8–10). Одновременно с изучением выраженности апопотоза лимфоцитов оценивали количество лимфоцитов периферической крови.

Исследование было обсервационным. Статистический анализ полученных результатов выполнен с использованием статистической программы Statistica for Windows 6.1 (Statsoft, Tulsa, OK, USA). Анализ соответствия вида распределения признака закону нормального распределения проводили с помощью теста Шапиро–Уилка. Нулевую гипотезу отклоняли при пороговом уровне статистической значимости (р), равном 0,05. В случае невыполнения данного условия использовали непараметрические методы статистического анализа. При распределении признака, отличном от нормального, из мер центральной тенденции использовали медиану (Ме), из мер рассеяния — межквартильный размах (значения 25-го и 75-го процентилей). Для определения достоверности различий показателей между сравниваемыми группами использовали U-критерий Манна–Уитни, при сравнении процентных долей — критерий χ2. Достоверность различий устанавливали при значении р <0,05.

Для оценки связи двух признаков (r) использовали непараметрический метод корреляционного анализа Спирмена. Используя таблицы сопряжённости, рассчитывали чувствительность (Se); специфичность (Sp); прогностическую ценность положительного результата теста (PV+); прогностическую ценность отрицательного результата теста (PV–); показатели отношения правдоподобия (LR) для положительного и отрицательного результатов; относительный риск.

Комитет по этике ГАУЗ «Республиканская клиническая инфекционная больница имени проф. А.Ф. Агафонова» одобрил это исследование (протокол №4/4 от 03.06.2021). Письменное информированное согласие было получено от пациентов в соответствии с руководящими принципами, утверждёнными в соответствии с этим протоколом (Федеральный закон «Об основах охраны здоровья граждан в Российской Федерации» от 21.11.2011 №323-ФЗ).

РЕЗУЛЬТАТЫ

Было установлено, что COVID-19 протекает на фоне усиления активности апоптоза лимфоцитов периферической крови (рис. 1). Медиана изучаемого показателя у пациентов с COVID-19 составила 39,3%, тогда как в контрольной группе — 15,1% (р <0,001). При этом выраженность апоптоза лимфоцитов коррелировала с тяжестью заболевания: самые высокие показатели были у пациентов с тяжёлым течением COVID-19 (табл. 2). Абсолютное количество лимфоцитов в крови больных с тяжёлым течением COVID-19 было ниже по сравнению с пациентами, у которых заболевание протекало в среднетяжёлой форме, однако это различие не было статистически значимым (p=0,1).

 

Рис. 1. Апоптоз лимфоцитов крови у пациентов с COVID-19 и в группе контроля

 

Таблица 2. Показатели лимфоцитов крови у пациентов с COVID-19 (медиана [межквартильный размах])

Показатель

Среднетяжёлое течение COVID-19 (n=14)

Тяжёлое течение COVID-19 (n=28)

р

Лимфоциты, ×109

1,43 [0, 97–1, 9]

0,93 [0, 58–1, 35]

0,1

Апоптоз лимфоцитов, %

28,8 [20, 6–42, 4]

40,8 [32, 4–49, 4]

0,02

 

Учитывая возможную связь воспалительной реакции с апоптозом лимфоцитов, нами был проведён корреляционный анализ выраженности апоптоза лимфоцитов с ключевыми маркёрами воспаления — С-реактивным белком и ферритином, значения которых у пациентов с COVID-19 были достоверно выше по сравнению с показателями контрольной группы (см. табл. 1). Установлена умеренно выраженная прямая корреляционная связь показателя апоптоза лимфоцитов с уровнем в крови ферритина (коэффициент Спирмена р=0,39, p <0,05). Связи степени апоптоза с уровнем С-реактивного белка не выявлено.

Оценка изучаемых показателей с учётом исхода заболевания показала, что в группе умерших пациентов количество лимфоцитов в крови было в 2,1 раза ниже по сравнению с выжившими (табл. 3). При этом активность апоптоза лимфоцитов хотя и была выше в группе умерших больных, однако это различие не было статистически значимым.

 

Таблица 3. Показатели лимфоцитов крови у выживших и умерших пациентов (медиана [межквартильный размах])

Показатели

Выжившие пациенты (n=36)

Умершие пациенты (n=6)

р

Лимфоциты, ×109

1,23 [0, 8–1, 6]

0,58 [0, 48–0, 7]

0,007

Апоптоз лимфоцитов, %

37,6 [28, 8–43, 6]

47,9 [28–57, 8]

0,3

 

Далее проведена оценка операционных характеристик диагностического теста «апоптоз лимфоцитов» в оценке риска летального исхода. Данные представлены в табл. 4. Было установлено, что апоптоз лимфоцитов выше 55% у пациентов с COVID-19 ассоциируется с риском летального исхода (р=0,03). При этом положительный результат теста на апоптоз клеток был максимально правдоподобен (LR+=3,8), что позволяет рассматривать его как достаточно надёжный.

 

Таблица 4. Апоптоз лимфоцитов и риск летальности при COVID-19

Апоптоз лимфоцитов, %

Se

Sp

PPV

NPV

LR+

LR–

RR

p

Порог отсечения 55%

50

86

0,37

0,08

3,8

0,5

4,2 [1, 0–17, 2]

0,03

Примечание: Se — чувствительность теста; Sp — специфичность теста; PPV — прогностическое значение положительного результата теста; NPV — прогностическое значение отрицательного результата теста; LR+ — отношение правдоподобия положительного результата теста; LR– — отношение правдоподобия отрицательного результата теста; RR — относительный риск; р — уровень статистической значимости.

 

ОБСУЖДЕНИЕ

Лимфопения — один из ключевых лабораторных показателей, определяющих тяжесть состояния и прогноз у пациентов с COVID-19. Лимфопения развивается у 63% пациентов с COVID-19 [6]. В нашем исследовании количество лимфоцитов <1,0×109/л зарегистрировано у 43% пациентов. При этом выраженность лимфопении была в 2,1 раза больше в группе умерших пациентов.

Наиболее вероятными причинами лимфопении при COVID-19 могут быть вирус-индуцированный апоптоз, чрезмерный синтез провоспалительных цитокинов и секвестрация лимфоцитов в лёгочной ткани [4, 7].

Предположение о вирус-индуцированной лимфопении при COVID-19 наиболее привлекательно, учитывая способность SARS-CoV-2 инфицировать лимфоциты. В исследовании X. Ren и соавт. было показано, что РНК SARS-CoV-2 присутствует в клетках иммунной системы — нейтрофилах, макрофагах и лимфоцитах (T-, B- и NK-клетки) [8].

При этом РНК-SARS-CoV-2-позитивные иммунные клетки не экспрессировали рецептор ангиотензин-превращающего фермента 2-го типа (АПФ2), который, как известно, является ключевым белком для проникновения вируса внутрь клеток [9]. Другими авторами установлена очень низкая экспрессия АПФ2 на лимфоцитах [10]. Таким образом, рецепторы АПФ2 не могут играть значимой роли для SARS-CoV-2 в инфицировании лимфоцитов, в отличие от эпителиальных клеток органов дыхания, пищеварительного тракта и других систем.

Тогда каковы реальные механизмы проникновения SARS-CoV-2 в лимфоциты? Ещё в начале пандемии COVID-19 рядом исследователей был доказан альтернативный, АПФ2-независимый путь инфицирования лимфоцитов, происходящий через гликопротеин CD147, экспрессирующийся на различных клетках, в том числе на Т-лимфоцитах [11]. Позднее в исследовании X.-R. Shen и соавт. (2022) было установлено, что для инфицирования лимфоцитов входной молекулой для SARS-CoV-2 может быть белок LFA-1 (от англ. Leukocyte function-associated antigen-1), экспрессирующийся исключительно на лейкоцитах, в том числе лимфоцитах [12].

Однако, несмотря на способность SARS-CoV-2 проникать в лимфоциты, доказательств репликации в них вируса нет. При этом различными исследователями был установлен факт SARS-CoV-2-индуцированного апоптоза лимфоцитов [3, 12, 13]. Апоптозу при COVID-19 наиболее подвержены CD4-лимфоциты [14]. Сообщают, что выраженность апоптоза Т-лимфоцитов при COVID-19 коррелировала с тяжестью заболевания [15].

В нашем исследовании медиана показателя апоптоза лимфоцитов у пациентов с COVID-19 была в 2,6 раза выше, чем в группе контроля (р <0,001) и статистически значимо выше у пациентов с тяжёлым течением заболевания (р=0,02). Причём апоптоз лимфоцитов более 55% у пациентов с COVID-19 ассоциировался с риском летального исхода, что указывает на высокую прогностическую ценность данного показателя.

Известно, активация апоптоза клеток может происходить как по внешнему пути (через экспрессию Fas-рецепторов плазматической мембраны), так и по внутреннему (путём снижения мембранного потенциала митохондрий) [14]. Внешний путь апоптоза опосредован каспазой-8, внутренний — каспазой-9. В завершающей стадии ключевая роль принадлежит каспазе-3, в активации которой участвуют как каспаза-8, так и каспаза-9 [16]. В исследовании Y. Ren и соавт. было показано, что при COVID-19 апоптоз клеток происходит по внешнему пути — с помощью индукции активации каспазы-8 белком ORF3a SARS-CoV-2 [17].

Клиническое значение апоптоза лимфоцитов при COVID-19, с одной стороны, ассоциируется с элиминацией вируса, с другой — развивающаяся апоптоз-индуцированная лимфопения может стать причиной формирования иммуносупрессии и прогрессирования заболевания. Это подтверждается результатами патоморфологических исследований умерших от COVID-19 пациентов, демонстрирующих истощение лимфоидной ткани [18, 19].

Активация апоптоза лимфоцитов и лимфопения при тяжёлых формах COVID-19 могут быть обусловлены избыточно выраженной воспалительной реакцией, характеризующейся повышением в крови концентрации различных провоспалительных цитокинов (фактора некроза опухоли α, интерлейкинов-1, -6, -8) и других белков острой фазы воспаления (С-реактивного белка, ферритина и фибриногена) [6, 20].

Ещё в 2002 г. в эксперименте in vitro было показано, что фактор некроза опухоли α может индуцировать апоптоз Т-лимфоцитов человека [21]. Кроме того, интерлейкины-1β и -6 могут способствовать активации проапоптотического Fas-рецептора [22]. Эти факты позволяют рассматривать «цитокиновый шторм» как одну из ключевых причин SARS-CoV-2-индуцированного апоптоза лимфоцитов.

Установлено, что у пациентов с COVID-19 существует обратная корреляционная связь между концентрацией интерлейкина-6 и абсолютным количеством лимфоцитов в крови [23]. В реальной клинической практике для оценки выраженности воспалительной реакции традиционно проводят определение в крови белков острой фазы воспаления — С-реактивного белка, ферритина, синтез которых, как известно, индуцируется интерлейкином-6 [24]. Было показано, что высокие значения этих маркёров воспаления коррелируют с тяжестью COVID-19 и плохим прогнозом [25].

Нами установлена умеренно выраженная прямая корреляционная связь выраженности апоптоза лимфоцитов с уровнем ферритина крови у пациентов с COVID-19 (коэффициент Спирмена р=0,39, p <0,05).

Данный факт указывает на значимость проведения противовоспалительной терапии как одного из возможных направлений подавления избыточного апоптоза лимфоцитов. В ряде исследований было показано, что введение тоцилизумаба сопровождается увеличением в крови количества лимфоцитов [23, 26].

Апоптозу при COVID-19 подвержены не только лимфоциты, но и эпителиальные клетки органов дыхания, а также эндотелиальные клетки [27]. При этом в тканях умерших от COVID-19 пациентов выявляют не только признаки апоптоза, но и пироптоза — формы клеточной гибели, сочетающей как признаки апоптоза, так и воспаления [28]. Эти патоморфологические изменения указывают на ключевую роль гипервоспаления в инициации гибели клеток и развитии органной дисфункции у пациентов с COVID-19, в частности острого респираторного дистресс-синдрома. По этой причине именно противовоспалительная терапия имеет решающее значение для купирования как COVID-19-ассоциированного «цитокинового шторма», так и лимфопении, что может улучшить прогноз заболевания.

ВЫВОДЫ

  1. Коронавирусная инфекция COVID-19 характеризуется усилением активности апоптоза лимфоцитов периферической крови.
  2. Выраженность апоптоза лимфоцитов коррелирует с тяжестью заболевания — наиболее высокие значения зарегистрированы у пациентов с тяжёлым течением COVID-19, а показатель апоптоза клеток >55% ассоциировался с летальным исходом.
  3. Установленная прямая корреляционная связь между выраженностью апоптоза лимфоцитов и уровнем ферритина в крови служит основанием для проведения противовоспалительной терапии среднетяжёлых и тяжёлых форм COVID-19.

ДОПОЛНИТЕЛЬНАЯ ИНФОРМАЦИЯ

Вклад авторов. Х.С.Х. — концептуализация, анализ, редактирование рукописи, общее руководство; С.В.Б. — методология, валидация; В.А.А. — редактирование рукописи; А.Р.Г. — исследование, создание черновика; А.Э.Е. — исследование, создание черновика.
Источник финансирования. Исследование не имело спонсорской поддержки.
Конфликт интересов. Авторы заявляют об отсутствии конфликта по представленной статье.

×

Об авторах

Халит Саубанович Хаертынов

Казанский государственный медицинский университет

Автор, ответственный за переписку.
Email: khalit65@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-9013-4402
SPIN-код: 7602-2918
Scopus Author ID: 6504772063
ResearcherId: G-9088-2017

д-р мед. наук, доц., каф. детских инфекций

Россия, г. Казань

Сергей Васильевич Бойчук

Казанский государственный медицинский университет

Email: boichuksergei@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-2415-1084
SPIN-код: 8058-6246
Scopus Author ID: 6506322420
ResearcherId: R-2839-2016

д-р мед. наук, проф., зав. каф., каф. общей патологии

Россия, г. Казань

Владимир Алексеевич Анохин

Казанский государственный медицинский университет

Email: anokhin56@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-1050-9081
SPIN-код: 5291-7172
Scopus Author ID: 7005644258
ResearcherId: А-5230-2019

д-р мед. наук, проф., зав. каф., каф. детских инфекций

Россия, г. Казань

Айгуль Рафиковна Галембикова

Казанский государственный медицинский университет

Email: ailuk000@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-0293-2974
SPIN-код: 9985-9062
Scopus Author ID: 56529709300
ResearcherId: Y-8761-2019

асс., каф. общей патологии

Россия, г. Казань

Арина Эдуардовна Евдокимова

Казанский государственный медицинский университет

Email: tilai.ar@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0001-9851-2386
SPIN-код: 8011-3837

асп., каф. детских инфекций

Россия, г. Казань

Список литературы

  1. Marik P.E., Iglesias J., Varon J., et al. A scoping review of the pathophysiology of COVID-19 // Int J Immunopathol Pharmacol. 2021. Vol. 35. P. 1–16. doi: 10.1177/20587384211048026
  2. Castelli V., Cimini A., Ferri C. Cytokine storm in COVID-19: “When you come out of the storm, you won’t be the same person who walked in” // Front Immunol. 2020. Vol. 11. P. 2132. doi: 10.3389/fimmu.2020.02132
  3. Cizmecioglu A., Akay Cizmecioglu H., Goktepe M.H., et al. T-cell lymphopenia is related to COVID-19 severity // J Medical Virol. 2021. Vol. 93, N. 5. P. 2867–2874. doi: 10.1002/jmv.2674211
  4. 4.Guo Z., Zhang Z., Prajapati M., et al. Lymphopenia caused by virus infections and the mechanisms beyond // Viruses. 2021. Vol. 13. P. 1876. doi: 10.3390/v13091876
  5. Профилактика, диагностика и лечение новой коронавирусной инфекции (COVID-19). Временные методические рекомендации. Версия 10 (08.02.2021). Режим доступа: https://static-0.minzdrav.gov.ru/system/attachments/attaches/000/054/662/original/Временные_МР_COVID-19_%28v.10%29.pdf Дата обращения: 08.02.2021.
  6. Huang C., Wang Y., Li X., et al. Clinical features of patients infected with 2019 novel coronavirus in Wuhan, China // Nature. 2020. Vol. 395, N. 10223. P. 497–506. doi: 10.1016/S0140-6736(20)30183-5
  7. Chu H., Zhou J., Wong B.H., et al. Middle east respiratory syndrome coronavirus efficiently infects human primary T lymphocytes and activates the extrinsic and intrinsic apoptosis pathways // J Infect Dis. 2016. Vol. 213, N. 6. P. 904–914. doi: 10.1093/infdis/jiv380
  8. Ren X., Wen W., Fan X., et al. COVID-19 immune features revealed by a large-scale single-cell transcriptome atlas // Cell. 2021. Vol. 184, N. 7. P. 1895–1913. doi: 10.1016/j.cell.2021.01.053.
  9. Jackson C.B., Farzan M., Chen B., et al. Mechanisms of SARS-CoV-2 entry into cells // Nat Rev Mol Cell Biol. 2022. Vol. 23, N. 1. P. 3–20. doi: 10.1038/s41580-021-00418-x
  10. Shen X.R., Geng R., Li Q., et al. ACE2-independent infection of T lymphocytes by SARS-CoV-2 // Signal Transduct Target Ther. 2022. Vol. 7. P. 83. doi: 10.1038/s41392-022-00919-x
  11. Wang K., Chen W., Zhang Z., et al. CD147-spike protein is a novel route for SARS-CoV-2 infection to host cells // Signal Transduct Target Ther. 2020. Vol. 5, N. 1. P. 283. doi: 10.1038/s41392-020-00426-x
  12. Taghiloo S., Aliyali M., Abedi S., et al. Apoptosis and immunophenotyping of peripheral blood lymphocytes in Iranian COVID-19 patients: Clinical and laboratory characteristics // J Med Virol. 2021. Vol. 93, N. 3. P. 1589–1598. doi: 10.1002/jmv.26505
  13. Квасников А.М., Боровкова Н.В., Петриков С.С., и др. Регуляция апоптоза лимфоцитов у реанимационных больных с COVID-19 // Анестезиология и реаниматология. 2023. № 1. C. 49–55. doi: 10.17116/anaesthesiology202301149
  14. Elmore S. Apoptosis: A review of programmed cell death // Toxicol Pathol. 2007. Vol. 35, N. 4. P. 495–516. doi: 10.1080/01926230701320337
  15. André S., Picard M., Cezar R., et al. T cell apoptosis characterizes severe COVID-19 disease // Cell Death Differ. 2022. Vol. 29, N. 8. P. 1486–1499. doi: 10.1038/s41418-022-00936-x
  16. Hotchkiss R.S., Coopersmith C.M., Karl I.E. Prevention of lymphocyte apoptosis — a potential treatment of sepsis? // Clin Inf Diseases. 2005. Vol. 41, N. 7. P. 465–469. doi: 10.1086/431998
  17. Ren Y., Shu T., Wu D., et al. The ORF3a protein of SARS-CoV-2 induces apoptosis in cells // Cell Mol Immunol. 2020. Vol. 17. P. 881–883. doi: 10.1038/s41423-020-0485-9
  18. Коган Е.А., Березовский Ю.С., Проценко Д.Д., и др. Патологическая анатомия инфекции, вызванной SARS-CoV-2 // Судебная медицина. 2020. T. 6, № 2. С. 8–30. doi: 10.19048/2411-8729-2020-6-2-8-30
  19. Xiang Q., Feng Z., Diao B., et al. SARS-CoV-2 induces lymphocytopenia by promoting inflammation and decimates secondary lymphoid organs // Front Immunol. 2021. Vol. 12. P. 661052. doi: 10.3389/fimmu.2021.661052
  20. Hu Ch.-A.A., Murphy I., Klimaj S., et al. SARS-CoV-2, inflammatory apoptosis, and cytokine storm syndrome // Open COVID Journal. 2021. Vol. 1. P. 22–31. doi: 10.2174/2666958702101010022
  21. Gupta S. Tumor necrosis factor-alpha-induced apoptosis in T cells from aged humans: A role of TNFR-I and downstream signaling molecules // Exp Gerontol. 2002. Vol. 37, N. 2–3. P. 293–299. doi: 10.1016/s0531-5565(01)00195-4
  22. Choi C., Park J.Y., Lee J., et al. Fas ligand and Fas are expressed constitutively in human astrocytes and the expression increases with IL-1, IL-6, TNF-alpha, or IFN-gamma // J Immunol. 1999. Vol. 162. P. 1889–1895. doi: 10.4049/jimmunol.162.4.1889
  23. Giamarellos-Bourboulis E.J., Netea M.G., Rovina N., et al. Complex immune dysregulation in COVID-19 patients with severe respiratory failure // Cell Host Microbe. 2020. Vol. 27. P. 992–1000. doi: 10.1016/j.chom.2020.04.009
  24. Kushner I., Rzewnicki D.L. The acute phase response: general aspects // Baillieres Clin Rheumatol. 1994. Vol. 8, N. 3. P. 513–530. doi: 10.1016/s0950-3579(05)80113-x
  25. Huang I., Pranata R., Lim M.A., et al. C-reactive protein, procalcitonin, D-dimer, and ferritin in severe coronavirus disease-2019: A meta-analysis // Ther Adv Respir Dis. 2020. Vol. 14. P. 1–14. doi: 10.1177/175346662093717
  26. Zhang C., Wu Z., Li J.W., et al. The cytokine release syndrome (CRS) of severe COVID-19 and interleukin-6 receptor (IL-6R) antagonist Tocilizumab may be the key to reduce the mortality // Inter J Antimicrob Agents. 2020. Vol. 55, N. 5. P. 105954. doi: 10.1016/j.ijantimicag.2020.105954
  27. Liu Y., Garron T.M., Chang Q., et al. Cell-type apoptosis in lung during SARS-CoV-2 infection // Pathogens. 2021. Vol. 10. P. 509. doi: 10.3390/ pathogens10050509
  28. Tong X., Ping H., Gong X., et al. Pyroptosis in the lung and spleen of patients died from COVID-19 // European Journal of Inflammation. 2022. Vol. 20. P. 1–12. doi: 10.1177/1721727X221140661

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
2. Рис. 1. Апоптоз лимфоцитов крови у пациентов с COVID-19 и в группе контроля

Скачать (29KB)

© Эко-Вектор, 2024

Creative Commons License

Эта статья доступна по лицензии
Creative Commons Attribution-NonCommercial-ShareAlike 4.0 International License.


СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: ЭЛ № ФС 77 - 75008 от 01.02.2019.