Апоптоз лимфоцитов у пациентов с коронавирусной инфекцией COVID-19
- Авторы: Хаертынов Х.С.1, Бойчук С.В.1, Анохин В.А.1, Галембикова А.Р.1, Евдокимова А.Э.1
-
Учреждения:
- Казанский государственный медицинский университет
- Выпуск: Том 105, № 6 (2024)
- Страницы: 926-935
- Раздел: Теоретическая и клиническая медицина
- Статья получена: 06.06.2024
- Статья одобрена: 27.08.2024
- Статья опубликована: 27.11.2024
- URL: https://kazanmedjournal.ru/kazanmedj/article/view/633257
- DOI: https://doi.org/10.17816/KMJ633257
- ID: 633257
Цитировать
Аннотация
Актуальность. Лимфопения у пациентов с коронавирусной инфекцией COVID-19 ассоциируются с риском развития тяжёлых форм и неблагоприятного исхода. Одна из причин развития лимфопении — апоптоз.
Цель. Оценка выраженности апоптоза лимфоцитов периферической крови у пациентов со среднетяжёлым и тяжёлым течением COVID-19.
Материал и методы. Обследованы 42 пациента с COVID-19 в возрасте от 37 до 90 лет, госпитализированных в ГАУЗ «Республиканская клиническая инфекционная больница имени профессора А.Ф. Агафонова», г. Казань, в период с 24 октября 2021 г. по 1 марта 2022 г. У 13 пациентов объём поражения лёгких составил от 10 до 25% (КТ-1), у 20 — от 25 до 50% (КТ-2), у 9 — от 50 до 75% (КТ-3). Рибонуклеиновая кислота вируса SARS-CoV-2 из носоглотки была выделена у 35 (83%) пациентов. У 14 больных было среднетяжёлое течение COVID-19, у 28 — тяжёлое. Контрольную группу составили 10 условно здоровых людей аналогичного возраста. Оценку апоптоза лимфоцитов осуществляли на основании количественного определения гиподиплоидных клеток по изменению интенсивности их окраски пропидия йодидом с помощью проточной цитометрии. Для определения достоверности различий показателей между сравниваемыми группами применяли U-критерий Манна–Уитни, при сравнении процентных долей — критерий χ2. Достоверность различий устанавливали при р <0,05.
Результаты. Выявлено, что у пациентов с COVID-19 достоверно более высокая активность апоптоза лимфоцитов по сравнению с контрольной группой. Медиана изучаемого показателя у больных COVID-19 составила 39,3%, тогда как в контрольной группе — 15,1% (р <0,001). Выраженность апоптоза лимфоцитов коррелировала с тяжестью заболевания: наиболее высокие показатели зарегистрированы у пациентов с тяжёлым течением COVID-19 (р=0,02). При этом апоптоз лимфоцитов >55% ассоциировался с риском летального исхода (р=0,03). Была установлена умеренно выраженная корреляционная связь между показателями апоптоза лимфоцитов и уровнем в крови ферритина (коэффициент Спирмена р=0,39, p <0,05).
Вывод. Коронавирусная инфекция COVID-19 сопровождается повышением активности апоптоза лимфоцитов периферической крови; наиболее высокие показатели апоптоза зарегистрированы у пациентов с тяжёлым течением COVID-19.
Ключевые слова
Полный текст
АКТУАЛЬНОСТЬ
Дисрегуляция иммунной системы играет ведущую роль в патогенезе тяжёлых форм COVID-19 (от англ. COronaVIrusDisease 2019 — коронавирусная инфекция 2019 г.) [1]. Известно, что поражение лёгких при COVID-19 обусловлено гипервоспалительной реакцией, характеризующейся повышением в крови провоспалительных цитокинов, С-реактивного белка и ферритина [2]. С другой стороны, характерным лабораторным признаком тяжёлых форм COVID-19 бывает выраженная лимфопения [1], с которой ассоциируется риск летального исхода [3].
Будучи клетками адаптивного иммунитета, лимфоциты играют ключевую роль в формировании специфического иммунного ответа и элиминации патогенных микроорганизмов. Лимфопения при COVID-19 может быть обусловлена несколькими причинами: гибелью лимфоцитов, чрезмерным образованием провоспалительных цитокинов, ингибированием лимфопоэза, миграцией лимфоцитов в органы дыхания [4].
Механизм гибели лимфоцитов при COVID-19 может реализоваться несколькими путями: апоптозом, пироптозом, аутофагией, вирус-специфической CD8+-Т-лимфоцит-зависимой цитотоксичностью и антителозависимой клеточно-опосредованной цитотоксичностью [4].
Учитывая важную роль лимфопении в формировании тяжёлых форм COVID-19, представляется актуальным изучение выраженности апоптоза лимфоцитов у пациентов с COVID-19, что позволит обосновать новые направления патогенетической терапии.
Цель исследования — оценка выраженности апоптоза лимфоцитов периферической крови у пациентов со среднетяжёлым и тяжёлым течением COVID-19.
МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ
Обследованы 42 пациента с COVID-19 в возрасте от 37 до 90 лет, находившихся на стационарном лечении в ГАУЗ «Республиканская клиническая инфекционная больница имени профессора А.Ф. Агафонова» в период с 24 октября 2021 г. по 1 марта 2022 г. Средний возраст пациентов составил 67,3±13,7 года.
Критерием включения пациентов в исследование было развитие среднетяжёлого или тяжёлого течения COVID-19, критерием невключения — лёгкое течение заболевания.
Диагностику COVID-19 осуществляли в соответствии с временными методическими рекомендациями «Профилактика, диагностика и лечение новой коронавирусной инфекции COVID-19», версия 10 от 08.02.2021 [5]. У 14 пациентов было диагностировано среднетяжёлое течение COVID-19, у 28 — тяжёлое.
У всех пациентов при проведении компьютерной томографии (КТ) органов грудной клетки выявлены изменения в лёгких в виде «матового стекла». У 13 больных объём поражения лёгких составил от 10 до 25% (КТ-1), у 20 — от 25 до 50% (КТ-2), у 9 — от 50 до 75% (КТ-3). В 35 (83%) случаях диагноз COVID-19 был подтверждён выделением рибонуклеиновой кислоты (РНК) SARS-CoV-2 (от англ. Severe acute respiratory syndrome-related coronavirus-2 — второй коронавирус тяжёлого острого респираторного синдрома) из носоглотки (код заболевания U07.1). В остальных 7 (17%) случаях диагноз заболевания был выставлен на основании клинической картины (лихорадка, кашель, признаки дыхательной недостаточности) и изменений в лёгких в виде «матового стекла», выявленных при проведении КТ органов грудной клетки (код заболевания U07.2).
У 33 (88%) из 42 пациентов установлены коморбидные заболевания, среди которых чаще регистрировали гипертоническую болезнь (71%), сахарный диабет (33%) и ожирение (28%). Абсолютная лимфопения (менее 1×109/л) выявлена у 18 (43%) из 48 пациентов. Все больные нуждались в респираторной поддержке, 6 из них находились на искусственной вентиляции лёгких. В 6 случаях заболевание завершилось летальным исходом. Характеристика пациентов представлена в табл. 1. Контрольную группу составили 10 условно здоровых людей аналогичного возраста (р=0,1).
Таблица 1. Клинико-лабораторная характеристика пациентов с COVID-19
Параметр | Пациенты с COVID-19, n=42 | Контрольная группа, n=10 | Значимость |
Возраст, годы, М±SD | 67,3±13,7 | 60,6±8,2 | р=0,1 |
Женский пол, абс. (%) | 25 (59,5) | 6 (60) | χ2=0,02; р=0,8 |
День госпитализации, Ме [межквартильный размах] | 7 [5–8] | — | — |
Выделение РНК SARS-CoV-2, абс. (%) | 35 (83) | — | — |
Объём поражения лёгких, абс. (%):
| 13 (31) 20 (48) 9 (21) | — | — |
Сопутствующие заболевания, абс. (%):
| 33 (78,5) 30 (71) 14 (33) 12 (28) 4 (9) 3 (7) 2 (4) 2 (4) | 8 (80) 6 (60) — 2 (20) 1 (10) 1 (10) — — | χ2=0,12; р=0,7 χ2=2,6; р=0,1 — χ2=1,7; р=0,1 χ2=0,05; р=0,8 χ2=0,57; р=0,4 — — |
Респираторная поддержка, абс. (%):
| 31(74) 5 (12) 6 (14) | — | — |
Лейкоциты (абс.), ×109/л, Ме [межквартильный размах] | 0,01 | ||
Лимфоциты (абс.), ×109/л, Ме [межквартильный размах] | 0,0002 | ||
Лимфоциты <109/л, абс. (%) | 18 (43) | — | — |
С-реактивный белок, Ме [межквартильный размах] | 0 | — | |
Ферритин, нг/мл, Ме [межквартильный размах] | 107,5 [86–121] | 0,00003 |
Примечание: РНК — рибонуклеиновая кислота; SARS-CoV-2 — второй коронавирус тяжёлого острого респираторного синдрома; КТ — компьютерная томография; ХОБЛ — хроническая обструктивная болезнь лёгких; ХБП — хроническая болезнь почек; НПО — низкопоточная оксигенация; ВПО — высокопоточная оксигенация; ИВЛ — искусственная вентиляция лёгких.
Наиболее распространённой коморбидной патологией в данной группе, как и в основной, была гипертоническая болезнь — 60% случаев. Пациенты основной группы и представители контрольной были сравнимы по возрасту, полу и коморбидной патологии (см. табл. 1).
Дана оценка выраженности спонтанного апоптоза лимфоцитов периферической крови в остром периоде COVID-19 по числу гиподиплоидных клеток и изменению интенсивности их окраски пропидия йодидом (Sigma Aldrich, CША) на проточной цитофлуориметрии (FACs Canto II, Becton Dickinson, США). Результаты оценивали через 96 ч культивирования лимфоцитов в плоскодонных 24-луночных планшетах (Corning, CША) в полной культуральной среде RPMI-1640 c добавлением L-глутамина, антибиотиков (стрептомицина и пенициллина) и 10% эмбриональной телячьей сыворотки (все реагенты ПАНЭКО, Москва, Россия). Забор крови для исследования проводили однократно, в первые 3 дня госпитализации и в среднем на 9-й день заболевания (95% доверительный интервал 8–10). Одновременно с изучением выраженности апопотоза лимфоцитов оценивали количество лимфоцитов периферической крови.
Исследование было обсервационным. Статистический анализ полученных результатов выполнен с использованием статистической программы Statistica for Windows 6.1 (Statsoft, Tulsa, OK, USA). Анализ соответствия вида распределения признака закону нормального распределения проводили с помощью теста Шапиро–Уилка. Нулевую гипотезу отклоняли при пороговом уровне статистической значимости (р), равном 0,05. В случае невыполнения данного условия использовали непараметрические методы статистического анализа. При распределении признака, отличном от нормального, из мер центральной тенденции использовали медиану (Ме), из мер рассеяния — межквартильный размах (значения 25-го и 75-го процентилей). Для определения достоверности различий показателей между сравниваемыми группами использовали U-критерий Манна–Уитни, при сравнении процентных долей — критерий χ2. Достоверность различий устанавливали при значении р <0,05.
Для оценки связи двух признаков (r) использовали непараметрический метод корреляционного анализа Спирмена. Используя таблицы сопряжённости, рассчитывали чувствительность (Se); специфичность (Sp); прогностическую ценность положительного результата теста (PV+); прогностическую ценность отрицательного результата теста (PV–); показатели отношения правдоподобия (LR) для положительного и отрицательного результатов; относительный риск.
Комитет по этике ГАУЗ «Республиканская клиническая инфекционная больница имени проф. А.Ф. Агафонова» одобрил это исследование (протокол №4/4 от 03.06.2021). Письменное информированное согласие было получено от пациентов в соответствии с руководящими принципами, утверждёнными в соответствии с этим протоколом (Федеральный закон «Об основах охраны здоровья граждан в Российской Федерации» от 21.11.2011 №323-ФЗ).
РЕЗУЛЬТАТЫ
Было установлено, что COVID-19 протекает на фоне усиления активности апоптоза лимфоцитов периферической крови (рис. 1). Медиана изучаемого показателя у пациентов с COVID-19 составила 39,3%, тогда как в контрольной группе — 15,1% (р <0,001). При этом выраженность апоптоза лимфоцитов коррелировала с тяжестью заболевания: самые высокие показатели были у пациентов с тяжёлым течением COVID-19 (табл. 2). Абсолютное количество лимфоцитов в крови больных с тяжёлым течением COVID-19 было ниже по сравнению с пациентами, у которых заболевание протекало в среднетяжёлой форме, однако это различие не было статистически значимым (p=0,1).
Рис. 1. Апоптоз лимфоцитов крови у пациентов с COVID-19 и в группе контроля
Таблица 2. Показатели лимфоцитов крови у пациентов с COVID-19 (медиана [межквартильный размах])
Показатель | Среднетяжёлое течение COVID-19 (n=14) | Тяжёлое течение COVID-19 (n=28) | р |
Лимфоциты, ×109/л | 0,1 | ||
Апоптоз лимфоцитов, % | 0,02 |
Учитывая возможную связь воспалительной реакции с апоптозом лимфоцитов, нами был проведён корреляционный анализ выраженности апоптоза лимфоцитов с ключевыми маркёрами воспаления — С-реактивным белком и ферритином, значения которых у пациентов с COVID-19 были достоверно выше по сравнению с показателями контрольной группы (см. табл. 1). Установлена умеренно выраженная прямая корреляционная связь показателя апоптоза лимфоцитов с уровнем в крови ферритина (коэффициент Спирмена р=0,39, p <0,05). Связи степени апоптоза с уровнем С-реактивного белка не выявлено.
Оценка изучаемых показателей с учётом исхода заболевания показала, что в группе умерших пациентов количество лимфоцитов в крови было в 2,1 раза ниже по сравнению с выжившими (табл. 3). При этом активность апоптоза лимфоцитов хотя и была выше в группе умерших больных, однако это различие не было статистически значимым.
Таблица 3. Показатели лимфоцитов крови у выживших и умерших пациентов (медиана [межквартильный размах])
Показатели | Выжившие пациенты (n=36) | Умершие пациенты (n=6) | р |
Лимфоциты, ×109/л | 0,007 | ||
Апоптоз лимфоцитов, % | 0,3 |
Далее проведена оценка операционных характеристик диагностического теста «апоптоз лимфоцитов» в оценке риска летального исхода. Данные представлены в табл. 4. Было установлено, что апоптоз лимфоцитов выше 55% у пациентов с COVID-19 ассоциируется с риском летального исхода (р=0,03). При этом положительный результат теста на апоптоз клеток был максимально правдоподобен (LR+=3,8), что позволяет рассматривать его как достаточно надёжный.
Таблица 4. Апоптоз лимфоцитов и риск летальности при COVID-19
Апоптоз лимфоцитов, % | Se | Sp | PPV | NPV | LR+ | LR– | RR | p |
Порог отсечения 55% | 50 | 86 | 0,37 | 0,08 | 3,8 | 0,5 | 0,03 |
Примечание: Se — чувствительность теста; Sp — специфичность теста; PPV — прогностическое значение положительного результата теста; NPV — прогностическое значение отрицательного результата теста; LR+ — отношение правдоподобия положительного результата теста; LR– — отношение правдоподобия отрицательного результата теста; RR — относительный риск; р — уровень статистической значимости.
ОБСУЖДЕНИЕ
Лимфопения — один из ключевых лабораторных показателей, определяющих тяжесть состояния и прогноз у пациентов с COVID-19. Лимфопения развивается у 63% пациентов с COVID-19 [6]. В нашем исследовании количество лимфоцитов <1,0×109/л зарегистрировано у 43% пациентов. При этом выраженность лимфопении была в 2,1 раза больше в группе умерших пациентов.
Наиболее вероятными причинами лимфопении при COVID-19 могут быть вирус-индуцированный апоптоз, чрезмерный синтез провоспалительных цитокинов и секвестрация лимфоцитов в лёгочной ткани [4, 7].
Предположение о вирус-индуцированной лимфопении при COVID-19 наиболее привлекательно, учитывая способность SARS-CoV-2 инфицировать лимфоциты. В исследовании X. Ren и соавт. было показано, что РНК SARS-CoV-2 присутствует в клетках иммунной системы — нейтрофилах, макрофагах и лимфоцитах (T-, B- и NK-клетки) [8].
При этом РНК-SARS-CoV-2-позитивные иммунные клетки не экспрессировали рецептор ангиотензин-превращающего фермента 2-го типа (АПФ2), который, как известно, является ключевым белком для проникновения вируса внутрь клеток [9]. Другими авторами установлена очень низкая экспрессия АПФ2 на лимфоцитах [10]. Таким образом, рецепторы АПФ2 не могут играть значимой роли для SARS-CoV-2 в инфицировании лимфоцитов, в отличие от эпителиальных клеток органов дыхания, пищеварительного тракта и других систем.
Тогда каковы реальные механизмы проникновения SARS-CoV-2 в лимфоциты? Ещё в начале пандемии COVID-19 рядом исследователей был доказан альтернативный, АПФ2-независимый путь инфицирования лимфоцитов, происходящий через гликопротеин CD147, экспрессирующийся на различных клетках, в том числе на Т-лимфоцитах [11]. Позднее в исследовании X.-R. Shen и соавт. (2022) было установлено, что для инфицирования лимфоцитов входной молекулой для SARS-CoV-2 может быть белок LFA-1 (от англ. Leukocyte function-associated antigen-1), экспрессирующийся исключительно на лейкоцитах, в том числе лимфоцитах [12].
Однако, несмотря на способность SARS-CoV-2 проникать в лимфоциты, доказательств репликации в них вируса нет. При этом различными исследователями был установлен факт SARS-CoV-2-индуцированного апоптоза лимфоцитов [3, 12, 13]. Апоптозу при COVID-19 наиболее подвержены CD4-лимфоциты [14]. Сообщают, что выраженность апоптоза Т-лимфоцитов при COVID-19 коррелировала с тяжестью заболевания [15].
В нашем исследовании медиана показателя апоптоза лимфоцитов у пациентов с COVID-19 была в 2,6 раза выше, чем в группе контроля (р <0,001) и статистически значимо выше у пациентов с тяжёлым течением заболевания (р=0,02). Причём апоптоз лимфоцитов более 55% у пациентов с COVID-19 ассоциировался с риском летального исхода, что указывает на высокую прогностическую ценность данного показателя.
Известно, активация апоптоза клеток может происходить как по внешнему пути (через экспрессию Fas-рецепторов плазматической мембраны), так и по внутреннему (путём снижения мембранного потенциала митохондрий) [14]. Внешний путь апоптоза опосредован каспазой-8, внутренний — каспазой-9. В завершающей стадии ключевая роль принадлежит каспазе-3, в активации которой участвуют как каспаза-8, так и каспаза-9 [16]. В исследовании Y. Ren и соавт. было показано, что при COVID-19 апоптоз клеток происходит по внешнему пути — с помощью индукции активации каспазы-8 белком ORF3a SARS-CoV-2 [17].
Клиническое значение апоптоза лимфоцитов при COVID-19, с одной стороны, ассоциируется с элиминацией вируса, с другой — развивающаяся апоптоз-индуцированная лимфопения может стать причиной формирования иммуносупрессии и прогрессирования заболевания. Это подтверждается результатами патоморфологических исследований умерших от COVID-19 пациентов, демонстрирующих истощение лимфоидной ткани [18, 19].
Активация апоптоза лимфоцитов и лимфопения при тяжёлых формах COVID-19 могут быть обусловлены избыточно выраженной воспалительной реакцией, характеризующейся повышением в крови концентрации различных провоспалительных цитокинов (фактора некроза опухоли α, интерлейкинов-1, -6, -8) и других белков острой фазы воспаления (С-реактивного белка, ферритина и фибриногена) [6, 20].
Ещё в 2002 г. в эксперименте in vitro было показано, что фактор некроза опухоли α может индуцировать апоптоз Т-лимфоцитов человека [21]. Кроме того, интерлейкины-1β и -6 могут способствовать активации проапоптотического Fas-рецептора [22]. Эти факты позволяют рассматривать «цитокиновый шторм» как одну из ключевых причин SARS-CoV-2-индуцированного апоптоза лимфоцитов.
Установлено, что у пациентов с COVID-19 существует обратная корреляционная связь между концентрацией интерлейкина-6 и абсолютным количеством лимфоцитов в крови [23]. В реальной клинической практике для оценки выраженности воспалительной реакции традиционно проводят определение в крови белков острой фазы воспаления — С-реактивного белка, ферритина, синтез которых, как известно, индуцируется интерлейкином-6 [24]. Было показано, что высокие значения этих маркёров воспаления коррелируют с тяжестью COVID-19 и плохим прогнозом [25].
Нами установлена умеренно выраженная прямая корреляционная связь выраженности апоптоза лимфоцитов с уровнем ферритина крови у пациентов с COVID-19 (коэффициент Спирмена р=0,39, p <0,05).
Данный факт указывает на значимость проведения противовоспалительной терапии как одного из возможных направлений подавления избыточного апоптоза лимфоцитов. В ряде исследований было показано, что введение тоцилизумаба сопровождается увеличением в крови количества лимфоцитов [23, 26].
Апоптозу при COVID-19 подвержены не только лимфоциты, но и эпителиальные клетки органов дыхания, а также эндотелиальные клетки [27]. При этом в тканях умерших от COVID-19 пациентов выявляют не только признаки апоптоза, но и пироптоза — формы клеточной гибели, сочетающей как признаки апоптоза, так и воспаления [28]. Эти патоморфологические изменения указывают на ключевую роль гипервоспаления в инициации гибели клеток и развитии органной дисфункции у пациентов с COVID-19, в частности острого респираторного дистресс-синдрома. По этой причине именно противовоспалительная терапия имеет решающее значение для купирования как COVID-19-ассоциированного «цитокинового шторма», так и лимфопении, что может улучшить прогноз заболевания.
ВЫВОДЫ
- Коронавирусная инфекция COVID-19 характеризуется усилением активности апоптоза лимфоцитов периферической крови.
- Выраженность апоптоза лимфоцитов коррелирует с тяжестью заболевания — наиболее высокие значения зарегистрированы у пациентов с тяжёлым течением COVID-19, а показатель апоптоза клеток >55% ассоциировался с летальным исходом.
- Установленная прямая корреляционная связь между выраженностью апоптоза лимфоцитов и уровнем ферритина в крови служит основанием для проведения противовоспалительной терапии среднетяжёлых и тяжёлых форм COVID-19.
ДОПОЛНИТЕЛЬНАЯ ИНФОРМАЦИЯ
Вклад авторов. Х.С.Х. — концептуализация, анализ, редактирование рукописи, общее руководство; С.В.Б. — методология, валидация; В.А.А. — редактирование рукописи; А.Р.Г. — исследование, создание черновика; А.Э.Е. — исследование, создание черновика.
Источник финансирования. Исследование не имело спонсорской поддержки.
Конфликт интересов. Авторы заявляют об отсутствии конфликта по представленной статье.
Об авторах
Халит Саубанович Хаертынов
Казанский государственный медицинский университет
Автор, ответственный за переписку.
Email: khalit65@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-9013-4402
SPIN-код: 7602-2918
Scopus Author ID: 6504772063
ResearcherId: G-9088-2017
д-р мед. наук, доц., каф. детских инфекций
Россия, г. КазаньСергей Васильевич Бойчук
Казанский государственный медицинский университет
Email: boichuksergei@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-2415-1084
SPIN-код: 8058-6246
Scopus Author ID: 6506322420
ResearcherId: R-2839-2016
д-р мед. наук, проф., зав. каф., каф. общей патологии
Россия, г. КазаньВладимир Алексеевич Анохин
Казанский государственный медицинский университет
Email: anokhin56@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-1050-9081
SPIN-код: 5291-7172
Scopus Author ID: 7005644258
ResearcherId: А-5230-2019
д-р мед. наук, проф., зав. каф., каф. детских инфекций
Россия, г. КазаньАйгуль Рафиковна Галембикова
Казанский государственный медицинский университет
Email: ailuk000@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-0293-2974
SPIN-код: 9985-9062
Scopus Author ID: 56529709300
ResearcherId: Y-8761-2019
асс., каф. общей патологии
Россия, г. КазаньАрина Эдуардовна Евдокимова
Казанский государственный медицинский университет
Email: tilai.ar@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0001-9851-2386
SPIN-код: 8011-3837
асп., каф. детских инфекций
Россия, г. КазаньСписок литературы
- Marik P.E., Iglesias J., Varon J., et al. A scoping review of the pathophysiology of COVID-19 // Int J Immunopathol Pharmacol. 2021. Vol. 35. P. 1–16. doi: 10.1177/20587384211048026
- Castelli V., Cimini A., Ferri C. Cytokine storm in COVID-19: “When you come out of the storm, you won’t be the same person who walked in” // Front Immunol. 2020. Vol. 11. P. 2132. doi: 10.3389/fimmu.2020.02132
- Cizmecioglu A., Akay Cizmecioglu H., Goktepe M.H., et al. T-cell lymphopenia is related to COVID-19 severity // J Medical Virol. 2021. Vol. 93, N. 5. P. 2867–2874. doi: 10.1002/jmv.2674211
- 4.Guo Z., Zhang Z., Prajapati M., et al. Lymphopenia caused by virus infections and the mechanisms beyond // Viruses. 2021. Vol. 13. P. 1876. doi: 10.3390/v13091876
- Профилактика, диагностика и лечение новой коронавирусной инфекции (COVID-19). Временные методические рекомендации. Версия 10 (08.02.2021). Режим доступа: https://static-0.minzdrav.gov.ru/system/attachments/attaches/000/054/662/original/Временные_МР_COVID-19_%28v.10%29.pdf Дата обращения: 08.02.2021.
- Huang C., Wang Y., Li X., et al. Clinical features of patients infected with 2019 novel coronavirus in Wuhan, China // Nature. 2020. Vol. 395, N. 10223. P. 497–506. doi: 10.1016/S0140-6736(20)30183-5
- Chu H., Zhou J., Wong B.H., et al. Middle east respiratory syndrome coronavirus efficiently infects human primary T lymphocytes and activates the extrinsic and intrinsic apoptosis pathways // J Infect Dis. 2016. Vol. 213, N. 6. P. 904–914. doi: 10.1093/infdis/jiv380
- Ren X., Wen W., Fan X., et al. COVID-19 immune features revealed by a large-scale single-cell transcriptome atlas // Cell. 2021. Vol. 184, N. 7. P. 1895–1913. doi: 10.1016/j.cell.2021.01.053.
- Jackson C.B., Farzan M., Chen B., et al. Mechanisms of SARS-CoV-2 entry into cells // Nat Rev Mol Cell Biol. 2022. Vol. 23, N. 1. P. 3–20. doi: 10.1038/s41580-021-00418-x
- Shen X.R., Geng R., Li Q., et al. ACE2-independent infection of T lymphocytes by SARS-CoV-2 // Signal Transduct Target Ther. 2022. Vol. 7. P. 83. doi: 10.1038/s41392-022-00919-x
- Wang K., Chen W., Zhang Z., et al. CD147-spike protein is a novel route for SARS-CoV-2 infection to host cells // Signal Transduct Target Ther. 2020. Vol. 5, N. 1. P. 283. doi: 10.1038/s41392-020-00426-x
- Taghiloo S., Aliyali M., Abedi S., et al. Apoptosis and immunophenotyping of peripheral blood lymphocytes in Iranian COVID-19 patients: Clinical and laboratory characteristics // J Med Virol. 2021. Vol. 93, N. 3. P. 1589–1598. doi: 10.1002/jmv.26505
- Квасников А.М., Боровкова Н.В., Петриков С.С., и др. Регуляция апоптоза лимфоцитов у реанимационных больных с COVID-19 // Анестезиология и реаниматология. 2023. № 1. C. 49–55. doi: 10.17116/anaesthesiology202301149
- Elmore S. Apoptosis: A review of programmed cell death // Toxicol Pathol. 2007. Vol. 35, N. 4. P. 495–516. doi: 10.1080/01926230701320337
- André S., Picard M., Cezar R., et al. T cell apoptosis characterizes severe COVID-19 disease // Cell Death Differ. 2022. Vol. 29, N. 8. P. 1486–1499. doi: 10.1038/s41418-022-00936-x
- Hotchkiss R.S., Coopersmith C.M., Karl I.E. Prevention of lymphocyte apoptosis — a potential treatment of sepsis? // Clin Inf Diseases. 2005. Vol. 41, N. 7. P. 465–469. doi: 10.1086/431998
- Ren Y., Shu T., Wu D., et al. The ORF3a protein of SARS-CoV-2 induces apoptosis in cells // Cell Mol Immunol. 2020. Vol. 17. P. 881–883. doi: 10.1038/s41423-020-0485-9
- Коган Е.А., Березовский Ю.С., Проценко Д.Д., и др. Патологическая анатомия инфекции, вызванной SARS-CoV-2 // Судебная медицина. 2020. T. 6, № 2. С. 8–30. doi: 10.19048/2411-8729-2020-6-2-8-30
- Xiang Q., Feng Z., Diao B., et al. SARS-CoV-2 induces lymphocytopenia by promoting inflammation and decimates secondary lymphoid organs // Front Immunol. 2021. Vol. 12. P. 661052. doi: 10.3389/fimmu.2021.661052
- Hu Ch.-A.A., Murphy I., Klimaj S., et al. SARS-CoV-2, inflammatory apoptosis, and cytokine storm syndrome // Open COVID Journal. 2021. Vol. 1. P. 22–31. doi: 10.2174/2666958702101010022
- Gupta S. Tumor necrosis factor-alpha-induced apoptosis in T cells from aged humans: A role of TNFR-I and downstream signaling molecules // Exp Gerontol. 2002. Vol. 37, N. 2–3. P. 293–299. doi: 10.1016/s0531-5565(01)00195-4
- Choi C., Park J.Y., Lee J., et al. Fas ligand and Fas are expressed constitutively in human astrocytes and the expression increases with IL-1, IL-6, TNF-alpha, or IFN-gamma // J Immunol. 1999. Vol. 162. P. 1889–1895. doi: 10.4049/jimmunol.162.4.1889
- Giamarellos-Bourboulis E.J., Netea M.G., Rovina N., et al. Complex immune dysregulation in COVID-19 patients with severe respiratory failure // Cell Host Microbe. 2020. Vol. 27. P. 992–1000. doi: 10.1016/j.chom.2020.04.009
- Kushner I., Rzewnicki D.L. The acute phase response: general aspects // Baillieres Clin Rheumatol. 1994. Vol. 8, N. 3. P. 513–530. doi: 10.1016/s0950-3579(05)80113-x
- Huang I., Pranata R., Lim M.A., et al. C-reactive protein, procalcitonin, D-dimer, and ferritin in severe coronavirus disease-2019: A meta-analysis // Ther Adv Respir Dis. 2020. Vol. 14. P. 1–14. doi: 10.1177/175346662093717
- Zhang C., Wu Z., Li J.W., et al. The cytokine release syndrome (CRS) of severe COVID-19 and interleukin-6 receptor (IL-6R) antagonist Tocilizumab may be the key to reduce the mortality // Inter J Antimicrob Agents. 2020. Vol. 55, N. 5. P. 105954. doi: 10.1016/j.ijantimicag.2020.105954
- Liu Y., Garron T.M., Chang Q., et al. Cell-type apoptosis in lung during SARS-CoV-2 infection // Pathogens. 2021. Vol. 10. P. 509. doi: 10.3390/ pathogens10050509
- Tong X., Ping H., Gong X., et al. Pyroptosis in the lung and spleen of patients died from COVID-19 // European Journal of Inflammation. 2022. Vol. 20. P. 1–12. doi: 10.1177/1721727X221140661
Дополнительные файлы
