Lymphocyte apoptosis in newborns with neonatal sepsis

Cover Page


Cite item

Full Text

Abstract

Aim. To assess the lymphocyte apoptosis intensity in children with neonatal sepsis. Methods. Lymphocyte apoptosis was assessed in 20 children [of them 16 (80%) prematurely born] with late neonatal sepsis. Bacteriology tests allowed to identify the causetive agent for sepsis in 9 (45%) cases - Staphylococcus haemolyticus in 3 cases, Klebsiella - in 4 cases, Candida - in 2 cases. The control group consisted of 10 healthy newborns. Lymphocyte apoptosis was assessed by determining the amount of mitochondrial transmembrane potential (ΔΨm). Lymphocytes were stained with fluorochrome DiOC 6. Results were obtained by flow cytometry. A decrease in mitochondrial potential value was defined as the reduction of fluorochrome DiOC 6 fluorescence . This parameter is one of the earliest signs of apoptosis. Results. An increased apoptosis was revealed, which was manifested by an increase in the number of cells with reduced membrane potential (DiOC-negative cells) in all children with neonatal sepsis. In 50% of sepsis cases (10 newborns) the number of lymphocytes in which apoptosis was triggered was higher by 3,4 times compared to control, in 25% of cases (5 newborns) - by 6 times, in another 25% (5 newborns) - by 13.4 times. Meanwhile, an absolute lymphopenia was observed only in 65% of cases. The most extensive apoptosis was observed in patients with minimal intensity of severe acute inflammatory reaction. Recovery period was characterized by a decrease in apoptosis intensity, seen as the reduction of the number of cells with reduced membrane potential by mean of 1.9 times. Reduced intensity of lymphocyte apoptosis at recovery was associated with lymphocyte count increase in peripheral blood. Conclusion. Acute phase of neonatal sepsis occurs on the background of the increased intensity of lymphocyte apoptosis.

Full Text

Одно из важнейших звеньев патофизиоло-следние годы рассматривают дисбаланс в систегии сепсиса - дисфункция иммунной системы. ме про- и противовоспалительных медиаторов Положение это особенно актуально для периода [14]. При этом выделяют два возможных «сценоворождённости, характеризующегося незрело-нария» развития событий. Первый протекает стью трансплацентарно-гуморального и других на фоне гиперпродукции провоспалительных факторов врождённого иммунитета на фоне сла-цитокинов (фактора некроза опухоли альфа, бости адаптивных иммунных реакций. Этими интерлейкинов-1 и -6), приводящей к развитию особенностями в первую очередь объясняется и синдрома системного воспалительного ответа и факт высокой частоты генерализованных бакте-полиорганной недостаточности, тогда как вториальных инфекций в первые дни жизни чело-рой, развивающийся на фоне преимущественновека [3]. го синтеза противовоспалительных медиаторов В качестве основной патофизиологической (интерлейкинов-4 и -10), - к развитию апоптоза причины развития септического процесса в по-и анергии клеток иммунной системы [1, 14]. Апоптоз, как известно, - программируемая Адрес для переписки: khalit65@rambler.ru гибель клеток, представляющая собой одну из форм физиологических реакций организма, направленных на элиминацию генетически чужеродных клеток и поддержание гомеостаза [4]. Важная особенность апоптоза, принципиально отличающая его от некроза, - отсутствие воспалительной реакции соседних клеток на продукты распада, сохранение целостности мембраны и ультраструктур элиминируемых клеток [4, 11]. К характерным морфологическим признакам апоптоза относят дегидратационное сжатие клеток, утрату межклеточных контактов, так называемый блеббинг (формирование пузыреподобных выпячиваний), разрушение цитоскелета, конденсацию хроматина, фрагментацию ядер и деградацию дезоксирибонуклеиновой кислоты (ДНК) [8]. Индукция апоптоза может проходить двумя основными путями: либо путём активации Fas-рецепторов («рецепторов смерти») плазматической мембраны (внешний путь), либо путём снижения мембранного потенциала митохондрий (внутренний путь) [11]. Лабораторными маркёрами апоптоза иммунокомпетентных клеток служат экспрессированные на плазматических мембранах белки CD95 (Fas-рецептор) и CD120 (рецептор фактора некроза опухоли), снижение мембранного потенциала митохондрий и высвобождение цитохрома С, транслокация фосфатидилсерина с внутренней на наружную поверхность мембраны клеток, повышение активности каспаз [2, 11]. Нарушение апоптоза лежит в основе развития различных заболеваний (онкологических, аутоиммунных), в том числе и инфекционных - как вирусных (инфицирование вирусом иммунодефицита человека), так и бактериальных (сепсис) [11, 13]. При этом направленность процессов апоптоза может быть различной (индукция или ингибирование). Острый период бактериальной инфекции (в том числе при сепсисе), как правило, сопровождается ингибированием апоптоза нейтрофилов [2, 13]. Очевидно, что связано это с повышенным образованием в острой фазе заболевания и действием провоспалительных цитокинов, являющихся естественными ингибиторами апоптоза [2]. Усиление апоптоза при сепсисе происходит в случаях преобладания синтеза противовоспалительных цитокинов (индукторов апоптоза), что отмечают при развитии наиболее тяжёлых форм этого заболевания - тяжёлого сепсиса и септического шока [5]. Патологоанатомические исследования людей, которые умерли от сепсиса, указывают на наличие выраженного апоптоза различных иммунокомпетентных клеток - В-лимфоцитов и CD4-лимфоцитов [9, 10]. Апоптоз лимфоцитов при сепсисе приводит к снижению эффективности иммунного ответа и ухудшению клиренса вторгшихся в организм микроорганизмов [12]. При этом выраженность апоптоза лимфоцитов прямо коррелирует с тяжестью септического процесса и степенью иммуносупрессии [5]. Апоптоз клеток иммунной системы может иметь решающее значение в разрешении процессов воспаления [2, 15]. Кроме клеток иммунной системы, апоптоз при сепсисе формируется в клетках паренхиматозных органов, эндотелии сосудов и представляет собой важный механизм развития тканевых повреждений и органной дисфункции у пациентов с сепсисом [4]. Было показано, что подавление процессов апоптоза при сепсисе снижает риск развития органной дисфункции и летального исхода [7]. В свете этого оценка активности процессов апоптоза клеток иммунной системы может быть использована в качестве возможного индикатора прогноза заболевания. Цель исследования - оценка интенсивности апоптоза лимфоцитов крови у детей с неонатальным сепсисом. Обследованы 20 детей с поздним неонатальным сепсисом, находившихся на стационарном лечении в отделениях реанимации новорождённых детской республиканской больницы и детской больницы №1 г. Казани. 16 (80%) детей родились недоношенными на следующих сроках: 28-30 нед гестации - 6 детей, 30-32 нед - 4 детей, 32-36 нед - 6 детей, 37-38 нед - 4 детей. Диагноз «сепсис» был основан на наличии синдрома системного воспалительного ответа с повышением концентрации в крови С-реактивного белка более 1,5 мг/дл и наличием одного или нескольких очагов инфекции, а также выделении микроорганизма из венозной крови. Практически у всех детей была диагностирована пневмония на фоне ателектазов с признаками дыхательной недостаточности. У 2 недоношенных в дальнейшем сформировалась бронхолёгочная дисплазия. У 5 (25%) детей отмечалось поражение пищеварительного тракта в виде энтероколита (4 случая), гангренозно-перфоративного аппендицита, осложнившегося перитонитом (1 случай). В 5 (25%) случаях диагностирован реактивный гепатит, у 4 детей - кардиопатия. В 6 (30%) случаях выявлены проявления синдрома диссеминированного внутрисосудистого свёртывания (петехиальная сыпь, отхождение по желудочному зонду содержимого по типу «кофейной гущи», в общем анализе крови - тромбоцитопения, снижение протромбинового индекса, увеличение времени свёртывания крови). У 4 детей отмечались циркуляторные нарушения в виде мраморности кожных покровов. В 5 случаях зарегистрированы проявления полиорганной недостаточности. Бактериологическое исследование крови позволило выделить микроорганизмы у 9 (45%) детей: в 3 случаях высевался гемолитический стафилококк, в 4 - клебсиелла, в 2 - грибы рода Candida. Контрольную группу составили 10 здоровых детей периода новорождённости. Апоптоз лимфоцитов оценивали путём определения величины трансмембранного митохондриального потенциала (ΔΨm). Лимфоциты периферической крови выделяли центрифугированием на градиенте плотности раствора «Фиколл-Пак» («Sigma», США). Проводили окрашивание лимфоцитов флюорохромом DiOC6. Оценку результатов проводили на проточном цитометре «Facs Calibur» в программе «CellQuest». О снижении величины митохондриального потенциала судили по снижению уровня флюоресценции флюорохрома DiOC6. Данный параметр служит одним из наиболее ранних признаков апоптоза [6]. Кроме того, оценивали содержание в периферической крови количества лейкоцитов и лимфоцитов. Анализ результатов проводили в динамике заболевания - в остром периоде и в периоде реконвалесценции. Было установлено, что острый период неонатального сепсиса протекает на фоне усиления активности процессов апоптоза лимфоцитов по сравнению с контрольной группой, что проявлялось увеличением количества клеток со сниженным мембранным потенциалом (DiOCнегативные клетки) у всех пациентов (табл. 1). Таблица 1 Количество лимфоцитов периферической крови (%) с низким митохондриальным потенциалом у детей в остром периоде неонатального сепсиса Контрольная группа (n=10) Дети с сепсисом (n=20) N N N 1 6,7 1 18,7 11 28 2 10,2 2 24,8 12 32,6 3 4,4 3 19,8 13 37,1 4 7,8 4 21,7 14 38,8 5 3,5 5 18,3 15 59,9 6 3,6 6 18,4 16 85 7 10,9 7 25 17 92,8 8 6,9 8 20,7 18 81,7 9 5,1 9 25,5 19 91,5 10 5,4 10 26 20 80,5 У 10 (50%) детей количество подвергшихся апоптозу лимфоцитов было выше показателей контроля в среднем 3,4 раза, у 5 детей - в 6 раз, ещё у 5 детей - в 13,4 раза. Изучение показателей периферической крови выявило состояние лейкопении (менее 5×109/л) в 50% случаев, в 25% случаев количество лейкоцитов оставалось в пределах нормы и только у каждого четвёртого больного (5 детей) установлен лейкоцитоз (более 25×109/л). При этом в 85% случаев (17 детей) в лейкоцитарной формуле регистрировалась относительная лимфопения (менее 40% общего количества лейкоцитов), в 65% (13 детей) - абсолютная лимфопения (менее 2,5×109/л). Сравнительное изучение выраженности апоптоза лимфоцитов крови и синдрома системного воспалительного ответа (по концентрации С-реактивного белка) достоверной корреляции не выявило. По-видимому, это связано с существенными колебаниями выраженности апоптоза лимфоцитов у обследованных детей. Кроме того, использованный нами метод оценки апоптоза не позволяет делать однозначные выводы о необратимости этого процесса. В то же время заслуживает внимания тот факт, что среди небольшой подгруппы пациентов (5 детей), у которых зафиксировано максимальное увеличение числа апоптотически изменённых лимфоцитов, отмечены самые низкие показатели С-реактивного белка (не выше 2 мг/дл) в сравнении с остальными пациентами. Таким образом, у детей с неонатальным сепсисом наибольшая интенсивность апоптоза лимфоцитов обнаружена на фоне минимальной выраженности острой воспалительной реакции и признаков полиорганной недостаточности. Период реконвалесценции характеризовался снижением выраженности апоптоза лимфоцитов, что проявлялось уменьшением количества клеток со сниженным мембранным потенциалом в среднем в 1,9 раза. Только у 1 больного на протяжении всего заболевания количество апоптотических лимфоцитов оставалось повышенным. Уменьшение апоптоза лимфоцитов в периоде реконвалесценции протекало на фоне увеличения содержания в крови абсолютного количества лимфоцитов. ВЫВОДЫ Острый период неонатального сепсиса протекает на фоне усиления апоптоза лимфоцитов, при этом развитие абсолютной лимфопении происходит только в 65% случаев. В свете этого при неонатальном сепсисе представляется целесообразным выполнение не только рутинных анализов крови, но и специальных анализов, направленных на выявление маркёров апоптоза. Использованный в нашем исследовании метод измерения мембранного потенциала клеток позволяет регистрировать апоптоз на его ранних стадиях. Однако на основании измерения только трансмембранного митохондриального потенциала невозможно однозначно судить о необратимости апоптоза. Для полноты оценки апоптоза необходимо проведение дополнительных исследований, направленных на выявление фрагментации ядра и дезоксирибонуклеиновой кислоты клетки. Сам факт выявления апоптоза иммунокомпетентных клеток при сепсисе и других тяжёлых бактериальных инфекциях имеет важное диагностическое, прогностическое значение и является основанием для своевременного назначения соответствующей иммунокорригирующей терапии в виде использования стимуляторов лимфоцитов или нейтрофилов.
×

About the authors

Kh S Khaertynov

Kazan State Medical University, Kazan, Russia

Email: khalit65@rambler.ru

S V Boychuk

Kazan State Medical University, Kazan, Russia

V A Anokhin

Kazan State Medical University, Kazan, Russia

P D Dunaev

Kazan State Medical University, Kazan, Russia

B R Ramazanov

Kazan State Medical University, Kazan, Russia

M A Satrutdinov

Kazan State Medical University, Kazan, Russia

E A Agafonova

Kazan State Medical University, Kazan, Russia

References

  1. Белобородов В.Б. Иммунопатология тяжёлого сепсиса и возможности её коррекции // Вестн. интенсивн. терап. - 2010. - №4. - С. 3-8.
  2. Винокуров М.Г., Юринская М.М. Регуляция апоптоза нейтрофилов при действии липополисахаридов // Биолог. мембраны. - 2010. - Т. 27, №1. - С. 18-27.
  3. Самсыгина Г.А. О предрасполагающих факторах и факторах риска развития неонатального сепсиса и о современных подходах его лечения // Педиатрия. - 2012. - Т. 91, №3. - С. 32-37.
  4. Широкова А.В. Апоптоз. Сигнальные пути и изменение водного и ионного баланса клетки // Цитология. - 2007. - Т. 49, №5. - С. 385-394.
  5. Bochud P.Y., Calandra Th. Pathogenesis of sepsis: new concepts and implication for future treatment // BMJ. - 2003. - Vol. 326,N 738. - Р. 262-265.
  6. Castedo M., Hirsch T., Susi S.A. et al. Sequential acquisition of mitochondrial and plasma membrane alterations during early lymphocyte apoptosis // J. Immunol. - 1996. - Vol. 157,N 2. - P. 512-521.
  7. Coopersmith C.M., Stromberg P.E., Dunne W.M. et al. Inhibition of intestinal epithelial apoptosis and survival in a murine model of pneumonia-induced sepsis // JAMA. - 2002. - Vol. 287. - P. 1716.
  8. Hacker G. The morphology of apoptosis // Cell Tissue Res. - 2000. - Vol. 301. - P. 5-17.
  9. Hotchkiss R.S., Swanson P.E., Freeman B.D. et al. Apoptotic cell death in patients with sepsis, shock, andmultiple organ dysfunction //Crit. Care Med. - 1999. - Vol. 27. - P. 1230-1251.
  10. Hotchkiss R.S., Tinsley K.W., Swanson P.E. et al. Sepsisinduced apoptosis causes progressive profound depletion of B and CD4+ T lymphocytes in humans // J. Immunol. - 2001. - Vol. 166. - P. 6952-6963.
  11. Elmore S. Apoptosis: a review of programmed cell death // Toxicol. Pathol. - 2007. - Vol. 35, issue 4. - P. 495-516.
  12. Kasten K.R., Tschöp J., Adediran S.G. et al. T cells are potent early mediators of the host response to sepsis // Shock. - 2010. - Vol. 34,N 4. - P. 327-336.
  13. Milot E., Fotouhi-Ardakani N., Filep J.G. Myeloid nuclear differentiation antigen, neutrophil apoptosis and sepsis // Front Immunol. - 2012. - Vol. 3. - P. 397.
  14. Richard S.H., Irene E.K. The pathophysiology and treatment of sepsis // New Engl. J. Med. - 2003. - Vol. 348, N 2. - P. 138-150.
  15. Sarah F., Leitch A.E., Duffin R. et al. Neutrophil Apoptosis: Relevance to the Innate Immune Response and Inflammatory Disease // J. Innate Immun. - 2010. - Vol. 2,N 3. - P. 216-227.

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML
Download

© 2013 Khaertynov K.S., Boychuk S.V., Anokhin V.A., Dunaev P.D., Ramazanov B.R., Satrutdinov M.A., Agafonova E.A.

Creative Commons License

This work is licensed
under a Creative Commons Attribution-NonCommercial-ShareAlike 4.0 International License.




This website uses cookies

You consent to our cookies if you continue to use our website.

About Cookies