Функциональное состояние нейтрофилов при интоксикации тетрахлорметаном у крыс

Обложка


Цитировать

Полный текст

Аннотация

Цель. Изучить повреждающее воздействие острой интоксикации тетрахлорметаном в эксперименте на функциональное состояние нейтрофилов. Методы. Эксперименты выполнены на 90 белых неинбредных крысах с массой тела 200-220 г, выделены две группы - опытная и контрольная (по 45 животных). Тетрахлорметан вводили опытной группе внутрижелудочно (1,25 мл/кг 50% раствора в оливковом масле) на протяжении 4 сут. Определяли количество лейкоцитов, нейтрофилов и лимфоцитов в периферической крови, интенсивность кислородзависимого метаболизма (с помощью спонтанного и индуцированного теста с нитросиним тетразолием), поглотительную и антимикробную активность, содержание миелопероксидазы и катионных белков в нейтрофилах. Результаты регистрировали на 7-е, 14-е и 28-е сутки от окончания введения токсиканта. Результаты. На 7-е сутки у крыс опытной группы зарегистрирована лейкопения за счёт снижения количества лимфоцитов, снизился индекс инактивации, что подтверждалось снижением количества миелопероксидаза-позитивных клеток и среднего цитохимического коэффициента; отмечено снижение поглотительной способности нейтрофилов. На 14-е сутки сохранялась лейкопения, обусловленная уже равномерным снижением количества нейтрофилов и лимфоцитов; при сохраняющемся снижении фагоцитарного индекса зарегистрировано увеличение числа клеток, участвующих в фагоцитозе. К 28-м суткам увеличивалось количество лимфоцитов на фоне нейтропении, сохранялось снижение доли миелопероксидаза-позитивных клеток и среднего цитохимического коэффициента в миелопероксидазной системе, снижение показателей индуцированного теста с нитросиним тетразолием и доли клеток, позитивных в отношении катионных белков. Вывод. Острая интоксикация тетрахлорметаном приводит к глубоким нарушениям функционирования нейтрофилов (лейкопении, снижению поглотительной и микробицидной способности нейтрофилов, уменьшению активности миелопероксидазы и содержания катионных белков), которые не устраняются к 28-м суткам наблюдения.

Полный текст

Тетрахлорметан (ТХМ) широко используют в промышленности как растворитель масел, смол, битумов, полимеров, каучука, для экстрагирования жиров и алкалоидов, как обезжиривающее средство при обработке кож, чистке и обезжиривании одежды в быту и на производстве. ТХМ может поступать в организм через кожу, дыхательные пути, пищеварительный тракт. Отравления ТХМ относятся к наиболее частым видам интоксикаций различными ядовитыми жидкостями [6, 7]. Достаточно хорошо изучено гепатотоксическое действие ТХМ, однако высокая смертность при острых интоксикациях может быть также обусловлена формированием глубокого иммунодефицита [3-5, 9, 11]. В связи с этим целью исследования стало изучение влияния острой интоксикации ТХМ на функциональное состояние нейтрофилов. Протоколы экспериментов и содержание животных были составлены в соответствии с «Международными рекомендациями по проведению медикобиологических исследований с использованием животных» (1985) и приказом Министерства Здравоохранения РФ №267 от 19.06.2003 «Об утверждении правил лабораторной практики». Эксперименты были выполнены на 90 белых неинбредных крысах с массой тела 200-220 г. Животные были разделены на две группы (по 45 животных в группе): контроль и опыт с внутрижелудочным введением ТХМ в дозе 1,25 мл/кг 50% раствора в оливковом масле на протяжении 4 сут [8]. Определяли количество лейкоцитов, нейтрофилов и лимфоцитов в периферической крови, интенсивность кислородзависимого метаболизма [спонтанный и индуцированный тест с нитросиним тетразолием (НСТ-тест)], поглотительную способность полиморфноядерных лейкоцитов (ПМЯЛ), антимикробную активность ПМЯЛ в условиях функционирования и блокады (азидом натрия) кислородзависимых факторов микробицидности в отношении грибов Candida albicans, активность миелопероксидазы (МПО) и содержание катионных белков (КБ) в нейтрофилах [2, 10]. Активность МПО и КБ оценивали по интенсивности окраски, пользуясь 5-балльной шкалой по методу L.S. Kaplow, вычисляли процент активных клеток в мазке и средний цитохимический коэффициент (СЦК): СЦК = (1а + 2в + 3с + 4d) / 100, где 1-4 - интенсивность окраски; а, в, с, d - количество ПМЯЛ с соответствующей интенсивностью окраски [10]. Результаты регистрировали на 7-е, 14-е и 28-е сутки от окончания введения токсиканта. Статистическую обработку полученных данных проводили с использованием методов вариационной статистики [1], пакета программ «Statistica 6.0». Проверку на нормальность распределения фактических данных выполняли с помощью критерия Шапиро-Вилка. При нормальности распределения признака оценку значимости различий проводили с использованием t-критерия Стьюдента, достоверными считали различия при уровне статистической достоверности р <0,05. Установлено, что на 7-е сутки после окончания введения токсиканта развилась лейкопения: количество лейкоцитов составило 66,1% (p <0,01) аналогичного показателя в контрольной группе за счёт снижения числа лимфоцитов до 62,1% (p <0,001). Это сопровождалось глубоким угнетением как оксидантных, так и неоксидантных факторов микробицидности ПМЯЛ. Так, интенсивность кислородзависимого киллинга снизилась почти в 2 раза, индекс инактивации (ИИ) составил 59,1% (p <0,001), что цитохимически подтверждалось снижением количества МПО-позитивных клеток до 67,9% (p <0,001) и СЦК до 67,8% (p <0,001) значения в контроле. Зарегистрировано повышение активности кислородзависимого метаболизма ПМЯЛ в спонтанном НСТ-тесте. В то же время в условиях индукции отмечено снижение интенсивности оксидантного метаболизма ПМЯЛ (индуцированный НСТ-тест). В условиях блокады оксидантных механизмов микробицидности азидом натрия ИИ снизился более чем в 4 раза (24,8%, p <0,001), а цитохимически было выявлено снижение доли КБ-позитивных клеток до 36,3% (p <0,001), а СЦК - до 38,8% (p <0,001) контрольного показателя. Отмечено снижение поглотительной способности нейтрофилов: фагоцитарный индекс (ФИ) составил 76,4% (p <0,001). На 14-е сутки сохранялась индуцированная ТХМ лейкопения, обусловленная уже равномерным снижением количества как нейтрофилов, так и лимфоцитов до 59,1% (p <0,02) и 65,9% (p <0,001) соответственно. Активность кислородзависимых механизмов киллинга ПМЯЛ оставалась сниженной (ИИ 61,3%, p <0,001), как и активность МПО: процент МПО-позитивных клеток составил 72,2% (p <0,001), а СЦК - 72,8% (p <0,001). Также сохранялось снижение оксидантного метаболизма ПМЯЛ (индуцированный НСТ-тест). На фоне блокады оксидантных механизмов фунгицидность ПМЯЛ несколько повышалась (по сравнению с 7-ми сутками), хотя и не достигала уровня интактных животных (ИИ 60,5%, p <0,01). Это сочеталось с 2-кратным (по сравнению с 7-ми сутками) повышением содержания КБ в нейтрофильных гранулоцитах: процент КБ-положительных клеток составил 66,3% (p <0,001), а СЦК - 67,1% (p <0,001). При сохраняющемся снижении поглотительной активности ПМЯЛ (ФИ 78,5%, p <0,05) происходило увеличение количества клеток, участвующих в фагоцитозе (до 131,0%, p <0,01). К 28-м суткам выраженность лейкопении несколько уменьшалась за счёт увеличения числа лимфоцитов (80,5%, p <0,05) при сохранявшейся нейтропении (60,9%, p <0,001). Микробицидность ПМЯЛ повышалась, но не восстанавливалась: в условиях функционирования и блокады кислородзависимых механизмов ИИ составил 76,0% (p <0,02) и 78,1% (p <0,01) соответственно. Это согласовалось с сохраняющимся снижением доли МПО-позитивных клеток до 74,1% (p <0,001) и СЦК до 74,3% (p <0,01) в МПО-системе ПМЯЛ, интенсивности кислородзависимого метаболизма ПМЯЛ (индуцированный НСТ-тест) и доли КБ-позитивных клеток до 71,6% (p <0,001), СЦК до 72,6% (p <0,001) в КБ-системе ПМЯЛ. Число нейтрофилов, участвующих в фагоцитозе, уменьшалось (по сравнению с 14-ми сутками) до уровня интактных животных при сохранявшемся снижении их поглотительной активности (ФИ 86,6%, p <0,05). ВЫВОДЫ 1. Полученные данные свидетельствуют о том, что острая интоксикация ТХМ приводит к глубоким нарушениям функционирования нейтрофилов: снижается активность пероксидазозависимых и пероксидазонезависимых оксидантных факторов микробицидности, кислороднезависимых механизмов киллинга, поглотительная способность клеток. 2. Указанные нарушения не устраняются к 28-м суткам наблюдения, что, безусловно, требует изыскания возможных путей их фармакологической коррекции.
×

Об авторах

Евгений Константинович Алёхин

Башкирский государственный медицинский университет, г. Уфа

Ляйсан Фагимовна Муфазалова

Башкирский государственный медицинский университет, г. Уфа

Email: lya-mufazalova@ya.ru

Наталья Альбертовна Муфазалова

Башкирский государственный медицинский университет, г. Уфа

Список литературы

  1. Гареев Е.М. Основы математико-статистической обработки медико-биологической информации. - Уфа: Башгосмедуниверситет Роздрава, 2009. - 346 с.
  2. Долгушин И.И., Андреева Ю.С., Савочкина А.Ю. Нейтрофильные ловушки и методы оценки функционального статуса нейтрофилов. - М.: Издательство РАМН, 2009. - 208 с.
  3. Забродский П.Ф., Германчук В.Г., Киричук В.Ф., Карпенко Н.И. Влияние тетрахлорметана на показатели иммунной системы // Бюлл. эксперим. биолог. и мед. - 2004. - Т. 137, №1. - С. 56-58.
  4. Забродский П.Ф., Киричук В.Ф., Лим В.Г. Изменение цитокинового профиля и редукция функции субпопуляций лимфоцитов при подостром отравлении тетрахлорметаном // Бюлл. эксперим. биолог. и мед. - 2009. - Т. 147, №1. - С. 55-57.
  5. Лемза С.В., Ажунова Т.А., Мондодоев А.Г. Фармакотерапевтическая эффективность комплексного растительного средства «гепатон» при экспериментальном повреждении печени // Бюллетень ВСНЦ СО РАМН. - 2010. - №2. - С. 181-184.
  6. Лужников Е.А., Костомарова Л.Г. Острые отравления. Руководство для врачей. - М.: Медицина, 2000. - 434 с.
  7. Мышкин В.А., Ибатуллина Р.Б., Бакиров А.Б. Поражения печени химическими веществами. (Функционально-метаболические нарушения, фармакологическая коррекция.) - Уфа: Гилем, 2007. - 177 с.
  8. Саратиков А.С., Венгеровский А.И. Влияние гепатопротекторов, содержащих фосфолипиды, на зависимую от цитохрома Р-450 антитоксическую функцию печени при экспериментальном токсическом гепатите // Бюлл. эксперим. биолог и мед. - 1999. - Т. 127, №4. - С. 392-394.
  9. Степовая Е.А., Петина Г.В., Жаворонок Т.В. Роль тиолдисульфидной системы в механизмах изменений функциональных свойств нейтрофилов при окислительном стрессе // Бюлл. эксперим. биол. и мед. - 2010. - Т. 150, №8. - С. 161-165.
  10. Ягода А.В., Локтева Н.А. Клиническая цитохимия. - Ставрополь: СтГМА, 2005. - 485 с.
  11. Янгиров И.В., Нартайлаков М.А., Мингазов Р.С. Стимуляция регенеративных процессов в цирротически изменённой печени введением аллогенного диспергированного биоматериала и фетальной ткани // Мед. вестн. Башкортостана. - 2006. - №1. - С. 156-160.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML

© 2012 Алёхин Е.К., Муфазалова Л.Ф., Муфазалова Н.А.

Creative Commons License

Эта статья доступна по лицензии
Creative Commons Attribution-NonCommercial-ShareAlike 4.0 International License.


СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: ЭЛ № ФС 77 - 75008 от 01.02.2019.


Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах