Микобиота кишечнодышащего Saccoglossus mereschkowskii (Hemichordata, Enteropneusta) и его местообитания

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Известно, что ткани и слизь кишечнодышащих содержат фенольные соединения, ингибирующие активность аэробных бактерий. В настоящей работе проведено исследование микобиоты тканей, смывов с поверхности тела и норок кишечнодышащего Saccoglossus mereschkowskii (Wagner, 1885). В посевах образцов кишечника обнаружено 3 вида грибов. Из смывов с поверхности тела S. mereschkowskii выделено 7 видов, из образцов норок – 5 видов, из образцов осадка в месте обитания S. mereschkowskii – 15 видов. Посевы интактных особей, жаберных перегородок и осевого органа не выявили роста мицелиальных грибов; это свидетельствует о том, что ткани кишечнодышащих могут обладать фунгистатическим действием.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

О. В. Ежова

Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова

Автор, ответственный за переписку.
Email: olga_ejova@mail.ru

биологический факультет, кафедра зоологии беспозвоночных

Россия, Москва

О. А. Грум-Гржимайло

Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова

Email: olga_ejova@mail.ru

биологический факультет, Беломорская биологическая станция имени Н.А. Перцова

Россия, Москва

Ю. А. Кокуркина

Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова

Email: olga_ejova@mail.ru

биологический факультет, кафедра зоологии беспозвоночных

Россия, Москва

И. А. Екимова

Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова

Email: olga_ejova@mail.ru

биологический факультет, кафедра зоологии беспозвоночных

Россия, Москва

М. М. Ганцевич

Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова

Email: olga_ejova@mail.ru

биологический факультет, кафедра зоологии беспозвоночных

Россия, Москва

В. В. Малахов

Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова

Email: olga_ejova@mail.ru

биологический факультет, кафедра зоологии беспозвоночных, академик РАН

Россия, Москва

Список литературы

  1. Van der Horst C.J. Observations on some Enteropneusta // Videnskabelige meddelelser fra Dansk Naturhistorisk Forening i København. 1929. Vol. 87. P. 135–200.
  2. King G.M. Inhibition of microbial activity in marine sediments by a bromophenol from a hemichordate // Nature. 1986. Vol. 323. P. 257–259.
  3. Richards T.A., Jones M.D., Leonard G., Bass D. Marine fungi: their ecology and molecular diversity // Annual Review of Marine Science. 2012. V. 4. P. 495–522.
  4. Gonçalves M.F., Esteves A.C., Alves A. Marine fungi: Opportunities and challenges // Encyclopedia. 2022. V. 2. P. 559–577.
  5. Frisvad J.C., Samson R.A. Polyphasic taxonomy of Penicillium subgenus Penicillium. A guide to identification of food and air-borne terverticillate Penicillia and their mycotoxins // Studies in mycology. 2004. V. 49. P. 1–174.
  6. Domsch K.H., Gams W., Anderson T.-H. Compendium of Soil Fungi // Eching, Germany: IHW-Verlag. 2007. 672 p.
  7. Pitt J.I., Hocking A.D. Aspergillus and related teleomorphs // Fungi and Food Spoilage. 2009. P. 275–337.
  8. Ivanova N., Grainger C., Hajibabaei M. Glass fiber DNA extraction: A new inexpensive method for high throughput DNA isolation // CCDB Advances, Methods Release. No. 1. 2006.
  9. Osterburg H.H., Allen J.K., Finch C.E. The use of ammonium acetate in the precipitation of ribonucleic acid // Biochemical Journal. 1975. V. 147. P. 367–368.
  10. Бубнова Е.Н., Никитин Д.А. Грибы в донных грунтах Баренцева и Карского морей // Биология моря. 2017. Т. 43. С. 366–371.
  11. Бубнова Е.Н., Георгиева М.Л., Грум-Гржимайло О.А. Способ выделения и учета грибов, развивающихся в морских грунтах // Микробиология. 2018. Т. 87. С. 672–678.
  12. Бубнова Е.Н., Коновалова О.П. Грибы в донных грунтах Чукотского моря // Биология моря. 2019. Т. 45. С. 86–96.
  13. Pagani D.M., et al. Susceptibility to antifungal agents and enzymatic activity of Candida haemulonii and Cutaneotrichosporon dermatis isolated from soft corals on the Brazilian reefs // Archives of Microbiology. 2016. V. 198. P. 963–971.
  14. Edrada R.A., et al. Online analysis of Xestodecalactones A− C, novel bioactive metabolites from the fungus Penicillium cf. montanense and their subsequent isolation from the sponge Xestospongia exigua // Journal of natural products. 2002. V. 65. P. 1598–1604.
  15. Flewelling A.J., Johnson J.A., Gray C.A. Isolation and bioassay screening of fungal endophytes from North Atlantic marine macroalgae // Botanica Marina. 2013. V. 56. P. 287–297.
  16. Olivier F.A., et al. Aerial warfare: An inducible production of volatile bioactive metabolites in a novel species of Scytinostroma sp. // Fungal Genetics and Biology. 2022. V. 158. 103646.
  17. Никитин Д.А., и др. Ферментативная и антимикробная активность полярных штаммов почвенных микроскопических грибов // Микология и фитопатология. 2021. Т. 55. P. 36–50.
  18. Girardi N., et al. Ecophysiological characteristics of the nematophagous fungus, Plectosphaerella plurivora, with biocontrol potential on Nacobbus aberrans s.l. in tomato // European Journal of Plant Pathology. 2023. V. 167. P. 867–881.
  19. Han L., et al. First report of Plectosphaerella plurivora causing root rot disease in Panax notoginseng in China // Journal of Phytopathology. 2020. V. 168. P. 375–379.
  20. Zhang T., et al. Diversity and distribution of cultured endolichenic fungi in the Ny-Ålesund Region, Svalbard (High Arctic) // Extremophiles. 2016. V. 20. P. 461–470.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
2. Рис. 1. Доля разных родов грибов, выделенных из кишечника, смывов с поверхности тела, норок Saccoglossus mereschkowskii и ила из его местообитания.

Скачать (66KB)
3. Рис. 2. Посевы интактных особей Saccoglossus mereschkowskii (а), жаберных перегородок (б), смыва с поверхности тела S. mereschkowskii (в) и ила из местообитания S. mereschkowskii (г). Указан день после посева. Масштаб (а, в, г) – 1 см, (б) – 1 мм.

Скачать (135KB)

© Российская академия наук, 2025