Липидный профиль пестряток и смолтов атлантического лосося Salmo salar L., выращенных в аквакультуре, при введении разных режимов освещения

Обложка

Цитировать

Полный текст

Аннотация

Изучение биохимических механизмов влияния дополнительного освещения на процессы роста и раннего развития лососевых рыб в аквакультуре позволяют выявлять закономерности замедленного или ускоренного роста, а также наступления периода смолтификации. В настоящей работе получены результаты изменения липидного статуса у пестряток и смолтов атлантического лосося после “зимнего окна” (декабрь – январь), полученных от трех экспериментальных групп, подвергшихся на этапе сеголетков действию различных режимов освещения и кормления. Результаты изменения липидного состава исследованной молоди лосося свидетельствуют о наступлении смолтификации, причем во всех экспериментальных группах, однако этот эффект наиболее выражен для молоди, ранее содержащейся при круглосуточном освещении в летне-осенний сезон.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Д. С. Провоторов

Институт биологии – обособленное подразделение ФГБУН ФИЦ “Карельский научный центр Российской академии наук”

Автор, ответственный за переписку.
Email: klaydim1@mail.ru
Россия, ул. Пушкинская, 11, Петрозаводск,185910

С. А. Мурзина

Институт биологии – обособленное подразделение ФГБУН ФИЦ “Карельский научный центр Российской академии наук”

Email: klaydim1@mail.ru
Россия, ул. Пушкинская, 11, Петрозаводск,185910

В. П. Воронин

Институт биологии – обособленное подразделение ФГБУН ФИЦ “Карельский научный центр Российской академии наук”

Email: klaydim1@mail.ru
Россия, ул. Пушкинская, 11, Петрозаводск,185910

Д. И. Манойлова

Институт биологии – обособленное подразделение ФГБУН ФИЦ “Карельский научный центр Российской академии наук”

Email: klaydim1@mail.ru
Россия, ул. Пушкинская, 11, Петрозаводск,185910

М. В. Кузнецова

Институт биологии – обособленное подразделение ФГБУН ФИЦ “Карельский научный центр Российской академии наук”

Email: klaydim1@mail.ru
Россия, ул. Пушкинская, 11, Петрозаводск,185910

А. Е. Курицын

Институт биологии – обособленное подразделение ФГБУН ФИЦ “Карельский научный центр Российской академии наук”

Email: klaydim1@mail.ru
Россия, ул. Пушкинская, 11, Петрозаводск,185910

Н. Н. Немова

Институт биологии – обособленное подразделение ФГБУН ФИЦ “Карельский научный центр Российской академии наук”

Email: klaydim1@mail.ru
Россия, ул. Пушкинская, 11, Петрозаводск,185910

Список литературы

  1. Геннис Р. Биомембраны: Молекулярная структура и функции. М.: Мир, 1997. 624 с.
  2. Кейтс М. Техника липидологии: Выделение, анализ и идентификация липидов. М.: Мир, 1975. 322 c.
  3. Мурзина С.А., Провоторов Д.С., Воронин В.П., Кузнецова М.В., Курицын А.Е., Немова Н.Н. Показатели липидного обмена у сеголеток атлантического лосося Salmo salar в условиях аквакультуры в южном регионе РФ при разных режимах освещения и кормления // Известия РАН. Серия биологическая. 2023a. № 2. С. 134–148.
  4. Мурзина С.А., Провоторов Д.С., Воронин В.П., Манойлова Д.И., Курицын А.Е., Пеккоева С.Н., Немова Н.Н. Фосфолипидный состав сеголеток атлантического лосося Salmo salar в процессе роста и развития в аквакультуре: влияние разных режимов освещения и кормления // Доклады Российской академии наук. Науки о жизни. 2023b. Т. 509. С. 181–185.
  5. Немова Н.Н., Мурзина С.А., Лысенко Л.А., Мещерякова О.В., Чурова М.В., Канцерова Н.П., Нефедова З.А., Крупнова М.Ю., Пеккоева С.Н., Руоколайнен Т.Р., Веселов А.Е., Ефремов Д.А. Эколого-биохимический статус атлантического лосося Salmo salar L. и кумжи Salmo trutta L. в раннем развитии // Журн. общ. биол. 2019. Т. 80. № 3. С. 175–186.
  6. Немова Н.Н., Нефедова З.А., Пеккоева С.Н., Воронин В.П., Руоколайнен Т.Р., Мурзина С.А. Влияние фотопериода на липидный спектр молоди атлантического лосося Salmo salar L. // Росс. физиол. журн. им. И.М. Сеченова. 2020. Т. 106. № 5. С. 622–630.
  7. Шульгина Н.С., Чурова М.В., Немова Н.Н. Влияние фотопериода на рост и развитие лососевых Salmonidae северных широт // Журн. общ. биол. 2021. Т. 82. № 1. С. 68–80.
  8. Björnsson B. Th., Young G., Lin R.J., Deftos L.J., Bern H.A. Smoltification and seawater adaptation of coho salmon, Oncorhynchus kisutch: plasma calcitonin levels, calcium regulation and osmoregulation // Gen. Comp. Endocrinol. 1989. V. 74. P. 346–354.
  9. Duncan N.J., Auchinachie N., Robertson D., Murray R., Bromage N. Growth, maturation and survival of out-of-season 0+ and 1+ Atlantic salmon (Salmo salar) smolts // Aquaculture. 1998. V. 168. P. 325–339.
  10. Duston J., Saunders R.L. The entrainment role of photoperiod on hypoosmoregulatory and growth, related aspects of smolting in Atlantic salmon (Salmo salar) // Can. J. Zool. 1990. V. 68. № 4. P. 707–715.
  11. Duston J., Saunders R.L. Effect of 6-, 12-, and 18-month photoperiod cycles on smolting and sexual maturation in juvenile Atlantic salmon (Salmo salar) // Can. J. Fish. Aquat. Sci. 1992. V. 49. P. 2273–2280.
  12. Duston J., Saunders R.L. Advancing smolting to autumn in age 0+ Atlantic salmon by photoperiod, and long-term performance in sea water // Aquaculture. 1995. V. 135. № 4. P. 295–309.
  13. Folch J., Lees M., Sloan-Stanley G.H. A simple method for the isolation and purification of total lipids animal tissue (for brain, liver and muscle) // J. Biol. Chem. 1957. Vol. 226. P. 497–509.
  14. Handeland S.O., Stefansson S.O. Photoperiod control and influence of body size on off-season parr-smolt transformation and post-smolt growth // Aquaculture. 2001. V. 192. P. 291–307.
  15. Hellwig J. Defining parameters for a reproducible TLC-separation of phospholipids using ADC 2. Diploma thesis, University of Applied Sciences Northwestern Switzerland (FHNW), 2005.
  16. Mason E.G., Gallant R.K., Wood L. Productivity enhancement of rainbow trout using photoperiod manipulation // Bull. Aquac. Assoc. Can. 1992. V. 91. P. 44–46.
  17. Nemova N.N., Nefedova Z.A., Pekkoeva S.N., Voronin V.P., Shulgina N.S., Churova M.V., Murzina S.A. The Effect of the Photoperiod on the Fatty Acid Profile and Weight in Hatchery-Reared Underyearlings and Yearlings of Atlantic Salmon Salmo salar L // Biomolecules. 2020. V. 10. № 6. P. 845.
  18. Olsen R.E., Henderson R.J. The rapid analysis of neutral and polar marine lipids using double development HPTLC and scanning densitometry // J. Exp. Mar. Biol. Ecol. 1989. Vol. 129. P. 189–197.
  19. Rowe D.K., Thorpe J.E., Shanks A.M. Role of fat stores in the maturation of male Atlantic salmon (Salmo salar) parr // Can. J. Fish. Aquat. Sci. 1991. V. 48. P. 405–413.
  20. Saunders R.L., Henderson E.B. Effects of constant day length on sexual maturation and growth of Atlantic salmon (Salmo salar) parr // Can. J. Fish. Aquat. Sc. 1988. V. 45. P. 60–64.
  21. Sheridan M.A. Alterations in lipid metabolism accompanying smoltification and seawater adaptation of salmonid fish // Aquaculture. 1989. V. 82 (1–4). P. 191–204.
  22. Thrush M.A., Duncan N.J., Bromage N.R. The use of photoperiod in the production of out-of-season Atlantic salmon (Salmo salar) smolts // Aquaculture. 1994. V. 121. P. 29–44.
  23. Thrush M.N., Duncan N.L., Bromage N.R. The use of photoperiod in the production of out-of season Atlantic salmon (Salmo salar) smolts // Aquaculture. 1999. V. 121. № 1–3. P. 29–44.
  24. Wedemeyer G.A., Saunders R.L., Clarke W.C. Environmental factors affecting smoltification and early marine survival of anadromous salmonids // Mar. Fish. Rev. 1980. V. 42. P. 1–14.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
2. Рис. 1. Общая схема эксперимента

Скачать (187KB)
3. Рис. 2. Фотографии молоди лосося в эксперименте: а – группа 24LD + KK; б – группа ЕстLD + KД; в – группа 24LD + KД

4. Рис. 3. Динамика липидных классов (% сухого вещества) в мышцах молоди атлантического лосося в трех исследованных экспериментальных вариантах в марте. На рисунке использованы следующие аббревиатуры для исследованных липидных классов: ФЛ – общие фосфолипиды, ТАГ – триацилглицерины, ДАГ – диацилглицерины, МАГ – моноацилглицерины, ХС – холестерин, ЭХС – эфиры холестерина, СЖК – свободные жирные кислоты

Скачать (333KB)
5. Рис. 4. Динамика некоторых фосфолипидных классов (% сухого вещества) в мышцах молоди атлантического лосося в трех исследованных экспериментальных вариантах в марте. На рисунке использованы следующие аббревиатуры для исследованных фосфолипидных классов: ФИ – фосфатидилинозитол, ФС – фосфатидилсерин, ФЭА – фосфатидилэтаноламин, ФХ – фосфатидилхолин, ЛФХ – лизофосфатидилхолин, СФМ – сфингомиелин

Скачать (263KB)
6. Рис. 5. Динамика липидных классов (% сухого вещества) в печени молоди атлантического лосося в трех исследованных экспериментальных вариантах в марте

Скачать (324KB)
7. Рис. 6. Динамика некоторых фосфолипидных классов (% сухого вещества) в печени молоди атлантического лосося в трех исследованных экспериментальных вариантах в марте

Скачать (255KB)

© Российская академия наук, 2024