<?xml version="1.0" encoding="UTF-8"?>
<!DOCTYPE root>
<article xmlns:mml="http://www.w3.org/1998/Math/MathML" xmlns:xlink="http://www.w3.org/1999/xlink" xmlns:xsi="http://www.w3.org/2001/XMLSchema-instance" xmlns:ali="http://www.niso.org/schemas/ali/1.0/" article-type="research-article" dtd-version="1.2" xml:lang="en"><front><journal-meta><journal-id journal-id-type="publisher-id">Kazan medical journal</journal-id><journal-title-group><journal-title xml:lang="en">Kazan medical journal</journal-title><trans-title-group xml:lang="ru"><trans-title>Казанский медицинский журнал</trans-title></trans-title-group></journal-title-group><issn publication-format="print">0368-4814</issn><issn publication-format="electronic">2587-9359</issn><publisher><publisher-name xml:lang="en">Eco-Vector</publisher-name></publisher></journal-meta><article-meta><article-id pub-id-type="publisher-id">7258</article-id><article-id pub-id-type="doi">10.17750/KMJ2017-1005</article-id><article-categories><subj-group subj-group-type="toc-heading" xml:lang="en"><subject>Experimental medicine</subject></subj-group><subj-group subj-group-type="toc-heading" xml:lang="ru"><subject>Экспериментальная медицина</subject></subj-group><subj-group subj-group-type="article-type"><subject>Research Article</subject></subj-group></article-categories><title-group><article-title xml:lang="en">Influence of L-Nω-nitroarginine methyl ester and sodium nitroprusside in vitro on the oxidative modification of rat lysosome proteins</article-title><trans-title-group xml:lang="ru"><trans-title>Влияние L-Nω-нитроаргинина метилового эфира и нитропруссида натрия in vitro на окислительную модификацию белков лизосом печени крыс</trans-title></trans-title-group></title-group><contrib-group><contrib contrib-type="author"><name-alternatives><name xml:lang="en"><surname>Fomina</surname><given-names>M A</given-names></name><name xml:lang="ru"><surname>Фомина</surname><given-names>Мария Алексеевна</given-names></name></name-alternatives><email>anyakudlaeva@mail.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff1"/></contrib><contrib contrib-type="author"><name-alternatives><name xml:lang="en"><surname>Kudlaeva</surname><given-names>A M</given-names></name><name xml:lang="ru"><surname>Кудлаева</surname><given-names>Анна Михайловна</given-names></name></name-alternatives><email>anyakudlaeva@mail.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff1"/></contrib><contrib contrib-type="author"><name-alternatives><name xml:lang="en"><surname>Isakov</surname><given-names>S A</given-names></name><name xml:lang="ru"><surname>Исаков</surname><given-names>Сергей Алексеевич</given-names></name></name-alternatives><email>anyakudlaeva@mail.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff1"/></contrib><contrib contrib-type="author"><name-alternatives><name xml:lang="en"><surname>Ryabkov</surname><given-names>A N</given-names></name><name xml:lang="ru"><surname>Рябков</surname><given-names>Александр Николаевич</given-names></name></name-alternatives><email>anyakudlaeva@mail.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff1"/></contrib></contrib-group><aff-alternatives id="aff1"><aff><institution xml:lang="en">Ryazan State Medical University named after I.P. Pavlov</institution></aff><aff><institution xml:lang="ru">Рязанский государственный медицинский университет им. И.П. Павлова</institution></aff></aff-alternatives><pub-date date-type="pub" iso-8601-date="2017-12-15" publication-format="electronic"><day>15</day><month>12</month><year>2017</year></pub-date><volume>98</volume><issue>6</issue><issue-title xml:lang="en">VOL 98, NO6 (2017)</issue-title><issue-title xml:lang="ru">ТОМ 98, №6 (2017)</issue-title><fpage>1005</fpage><lpage>1011</lpage><history><date date-type="received" iso-8601-date="2017-12-04"><day>04</day><month>12</month><year>2017</year></date></history><permissions><copyright-statement xml:lang="en">Copyright ©; 2017, Fomina M.A., Kudlaeva A.M., Isakov S.A., Ryabkov A.N.</copyright-statement><copyright-statement xml:lang="ru">Copyright ©; 2017, Фомина М.А., Кудлаева А.М., Исаков С.А., Рябков А.Н.</copyright-statement><copyright-year>2017</copyright-year><copyright-holder xml:lang="en">Fomina M.A., Kudlaeva A.M., Isakov S.A., Ryabkov A.N.</copyright-holder><copyright-holder xml:lang="ru">Фомина М.А., Кудлаева А.М., Исаков С.А., Рябков А.Н.</copyright-holder><ali:free_to_read xmlns:ali="http://www.niso.org/schemas/ali/1.0/"/><license><ali:license_ref xmlns:ali="http://www.niso.org/schemas/ali/1.0/">http://creativecommons.org/licenses/by-nc-sa/4.0</ali:license_ref></license></permissions><self-uri xlink:href="https://kazanmedjournal.ru/kazanmedj/article/view/7258">https://kazanmedjournal.ru/kazanmedj/article/view/7258</self-uri><abstract xml:lang="en"><p>Aim. To investigate in vitro effects of 5 mM L-Nω-nitroarginine methyl ester and 0.1 mM sodium nitroprusside on oxidative modification of lysosomal proteins of liver of intact sexually mature female rats of Wistar line. Methods. In the control groups in vitro incubation of isolated lysosomes in the isolation medium for 1, 2 and 4 hours was carried out. Experimental groups were incubated similarly in solutions of 5 mM L-Nω-nitroarginine methyl ester and 0.1 mM sodium nitroprusside. Protein oxidative modification was measured in sedimentary fraction according to R.L. Levine’s method in E.E. Dubinina’s modification. Reserve-adaptive capacity was calculated as the difference between total area under the curve of carbonyl derived proteins after metal-catalyzed oxidation (taken as 100%) and spontaneous oxidation, expressed as a percentage. Results. After 4-hour in vitro incubation 5 mM L-Nω-nitroarginine methyl ester was found to statically significantly increase the total level of protein oxidative modification compared to the control group by 2.41 times and to reduce reserve-adaptive capacity by 4.96 times, and 0.1 mM sodium nitroprusside increases the total level of protein oxidative modification compared to the control group by 2.05 times and reduces reserve-adaptive capacity by 1.56 times. One of the possible mechanisms of this phenomenon may be the reduced activity of lysosomal proteinases. 2-hour and 4-hour in vitro incubation of lysosomes in 5 mM L-Nω-nitroarginine methyl ester is accompanied by an increase of secondary markers of the ratio of protein oxidative modification relatively to 1-hour exposure by 1.18 times and 1.35 times, respectively. At 1-hour in vitro incubation in 0.1 mM sodium nitroprusside, increase of secondary markers of protein oxidative degradation by 1.64 times occurs. Conclusion. The in vitro effect of 5 mM -Nω-nitroarginine methyl ester and 0.1 mM sodium nitroprusside results in visible changes of oxidative modification of rat liver lysosomal proteins.</p></abstract><trans-abstract xml:lang="ru"><p>Цель. Изучение воздействия in vitro 5 мМ L-Nω-нитроаргинина метилового эфира и 0,1 мМ натрия нитропруссида на окислительную модификацию лизосомальных белков печени половозрелых интактных крыс-самок линии Wistar. Методы. В контрольных группах проводили инкубацию in vitro выделенных лизосом в среде выделения в течение 1, 2 и 4 ч. Опытные группы инкубировали подобным образом в растворах 5 мМ L-Nω-нитроаргинина метилового эфира и 0,1 мМ натрия нитропруссида. Окислительную модификацию белков оценивали в седиментируемой фракции по методу R.L. Levine в модификации Е.Е. Дубининой. Резервно-адаптационный потенциал рассчитывали как разность между общей площадью под кривой карбонильных производных при металл-катализируемом окислении (принимали за 100%) и при спонтанном окислении, выраженном в процентном соотношении. Результаты. Оказалось, что при 4-часовой инкубации in vitro 5 мМ L-Nω-нитроаргинина метиловый эфир статистически значимо увеличивает общий уровень окислительной модификации белков по сравнению с контрольной группой в 2,41 раза и уменьшает резервно-адаптационный потенциал в 4,96 раза, а 0,1 мМ натрия нитропруссид увеличивает общий уровень окислительной модификации белков по сравнению с контрольной группой в 2,05 раза и уменьшает резервно-адаптационный потенциал в 1,56 раза. Одним из возможных механизмов данного явления может оказаться снижение активности лизосомальных протеиназ. 2-часовая и 4-часовая инкубация in vitro лизосом в 5 мМ L-Nω-нитроаргинина метиловом эфире сопровождается увеличением доли вторичных маркёров окислительной модификации белков по отношению к 1-часовому воздействию в 1,18 и 1,35 раза соответственно. При 1-часовой инкубации in vitro в 0,1 мМ натрия нитропруссиде происходит рост содержания вторичных маркёров окислительной деструкции белков в 1,64 раза. Вывод. Воздействие 5 мМ L-Nω-нитроаргинина метилового эфира и 0,1 мМ натрия нитропруссида in vitro приводит к отчётливым изменениям показателей окислительной модификации лизосомальных белков печени крыс.</p></trans-abstract><kwd-group xml:lang="en"><kwd>oxidative protein modification</kwd><kwd>lysosomes</kwd><kwd>reserve-adaptive capacity</kwd><kwd>experiment</kwd></kwd-group><kwd-group xml:lang="ru"><kwd>окислительная модификация белков</kwd><kwd>лизосомы</kwd><kwd>резервно-адаптационный потенциал</kwd><kwd>эксперимент</kwd></kwd-group></article-meta></front><body></body><back><ref-list><ref id="B1"><label>1.</label><mixed-citation>Rinalducci S., Murgiano L., Zolla L. Redox proteomics: basic principles and future perspectives for the detection of protein oxidation in plants. J. Experim. Botany. 2008; 59 (14): 3781-3801. DOI: 10.1093/jxb/ern252.</mixed-citation></ref><ref id="B2"><label>2.</label><mixed-citation>Nagaokaa Y., Otsua K., Okada F. et al. Specific inactivation of cysteine protease-type cathepsin by singlet oxygen generated from naphthalene endoperoxides. Biochem. Biophys. Res. Communications. 2005; 331 (1): 215-223. DOI: 10.1016/j.bbrc.2005.03.146.</mixed-citation></ref><ref id="B3"><label>3.</label><mixed-citation>Stadtman E.R. Protein oxidation and aging. Free Radic. 2006; 40 (12): 1250-1258. DOI: 10.1080/10715760600918142.</mixed-citation></ref><ref id="B4"><label>4.</label><mixed-citation>Hsieh H., Liu C., Huang B. et al. Shear-induced endothelial mechanotransduction: the interplay between reactive oxygen species (ROS) and nitric oxide (NO) and the pathophysiological implications. J. Biomed. Sci. 2014; 21: 3. DOI: 10.1186/1423-0127-21-3.</mixed-citation></ref><ref id="B5"><label>5.</label><mixed-citation>Nazari Q.A., Mizuno K., Kume T. et al. In vivo brain oxidative stress model induced by microinjection of sodium nitroprusside in mice. J. Pharmacol. Sci. 2012; 120: 105-111. DOI: 10.1254/jphs.12143FP.</mixed-citation></ref><ref id="B6"><label>6.</label><mixed-citation>Sasso S., Dalmedico L., Delwing-Dal M. et al. Effect of N-acetylarginine, a metabolite accumulated in hyperargininemia, on parameters of oxidative stress in rats: protective role of vitamins and L-NAME. Cell. Biochem. Funct. 2014; 32 (6): 511-519. DOI: 10.1002/cbf.3045.</mixed-citation></ref><ref id="B7"><label>7.</label><mixed-citation>Теплов С.А., Абаленихина Ю.В., Фомина М.А. и др. Изменение спектра поглощения продуктов окислительной модификации белков печени крыс в условиях дефицита синтеза оксида азота различной выраженности. Наука молодых (Eruditio Juvenium). 2016; (1): 50-54.</mixed-citation></ref><ref id="B8"><label>8.</label><mixed-citation>Дубинина Е.Е., Бурмистров С.О., Ходов Д.А. и др. Окислительная модификация белков сыворотки крови человека, метод её определения. Вопр. мед. химии. 1995; 41 (1): 24-26.</mixed-citation></ref><ref id="B9"><label>9.</label><mixed-citation>Фомина М.А., Абаленихина Ю.В., Фомина Н.В., Терентьев А.А. Способ комплексной оценки содержания продуктов окислительной модификации белков в тканях и биологических жидкостях. Патент №2524667. Бюлл. №21 от 27.07.2014.</mixed-citation></ref><ref id="B10"><label>10.</label><mixed-citation>Губский Ю.И., Беленичев И.Ф., Левицкий Е.Л. и др. Токсикологические последствия окислительной модификации белков при различных патологических состояниях (обзор литературы). Соврем. пробл. токсикол. 2005; 8 (3): 20-27.</mixed-citation></ref><ref id="B11"><label>11.</label><mixed-citation>Dunlop R.A., Brunk U.T., Rodgers K.J. Oxidized proteins: Mechanisms of removal and consequences of accumulation. Life. 2009; 61 (5): 522-527. DOI: 10.1002/iub.189.</mixed-citation></ref><ref id="B12"><label>12.</label><mixed-citation>Siemieniuk E., Kolodziejczyk L., Skrzydlewska E. Oxidative modifications of rat liver cell components during fasciola hepatica infection. Toxicology Mechanisms and Methods. 2008; 18 (6): 519-524. DOI: 10.1080/15376510701624001.</mixed-citation></ref><ref id="B13"><label>13.</label><mixed-citation>Lee J., Giordano S., Zhang J. Autophagy, mitochondria and oxidative stress: cross-talk and redox signaling. Biochem. J. 2012; 441 (2): 523-540. DOI: 10.1042/BJ20111451.</mixed-citation></ref><ref id="B14"><label>14.</label><mixed-citation>Абаленихина Ю.В., Фомина М.А., Исаков С.А. Окислительная модификация белков и изменение активности катепсина L селезёнки крыс в условиях моделирования дефицита синтеза оксида азота. Рос. мед.-биол. Вестн. им. акад. И.П. Павлова. 2013; (1): 44-48.</mixed-citation></ref><ref id="B15"><label>15.</label><mixed-citation>Zeng J., Dunlop R.A., Rodgers K.J. et al. Evidence for inactivation of cysteine proteases by reactive carbonyls via glycation of active site thiols. Biochem. J. 2006; 398: 197-206. DOI:10.1042/BJ20060019.</mixed-citation></ref></ref-list></back></article>
