Current aspects of cellular immunotherapy for melanoma
- Authors: Kharisova C.B.1, Gorodilova A.V.1, Mayasin Y.P.1, Filin I.Y.1, Kitaeva K.V.1, Valiullin V.V.2, Rizvanov A.A.1,3, Solovyeva V.V.1
-
Affiliations:
- Kazan (Volga Region) Federal University
- Kazan State Medical University
- Division of Medical and Biological Sciences, Academy of Sciences of the Republic of Tatarstan
- Issue: Vol 107, No 4 (2026)
- Pages: 582-597
- Section: Reviews
- Submitted: 07.11.2025
- Accepted: 12.02.2026
- Published: 28.07.2026
- URL: https://kazanmedjournal.ru/kazanmedj/article/view/690309
- DOI: https://doi.org/10.17816/KMJ690309
- EDN: https://elibrary.ru/HRAXLF
- ID: 690309
Cite item
Abstract
Melanoma is one of the most aggressive and therapy-resistant cancers, characterized by a high metastatic potential and a steadily increasing incidence. This review analyzes current approaches to cellular immunotherapy for melanoma, including tumor-infiltrating lymphocyte (TIL) therapy, TCR- and CAR-T-cell technologies, the use of NK cells, NKT cells, B cells, dendritic cells, macrophages, and immune checkpoint inhibitors.
TIL therapy and PD-1/PD-L1 and CTLA-4 immune checkpoint inhibitors have demonstrated the greatest clinical efficacy, improving overall and progressionfree survival in a subset of patients with advanced melanoma. TCR and CARTcell approaches have high potential due to their specific recognition of tumor antigens; however, their use is limited by toxicity, poor infiltration of solid tumors, and the difficulty of target selection. NK and NKTcell therapies have favorable safety profiles but require further optimization to increase antitumor activity and cell persistence in vivo. Bcell and dendriticcellbased vaccine strategies can induce antigenspecific immune responses and are considered promising adjuvant treatments. The development of CARmacrophages is a new direction in cellular therapy for solid tumors.
An analysis of clinical trial data shows that combination approaches that combine cellular therapy with immune checkpoint inhibitors or standard treatments are the most effective. Despite progress, the issues of toxicity, durability of the antitumor response, and overcoming the immunosuppressive tumor microenvironment remain unresolved, highlighting the need for further research in personalized immunotherapy for melanoma.
Keywords
Full Text
ВВЕДЕНИЕ
По данным Национального института онкологии, в 2022 году меланома располагалась на 5-м месте по частоте возникновения новых случаев, и с каждым годом уровень заболеваемости растёт [1]. Воздействие ультрафиолетового (УФ) излучения является ключевым фактором риска возникновения меланомы, так как приводит к повреждению ДНК и последующей злокачественной трансформации меланоцитов базального слоя эпидермиса [2].
УФ-спектр условно разделяют на УФ-А-излучение (320–400 нм), УФ-В-излучение (280–320 нм) и УФ-С-излучение (100–280 нм) [2]. УФ-В-излучение вызывает ожоги кожных покровов, повреждая эпидермис, а также является ключевым этиологическим фактором развития злокачественного новообразования (ЗНО), развивающегося из меланоцитов. УФ-А-излучение проникает в дерму, не вызывая значительных повреждений эпидермиса [3]. Прямым следствием воздействия солнечного УФ-излучения на ДНК клеток эпидермиса является образование фотопродуктов ДНК: циклобутан-пиримидиновых димеров, пиримидин-6-4-пиримидона и свободных радикалов [4]. Воздействие УФ-излучения индуцирует кератиноциты, основные клетки эпидермиса, к продукции α-меланоцитостимулирующего гормона, который взаимодействует с рецептором MC1R (англ. melanocortin 1 receptor, MC1R) на меланоцитах и запускает процесс синтеза меланина, выполняющего защитную роль от УФ-излучения [5]. Низкая функциональная активность MC1R приводит к повышенной чувствительности клеток к УФ-повреждению и способствует увеличению числа мутаций в ДНК меланоцитов. При накоплении мутаций в чувствительных участках генома возможно развитие меланомы [5].
В последние годы проводится значительное количество клинических испытаний, направленных на разработку и внедрение новых терапевтических стратегий против меланомы [1–5]. В данном обзоре рассматриваются существующие формы иммунотерапии, их сильные и слабые стороны, а также результаты текущих клинических исследований. Современные иммунологические подходы к терапии меланомы включают ингибиторы контрольных точек иммунитета (ИКТ); вакцины; биологические препараты, такие как цитокины, стимулирующие факторы и интерфероны; а также адаптивную клеточную терапию. Таким образом, иммунотерапию условно подразделяют на пять основных направлений. Первое направление включает вакцинные стратегии, основанные на применении пептидов, цельных белков, вирусных векторов, ДНК-вакцин и дендритных клеток. Ко второму относятся ИКТ, в частности антитела (АТ) к CTLA-4 и к PD-1/PD-L1. Третье направление представлено клеточными методами терапии, включающими лимфокин-активированные киллерные клетки, опухоль-инфильтрирующие лимфоциты (ОИЛ) и другие специализированные популяции лимфоцитов. Четвёртую категорию составляют биологические агенты, такие как цитокины, интерфероны и гранулоцитарно-моноцитарный колониестимулирующий фактор. Пятое направление включает онколитические вирусы, рассматриваемые как сравнительно новый подход в лечении ЗНО.
МЕЛАНОМА
Терапия на основе Т-клеток (адоптивная клеточная терапия)
Адоптивная клеточная терапия представляет собой разновидность иммунотерапии онкологических заболеваний, при которой используются Т-лимфоциты, способные распознавать и уничтожать опухолевые клетки, в том числе после генетической модификации трансформации [6]. В настоящее время различают несколько основных подходов на основе Т-клеток, отличающихся механизмами действия: терапия с использованием ОИЛ, генетически модифицированных CAR T-клеток (англ. chimeric antigen receptor, CAR), Т-клеточных рецепторов (англ. T-cell receptor-based therapy, TCR) и NKT-клеток (англ. natural killer T-cells, NKT) (рис. 1).
Рис. 1. Современные подходы к клеточной иммунотерапии меланомы: a — терапия на основе NK-клеток; b — терапия на основе B-клеток; c — терапия на основе макрофагов; d — терапия на основе Т-клеток; e — терапия на основе дендритных клеток. АТ — антитело; CAR-T-клетки — Т-клетки с химерным рецептором антигена.
Fig. 1. Current approaches to cellular immunotherapy for melanoma. a, NK cellbased therapy; b, Bcellbased therapy; c, macrophagebased therapy; d, Tcellbased therapy; e, dendritic cellbased therapy.
Терапия с использованием опухоль-инфильтрирующих лимфоцитов
Терапия с использованием ОИЛ относится к методам иммунотерапии, при которой клетки выделяют из биопсийного материала опухоли [6]. Полученные ОИЛ культивируют in vitro в присутствии интерлейкина-2 (ИЛ), который усиливает противоопухолевый иммунный ответ, стимулируя пролиферацию CD4+ Т-лимфоцитов и их дифференцировку в Т-хелперы [7]. Исследования указывают на то, что ИЛ-2 способен усиливать противоопухолевую активность CD8+ T-клеток и цитолитическую функцию NK-клеток [8]. Полученную клеточную вакцину вводят пациенту [6]. Клетки, инфильтрирующие опухоль, представляют собой поликлональную популяцию, которая содержит такие клетки, как CD20+ B-клетки, CD3+, CD4+ и CD8+ Т-клетки и FOXP3+ регуляторные Т-клетки, прогностическая роль которых исследуется при меланоме.
В апреле 2021 г. препарат ITIL-168[φ] получил от Управления по санитарному надзору за качеством пищевых продуктов и медикаментов США (англ. the United States Food and Drug Administration, FDA) статус орфанного лекарственного средства для лечения меланомы стадий IIb–IV [9]. В рамках ежегодного собрания Американской ассоциации исследований рака (2021) были представлены данные о лечении 21 пациента ITIL-168 в сочетании с циклофосфамидом и флударабином [9]. У 19% пациентов был отмечен полный ответ, а также частичный ответ (ЧО) у 48% пациентов. Однако в декабре 2022 г. компания Instil Bio приняла решение прекратить разработку ITIL-168 и сосредоточиться на других программах, включая ITIL-306. В настоящее время данный препарат находится на стадии доклинической оценки производственных возможностей.
В июле 2022 г. FDA выдало компании Obsidian Therapeutics разрешение на начало I фазы клинического исследования препарата OBX-115 [NCT05470283]. Особенностью данного препарата является экспрессия мембраносвязывающего рецептора ИЛ-15 в ОИЛ, что исключает необходимость применения ИЛ-2, традиционно используемого в подобных терапевтических протоколах.
Одним из ключевых преимуществ терапии ОИЛ является возможность её применения у пациентов с терминальной стадией онкологического заболевания, уже прошедших другие виды противоопухолевого лечения [10]. Однако стоит отметить, что развитие побочных эффектов при терапии ОИЛ в значительной степени обусловлено сопутствующим применением ИЛ-2 и химиотерапии [10]. В клинических испытаниях были описаны нежелательные явления третьей степени и выше.
На сегодняшний день проводятся 95 клинических исследований с использованием терапии опухоль-инфильтрирующими лимфоцитами (TIL) меланомы, среди которых 31 уже завершено и 27 имеют результаты. Результаты клинических исследований, включающих использование клеточной терапии и комбинированных методов лечения меланомы, представлены в табл. 1.
Таблица 1. Результаты клинических испытаний клеточной иммунотерапии меланомы
Table 1. Results of clinical trials of cell immunotherapy for melanoma
Лекарственное средство | Участники исследования | Эффективность, % | Код исследования/источник | |||
Терапия ОИЛ | ||||||
ИЛ-2; циклофосфамид; флударабин; тотальное облучение тела 1200 cГр; ОИЛ | 26 (18 — не получавшие ранее ИЛ-2; | ПО — 38,88; НЯ — 100 | NCT00314106 [11] | |||
8 — получавшие ранее ИЛ-2) | ПО — 37,5; НЯ — 100 | |||||
Алдеслейкин; CD8+ ОИЛ | 12 (7, получавшие Альдеслейкин) | ПО — 0; ЧО — 14,28; ПЗ — 85,71; СЗ — 0; НЯ — 100 | NCT01118091 [12] | |||
12 (5, получавшие адоптивную клеточную терапию) | ПО — 0; ЧО — 20; ПЗ — 80; СЗ — 0; НЯ — 100 | |||||
Вемурафениб; лимфодеплетирующая химиотерапия; ОИЗ; ИЛ-2 | 12 | ОО — 75,0; ОВ — 100 (медиана 28,8 мес); БПЗ — 100 (медиана 4,8 мес); НЯ — 33,33 ЛИ — 58,33 | NCT02354690 [13] | |||
Алдеслейкин; флударабин; циклофосфамид; пембролизумаб; ОИЛ | 33 | НЯ — 48,5; ОВ — 96,9 (медиана 17,5 мес); ЛИ — 66,6; БПЗ — 96,9 (медиана 3 мес) | NCT01993719 [14] | |||
Алдеслейкин; циклофосфамид; флударабин; ОИЛ | 10 | ПО — 20,0; ЧО — 20,0; ПЗ — 20,0; СЗ — 40,0; НЯ — 100,0; ЛИ — 10,0 | NCT01807182 [15] | |||
Циклофосфамид; флударабин; ОИЛ; ИЛ-2; пэгинтерферон альфа-2b | 12 | НЯ — 100,0; ОО — 18,2; ОВ — 91,6 (медиана 11,75 мес); БПЗ — 91,6 (медиана 2,8 мес); ЛИ — 66,67 | NCT02379195 [13] | |||
Алдеслейкин; генетически модифицированные ОИЛ-CXCR2; циклофосфамид; флударабин | 8 | НЯ — 100; ЛИ — 12,5 | NCT01740557 [15]] | |||
Алдеслейкин; циклофосфамид; пембролизумаб; ОИЛ | 16 (1-я группа: 8 — высокая доза ИЛ-2; 2-я группа: 8 — низкая доза ИЛ-2) | 1-я группа | 2-я группа | NCT02500576 [16] | ||
ЧО — 14,3; СЗ — 28,6; ПЗ — 42,9; ОВ — 87,5 (9,7 мес); БПЗ — 87,5 (28,6 мес); НЯ — 100; ЛИ — 25 | ЧО — 14,3; СЗ — 14,3; ПЗ — 71,4; ОВ — 87,5 (8,2 мес); БПЗ — 87,5 (14,3 мес); НЯ — 100; ЛИ — 12,5 | |||||
TCR-терапия | ||||||
TCR-T-клетки с рецептором F5, направленным против MART-1, и ДК, загруженные пептидом MART-1 | 14 | ОВ — 100,0; НЯ — 35,71; ЛИ — 100,0 | NCT00910650 [17] | |||
Анти-NY ESO-1 TCR генно-модифицированных лимфоцитов периферической крови (Anti-NY-ESO-1 TCR PBL); ALVAC ESO1; циклофосфамид; флударабин; алдеслейкин | 45 (1-я группа (17): Anti-NY-ESO-1 TCR PBL + IL-2 меланома/почечно-клеточная карцинома; 2-я группа (16): Anti-NY-ESO-1 TCR PBL+IL-2 др. карциномы; 3-я группа (7): TCR PBL+ALVAC ESO1+IL-2 Меланома/почечно-клеточная карцинома; 4-я группа (5): ESO1 TCR PBL+ALVAC ESO1+IL2 др. карциномы) | 1-я группа 1 | 2-я группа | 3-я группа | 4-я группа | NCT00670748 [18] |
ПО — 17,6; ЧО — 35,3; ПЗ — 41,2; СЗ — 0,0; НЯ — 100,0; ЛИ — 0,0 | ПО — 6,3; ЧО — 43,8; ПЗ — 43,8; СЗ — 0,0; НЯ — 100,0; ЛИ — 0,0 | ПО — 14,3; ЧО — 14,3; ПЗ — 57,1; СЗ — 0,0; НЯ — 100,0; ЛИ — 14,29 | ПО — 0,0; ЧО — 60,0; ПЗ — 40,0; СЗ — 0,0; НЯ — 100,0; ЛИ — 0,0 | |||
Anti-NY ESO-1 mTCR PBL; циклофосфамид; флударабин; алдеслейкин | 11 | НЯ — 100,0; ЛИ — 72,73 | NCT01967823 [19] | |||
Тебентафусп[φ] (IMCgp100) | 146 [фаза 1 повышение дозы (19), фаза 2 расширение дозы (127)] | Фаза 1 | Фаза 2 | NCT02570308 [20] | ||
ОО — 100,0 (медиана 15,8 мес) БПЗ — 100,0 (медиана 7,4 мес) ОВ — 100,0 (29,6 мес) ЛИ — 73,7 | ОО — 100,0 (медиана 4,7 мес) БПЗ — 100,0 (медиана 2,8 мес) ОВ — 100,0 (16,8 мес) ЛИ — 54,33 | |||||
CAR T-клеточная терапия | ||||||
Анти-VEGFR2-CAR CD8+ Т-клетки периферической крови; циклофосфамид; алдеслейкин; флударабин | 24 | Клиническое испытание прекращено (отсутствие объективного ответа); НЯ — 100,0 | NCT01218867 [21] | |||
NK-терапия | ||||||
FT500; ниволумаб; пембролизумаб; атезолизумаб; циклофосфамид; флударабин; ИЛ-2 | 37 | ОО — 24; ЛИ — <3,0 | NCT03841110 [22] | |||
Аутологичные NK-клетки; лимфодеплетирующая химиотерапия | 8 | Отсутствие клинического ответа | [23] | |||
B-клеточная терапия | ||||||
Вакцина на основе В-клеток; химиотерапия; иммунотерапия; ИФН-α и/или ИЛ-2; лучевая терапия | 16 | ПО — 6,0; ЧО — 6,0; СЗ — 31,0; НЯ — 88,0 | [24] | |||
Терапия ИКТ | ||||||
Ниволумаб; ипилимумаб | 533 | ОВ — 63,0; ПЗ — 28,0; НЯ — 37,7; ЛИ — 4,8 | NCT02599402 [25] | |||
Группы: 1-я — пембромбролизумаб[φ] (2 мг/кг) (180); 2-я — пембромбролизумаб (10 мг/кг) (181); 3-я — химиотерапия (карбоплатин + паклитаксел, монотерапия паклиом[φ], дакарбазин или темозоломид) (179); 4-я — химиотерапия — пембролизумаб (2 мг/кг) (53); 5-я — химиотерапия — пембролизумаб (10 мг/кг) (45) | 540 — всего участников, группы: 1-я — 180 2-я — 181 3-я — 179 4-я — 53 5-я — 45 | 1-я группа: ОВ — 100 (медиана — 13,4 мес); ЛИ — 77,2; НЯ — 96.6; 2-я группа: ОВ — 100 (медиана 14,7 мес); ЛИ — 71,2; НЯ — 100; 3-я группа: ОВ — 100 (медиана 11,0 мес); ЛИ — 39,6; НЯ — 98.1; 4-я группа: ЛИ — 66,0; НЯ — 100; 5-я группа: ЛИ — 82,2; НЯ — 100 | NCT01704287 [26] | |||
Терапия на основе ДК | ||||||
AdVTMM2-трансдуцированные ДК; ИФН | 35 | ОО — 29,0; ПО — 12; НЯ — 51,0; БПЗ — 36,36 | NCT01622933 [27] | |||
Рекомбинантный CD40-L; аутологичные ДК | 62 | ОВ — 19,0 | NCT00053391 [28] | |||
Вакцина на основе внеклеточных везикул, выделенных из ДК | 15 | ОО — 50,0 | [29] | |||
ДК, загруженные лизатом опухолевых клеток; плацебо | 184 | ОВ (63,0 — экспериментальная группа; 35,0 — плацебо) | NCT02301611 [30] | |||
Терапия на основе макрофагов | ||||||
Опухоль-цитотоксические макрофаги, полученных из моноцитов, активированных ИФН-γ; GM-CSF | 12 | БПЗ — 100,0; СЗ — 8,3 | [31] | |||
Примечание. ОВ — общая выживаемость; ОО — объективный ответ; ПО — полный ответ; ЧО — частичный ответ; НЯ — нежелательные (побочные) явления; ПЗ — прогрессирующее течение заболевания; СЗ — стабильное течение заболевания; БПЗ — без признаков заболевания; ЛИ — летальный исход; ОИЛ — опухоль-инфильтрирующие лимфоциты; ИФН — интерферон; ИЛ — интерлейкин; ДК — дендритная клетка.
Терапия на основе Т-клеточных рецепторов (TCR-терапия)
TCR-терапия представляет собой метод, основанный на введении пациенту генетически модифицированных Т-клеток, экспрессирующих TCR, специфичный к определённым опухолевым антигенам (АГ). TCR представляет собой гетеродимер, состоящий из α- и β-цепей, ковалентно соединённых дисульфидной связью между остатками цистеина, расположенными в их константных областях [32]. Гетеродимеры TCR α/β формируют комплексы с субъединицами CD3ε/γ/δ/ζ, образуя функциональный TCR–CD3-комплекс. Эти рецепторы распознают короткие пептидные фрагменты — продукты ферментативного расщепления белков, представленные на поверхности клеток молекулами главного комплекса гистосовместимости (major histocompatibility complex, MHC). Взаимодействие TCR с молекулой MHC инициирует активацию Т-клеток посредством фосфорилирования тирозин-содержащих иммунорецепторных мотивов активации во внутриклеточных субъединицах комплекса CD3 [33], что приводит к увеличению пролиферативной активности, секреции цитокинов и цитолиза клеточных мишеней за счёт высвобождения перфорина и гранзима [34]. В рамках TCR-терапии Т-лимфоциты генетически модифицируют для экспрессии α- и β-цепей TCR, обеспечивающих антигенную специфичность.
Процесс получения генетически модифицированных Т-клеток включает несколько последовательных стадий:
- изоляцию Т-лимфоцитов из периферической крови пациента или опухолевого биоптата [35];
- активацию и амплифицикацию in vitro;
- генетическую модификацию с использованием лентивирусных или ретровирусных векторов, которые обеспечивают экспрессию специфического TCR [36];
- дополнительную амплификацию клеток in vitro, контроль качества полученных TCR-T-клеток и введение пациенту [35].
Мишенями TCR-T-клеток в терапии меланомы являются несколько опухолевых АГ:
- гликопротеин gp100, карциноэмбриональный АГ, характерный для колоректального рака;
- АГ1 меланомы, распознаваемый Т-клетками (англ. melanoma-associated antigen recognized by T cells, MART-1), специфичный для меланомы;
- ассоциированный с меланомой АГ семейства А3 (англ. melanoma antigen family A3, MAGE-A3), экспрессируемый при меланоме и множественной миеломе;
- АГ1 плоскоклеточной карциномы пищевода (англ. New York esophageal squamous cell carcinoma 1, NY-ESO-1), связанный с меланомой и синовиальной саркомой [37].
На сегодняшний день относительно безопасным мишеневым АГ считается NY-ESO-1, так как терапия анти-NY-ESO-1 TCR-T-клетками продемонстрировала клиническую эффективность [38].
Главное преимущество данной терапии заключается в том, что внутриклеточные белки могут быть представлены на молекулах MHC, что позволяет TCR-T-клетки нацеливаться практически на любой опухолеспецифический или опухолеассоциированный внутриклеточный АГ [35].
Первым препаратом на основе TCR-терапии ювенильной меланомы, одобренным FDA в январе 2022 г., стал тебентафусп[φ] (IMCgp100). Препарат представляет собой растворимый HLA-A*02:01-рестриктированный Т-клеточного рецептор, специфичный к пептиду гликопротеина gp100 (YLEPGPVTA) и связанный с одиночным анти-CD3-рецептором [39]. В настоящее время проводится более 50 клинических исследований с применением TCR-модифицированных Т-клеток при терапии меланомы, из которых 23 уже завершены и имеют опубликованные результаты.
Терапия на основе CAR-T-клеток
CAR-T-клеточная терапия основана на использовании CAR, обеспечивающих Т-клеткам возможность избирательно распознавать и уничтожать клетки, экспрессирующие специфические АГ. Взаимодействие CAR с АГ-мишенями происходит независимо от молекул MHC, что приводит к интенсивной активации Т-клеток и индукции выраженного противоопухолевого иммунного ответа [40]. В отличие от TCR-терапии спектр белковых АГ, доступных для CAR-T-клеточной терапии, более ограничен. В ходе доклинических исследований были идентифицированы потенциальные антигенные мишени, включая CD16, CD126, CD70, B7-H3 (CD276), эпидермальный фактор роста 2, рецептор 2 сосудистого эндотелиального фактора роста (англ. vascular endothelial growth factor receptor 2, VEGFR2), комплекс gp100/человеческий лейкоцитарный АГ А2, хондроитинсульфат протеогликан 4, дисиалоганглиозид GD2 и GD3 [41].
Процесс создания CAR-T-клеток включает несколько последовательных стадий. Сначала Т-клетки выделяют из периферической крови пациентов с ЗНО. Затем проводят их генетическую модификацию для экспрессии CAR, что позволяет клеткам распознавать опухолевые АГ. После этого модифицированные клетки культивируют in vitro и стимулируют цитокинами для получения достаточного количества CAR-T-клеток. На заключительном этапе клетки вводят пациенту в соответствующей дозе [42].
Побочные эффекты CAR-T-клеточной терапии в большинстве случаев относятся к 1–2-м степеням тяжести, основным из которых является развитие гиперцитокинемии [43]. Высокая аффинность CAR-T-клеток приводит к быстрому высвобождению большого количества цитокинов, таких как фактор некроза опухоли-α (англ. tumor necrosis factor, TNF-α), ИЛ-1, ИЛ-2, ИЛ-6, интерферон-α (ИФН-α) и ИФН-γ, что может вызывать острую дыхательную и полиорганную недостаточность [41, 43]. Генетическая модификация обеспечивает экспрессию на Т-клетках антигенных рецепторов, способных избирательно распознавать опухолевые клетки по специфическим АГ, представленным на их поверхности [35]. Однако такие АГ могут также экспрессироваться в нормальных тканевых клетках, что приводит к их повреждению [35].
Первым препаратом CAR-T-клеточной терапии, одобренным FDA в 2017 году для лечения острого лимфобластного лейкоза, стал тисагенлеклейцел (KYMRIAH). В 2023 году препарат был зарегистрирован в России для лечения острого лимфобластного лейкоза и рецидивирующей диффузной В-клеточной лимфомы [44].
В настоящее время проводится 16 клинических исследований терапии меланомы на основе CAR T-клеток, из которых только одно имеет опубликованные результаты [NCT01218867]. Данное исследование было прекращено в связи с отсутствием наблюдаемого объективного ответа.
Терапия на основе NKT-клеток
NKT-клетки представляют собой особую субпопуляцию Т-лимфоцитов, которая сходна с классическими Т-клетками по развитию в тимусе и экспрессии TCR. Их отличительной особенностью является способность TCR распознавать липидные АГ, представленные молекулой CD1d — структурным аналогом MHC I, что приводит к быстрому эффекторному ответу с продукцией широкого спектра цитокинов и хемокинов1. NKT-клетки подразделяются на два типа: инвариантные, несущие инвариантную α-цепь TCR в сочетании с вариабельной β-цепью, и вариантные, у которых инвариантная α-цепь отсутствует1.
Проводится два клинических испытания терапии меланомы с использованием NKT-клеток — NCT02619058 и NCT02619058, — которые завершены, но не имеют опубликованных результатов. В 2017 году проведена I фаза клинических испытаний терапии меланомы инвариантными NKT-клетками [45]. Девяти пациентам вводили инфузии инвариантных NKT-клеток, которые были выделены после проведения лейкафереза. Медиана наблюдения пациентов составила 63 (53–85) мес. В ходе терапии летальные исходы были зафиксированы у трёх пациентов. У трёх других прогрессирование заболевания не наблюдалось на протяжении 53, 60 и 65 мес. Ещё трое больных продолжали лечение и оставались живы через 61, 81 и 85 мес. Терапия сопровождалась токсичностью преимущественно I–II степени [45].
ТЕРАПИЯ НА ОСНОВЕ В-КЛЕТОК
В-клетки участвуют в адаптивном иммунном ответе как антиген-презентирующие и АТ-секретирующие клетки, осуществляя как прямую, так и перекрёстную презентацию АГ. В Т-клеточно-зависимом АГ-индуцированном гуморальном иммунном ответе В-клетки распознают и поглощают АГ посредством В-клеточного рецептора (англ. B-cell receptor, BCR). После протеолиза антигенного пептида в лизосомах он представляется на молекулах MHC II CD4⁺ Т-клеткам, с последующей активацией CD8⁺ Т-клеток [46]. Интернализация АГ, опосредованная BCR, может происходить через несколько механизмов, включая клатрин-опосредованный, эндофилин-опосредованный и кавеолин-зависимый эндоцитоз [47]. В-клетки экспрессируют клонально специфичный BCR, что позволяет им эффективно захватывать АГ даже в низких концентрациях, в отличие от других профессиональных антиген-презентирующих клеток, которым для активации и презентации требуется значительно большее количество АГ.
Способность В-клеток продуцировать АТ играет двойную роль в противоопухолевом иммунном ответе. После распознавания неоантигена В-клетки активируются и дифференцируются по двум направлениям — в короткоживущие плазмобласты, а также в плазматические клетки и В-клетки памяти, обладающие неоантиген-специфичностью [46]. Синтезированные АТ характеризуются высокой аффинностью к рецепторам Fcγ и неоантигенам клеток-мишеней, индуцируя антителозависимую клеточную цитотоксичность, антителозависимый клеточный фагоцитоз и комплемент-зависимую цитотоксичность, что представляет собой ключевой механизм действия иммунобиологических препаратов в онкологической терапии [46].
Существует множество подходов иммунотерапии на основе В-клеток [48]. Ряд препаратов, таких как ипилимумаб, ниволумаб и пембролизумаб, являются моноклональными АТ (моАТ), одобренными FDA для лечения метастатической меланомы. Эти препараты демонстрируют высокую частоту ответов и низкую частоту рецидивов [49]. За счёт высокой специфичности терапия моАТ имеет широкий спектр показаний к лечению онкологических заболеваний. С другой стороны, использование моАТ ограничено их стоимостью. Кроме того, из-за большого размера молекулы моАТ хуже проникают и распределяются в строме опухолевой ткани, особенно при локализации в костях и головном мозге. Это создаёт дополнительный барьер для доступа к опухолевым клеткам и их внутренним структурам. В результате действие таких препаратов реализуется преимущественно посредством связывания с внеклеточными мишенями, что снижает эффективность терапии [50].
Одним из подходов В-клеточной терапии является активация цитотоксических Т-клеток. Лигирование CD40 с его лигандом CD40L индуцирует экспрессию костимулирующих молекул и цитокинов, в результате чего CD40-активированные В-клетки приобретают способность активировать наивные Т-клетки и Т-клетки памяти [51]. Кроме того, показано, что такие В-клетки устойчивы к иммуносупрессивному микроокружению и способны эффективно мигрировать во вторичные лимфоидные органы после введения in vivo, где инициируют Т-клеточные ответы [52]. Потенциал CD40-активированных В-клеток был подтверждён in vivo на ксенографтной модели меланомы линии B16-F10 у мышей [53].
Альтернативным подходом В-клеточной терапии меланомы является ингибирование активности В-клеток. Изначально АТ к CD20 были разработаны для лечения аутоиммунных заболеваний и В-клеточных лимфом [54]. Впоследствии было показано, что их можно использовать для истощения В-клеток в солидных опухолях. Применение анти-CD20-АТ у групп пациентов с меланомой сопровождалось улучшением течения заболевания [54].
В клиническом испытании применяли гибридную клеточную вакцину, полученную путём слияния аутологичных опухолевых клеток с активированными аллогенными В-клетками из периферической крови здоровых доноров. Полученные гибридные клетки экспрессировали молекулы MHCI, ассоциированные с опухолью пептиды, а также аллогенные MHC молекулы. В исследовании принимали участие 16 человек, результатами стали: полный ответ — у 6% пациентов, ЧО — у 6% и у 31% наблюдалось стабильное течение заболевания. У 88% пациентов фиксировались нежелательные побочные явления (НЯ), не превышающие I и II степени токсичности [24].
Терапия, основанная на использовании В-клеток, обладает как преимуществами, так и рядом ограничений. В частности, АТ могут образовывать циркулирующие иммунные комплексы, которые взаимодействуют с Fcγ-рецепторами иммуносупрессивных миелоидных клеток и стимулируют ангиогенез. Важным аспектом также является учёт различных популяций В-клеток и их влияния на прогрессирование опухоли [55]. Ещё одной проблемой является наличие аутоантигенов, экспрессирующихся как на опухолевых, так и на нормальных клетках. Нацеливание на такие АГ может приводить к развитию токсических побочных эффектов [55].
Ингибиторы контрольных точек
Формируя иммуносупрессивное МО опухолевые клетки способны уклоняться от иммунного ответа, модифицируя экспрессию поверхностных АГ и тем самым избегая распознавания и элиминации лимфоцитами. Основным механизмом подавления иммунного ответа опухолевыми клетками является повышенная экспрессия лигандов, способных связываться с ингибирующими рецепторами Т-клеток [56]. Эти лиганды также известны как ИКТ, которые выполняют функцию предотвращения развития аутоиммунитета. ИКТ представляют собой различные классы моАТ, которые ингибируют взаимодействие рецептор-лиганд и деактивируют ИКТ (рис. 2) [57]. Данный вид терапии усиливает противоопухолевый иммунный ответ путём нацеливания на иммунологические рецепторы на поверхности Т-клеток.
Рис. 2. Механизмы действия ингибиторов контрольных точек. ДК — дендритная клетка.
Fig. 2. Mechanisms of action of checkpoint inhibitors.
К числу наиболее изученных и широко используемых в терапии онкологических заболеваний мишеней для АТ, нацеленных на ингибиторные иммунные рецепторы, относятся цитотоксический Т-лимфоцитарный белок 4 (англ. cytotoxic T-lymphocyte-associated protein 4, CTLA-4), белок 1 программируемой клеточной гибели (англ. programmed cell death 1, PD-1) и его лиганд PD-L1. Перечень одобренных FDA препаратов ИКТ и показания к их применению приведены в табл. 2.
Таблица 2. Показания к применению ингибиторов контрольных точек, одобренных FDA, при онкологических заболеваниях
Table 2. Indications for FDA-approved checkpoint inhibitors in cancer
Препарат | Показания |
Мишень: CTLA-4 | |
Ипилимумаб | Меланома (отдельно/в комбинации с ниволумабом), колоректальный рак, (в комбинации с ниволумабом), гепатоцеллюлярная карцинома (в комбинации с ниволумабом), мезотелиома (в комбинации с ниволумабом), НМРЛ (в комбинации с ниволумабом), почечно-клеточная карцинома (в комбинации с ниволумабом) |
Мишень: PD-1 | |
Ниволумаб | Меланома (один/в комбинации с ипилимумабом), колоректальный рак (один/в комбинации с ипилимумабом), плоскоклеточный рак пищевода, печёночно-клеточный рак (один/в комбинации с ипилимумабом), лимфома Ходжкина, плоскоклеточный рак головы и шеи, мезотелиома (в комбинации с ипилимумабом), почечно-клеточная карцинома (один/в комбинации с ипилимумабом), уротелиальная карцинома |
Пембролизумаб | Меланома, рак молочной железы, рак шейки матки, колоректальный рак, плоскоклеточный рак кожи, рак эндометрия, рак пищевода, рак желудка, печёночно-клеточная карцинома, лимфома Ходжкина, плоскоклеточный рак головы и шеи, мезотелиома, карцинома Меркеля, НМРЛ, диффузная В-крупноклеточная лимфома, почечно-клеточная карцинома, мелкоклеточный рак лёгкого, уротелиальная карцинома |
Цемиплимаб | Базальноклеточная карцинома, плоскоклеточный рак кожи, НМРЛ |
Мишень: PD-L1 | |
Авелумаб | Карцинома Меркеля, печёночно-клеточная карцинома, уротелиальная карцинома |
Дурвалумаб | НМРЛ, мелкоклеточный рак лёгкого, уротелиальная карцинома |
Атезолизумаб | Меланома, рак молочной железы, печеночно-клеточная карцинома, НМРЛ, мелкоклеточный рак лёгких, уротелиальная карцинома |
Примечание. НМРЛ — немелкоклеточный рак лёгкого.
CTLA-4 и PD-1 являются «контрольными точками» активации Т-клеток и относятся к коингибирующими рецепторами, однако их механизмы действия различаются. CTLA-4 ингибирует костимуляцию CD28 на конвенциональных Т-клетках за счёт связывания с его лигандами CD80 и/или CD86 на поверхности дендритных клеток и последующего трансэндоцитоза этих молекул [58].
CTLA-4 конститутивно экспрессируется на CD4+ Treg и индуцируется на активированных CD4⁺ и CD8⁺ конвенциональных Т-клетках. Treg снижают уровень костимуляции мигрирующих дендритных клеток, представляющих аутоантигены. У мышей с низкой экспрессией CTLA-4 развиваются выраженные аутоиммунные нарушения, что подтверждает необходимость этого рецептора для поддержания периферической толерантности к собственным АГ [58].
Препарат ипилимумаб был зарегистрирован в России в 2016 году для лечения пациентов с неоперабельной или метастатической меланомой при неэффективности либо непереносимости предшествующей терапии. В клинических исследованиях III фазы ипилимумаб продемонстрировал высокую эффективность, достоверно повышая общую выживаемость пациентов с диссеминированной формой меланомы [NCT01515189, NCT00094653] [59].
PD-1 является ингибиторным рецептором, выполняющим ключевую роль в регуляции Т-клеточных ответов посредством передачи сигнала, приводящего к программированному подавлению активности Т-клеток. Его лигандами являются PD-L1 и PD-L2. PD-L1 экспрессируется как опухолевыми, так и иммунными клетками и служит важным биомаркёром для прогнозирования ответа на терапию АТ против PD-1/PD-L1 у пациентов с различными типами ЗНО [60]. Взаимодействие PD-1 с PD-L1 приводит к снижению секреции цитокинов, таких как ИЛ-2, ИФН-γ и TNF-α, а также к уменьшению пролиферации иммунных клеток.
Ниволумаб был зарегистрирован в России в 2016 году. Показания к его применению включают лечение неоперабельной или метастатической меланомы, неоперабельного или метастатического немелкоклеточного рака лёгкого после прогрессирования на фоне химиотерапии, а также распространённого почечно-клеточного рака у пациентов старшей возрастной группы после предшествующей системной терапии. Основанием для регистрации стали результаты международных клинических исследований III фазы, подтвердивших эффективность ниволумаба [59, 61].
Пембролизумаб был зарегистрирован в России в 2016 году для лечения взрослых пациентов с неоперабельной или метастатической меланомой, а также пациентов с метастатическим немелкоклеточным раком лёгкого при наличии экспрессии PD-L1 опухолевыми клетками и прогрессировании заболевания во время или после терапии препаратами платины [59, 62]. Одним из способов повышения эффективности терапии ИКТ, как и при стандартных методах лечения ЗНО, являются стратегии комбинированного применения. При этом мишенями ИКТ, как правило, выступают не опухолевые, а иммунные клетки.
Была проведена оценка безопасности и эффективности комбинированного лечения релатлимабом[φ] — препаратом, одобренным FDA и нацеленным на ген активации лимфоцитов 3 (англ. lymphocyte activation gene 3, LAG-3), — в сочетании с ниволумабом у пациентов с прогрессирующей меланомой по сравнению с монотерапией ниволумабом [NCT03470922]. Общая выживаемость без прогрессирования составила 10,1 мес при применении комбинации релатлимаб + ниволумаб по сравнению с 4,6 мес при монотерапии ниволумабом.
Проводится ряд клинических испытаний для исследования и оценки терапевтического эффекта и безопасности действия ИКТ при меланоме, 75 из которых завершены и имеют опубликованные результаты.
Применение иммуноонкологической терапии ИКТ связано с развитием специфической иммуноопосредованной токсичности, или иммуноопосредованных нежелательных явлений (иоНЯ). Наряду с системными реакциями, такими как слабость, утомляемость и лихорадка, в клинической практике отмечается поражение практически всех органов и систем [63]. Ведущую роль в патогенезе токсичности играют Т-клетки, однако в процесс вовлечены и другие компоненты иммунного ответа [63]. Считается, что иоНЯ развиваются вследствие нарушения толерантности иммунной системы к собственным тканям, что частично обусловлено АГ-специфическим Т-клеточным ответом, продукцией аутоантител, а также участием В-клеток и цитокинов. Описана возможная взаимосвязь между аутоантителами и развитием иоНЯ. Тем не менее остаётся неясным, отличаются ли механизмы, лежащие в основе иоНЯ, от патогенетических механизмов аутоиммунных заболеваний [63].
ТЕРАПИЯ НА ОСНОВЕ NK-КЛЕТОК
NK-клетки (англ. natural killer cells) — эффекторные лимфоциты врождённой иммунной системы с цитотоксической активностью в отношении опухолевых клеток и клеток, инфицированных вирусами; они осуществляют лизис клеток-мишеней с высвобождением цитолитических гранул (перфорина и гранзима) либо индуцируют апоптоз через рецепторы смерти (внешний рецептор-опосредованный путь запуска) [64]. NK-клетки также выполняют регуляторную функцию, взаимодействуя с дендритными клетками (ДК), макрофагами, эндотелиальными клетками; после активации секретируют цитокины: ИФН-γ, TNF-α, гранулоцитарно-макрофагальный колониестимулирующий фактор (англ. granulocyte-macrophage colony-stimulating factor, GM-CSF) и хемокины (CCL1, CCL2, CCL3, CCL4, CCL5, CXCL8), — модулируя функции других врождённых и адаптивных иммунных клеток [64].
Помимо аутологической и аллогенной NK-клеточной терапии, исследователи разрабатывают новые подходы, направленные на повышение эффективности вакцин и создание на их основе инновационных вариантов иммунотерапии. К таким стратегиям относятся CAR-NK- и TCR-NK-клеточная терапия. Проведено исследование с использованием аутологичных NK-клеток для лечения пациентов с меланомой [23]. В исследовании семь пациентов получали инфузии NK-клеток после химиотерапии. Клинического эффекта не наблюдалось, что, по мнению авторов, обусловлено низкой экспрессией рецептора NKG2D — трансмембранного белка семейства рецепторов CD94/NKG2 лектинового типа — на персистирующих NK-клетках, необходимого для реализации их цитотоксической функции [23].
Проведена первая фаза клинического испытания с использованием клеточной линии NK92 [65]. В исследовании принимал участие один человек с меланомой, у которого после инфузии клинический эффект был минимальным, однако прогрессирование заболевания вскоре привело к летальному исходу [65]. Клиническое испытание NCT03841110 основано на терапии прогрессирующих солидных опухолей комбинацией NK-клеток, дифференцированных из индуцированных плюрипотентных стволовых клеток, и ИКТ (атезолизумаб или нивомулаб). По имеющимся данным, объективный ответ наблюдался у 24% пациентов и количество летальных случаев — менее чем у 3%.
Современные клинические исследования сосредоточены на разработке комбинированных вакцинных стратегий с участием NK-клеток. В рамках исследования NCT00720785 аутологичные NK-клетки применялись в комбинации с бортезомибом — ингибитором протеасом, способствующим повышению цитотоксической активности NK-клеток [66]. В 2022 году было инициировано исследование NCT05588453, в котором используются донорские NK-клетки с TGF-β-импринтингом в сочетании с темозоломидом. Данный подход направлен на уменьшение размеров опухоли у пациентов с меланомой IV стадии с метастазами в головной мозг.
Таким образом, терапия на основе NK-клеток является перспективным методом терапии онкологических заболеваний. Однако такие ограничения, как необходимость достижения клинической экспансии ex vivo, ограниченная персистенция in vivo, недостаточная инфильтрация солидных опухолей и иммуносупрессивное микроокружение, требуют дальнейших исследований для повышения эффективности данного адъювантного подхода при ЗНО.
ТЕРАПИЯ НА ОСНОВЕ ДЕНДРИТНЫХ КЛЕТОК
Дендритные клетки являются профессиональными антиген-презентирующими клетками за счёт способности захватывать и процессировать различные АГ для их дальнейшей презентации эффекторным клеткам. В свою очередь эффекторные клетки (например, Т-клетки) оказывают прямое или опосредованное супрессорное воздействие на патоген или отторжение опухоли. Благодаря этой способности возможно применение ДК для иммуннотерапии ЗНО.
Многообещающие результаты продемонстрировали данные доклинических исследований с использованием сгенерированных классических ДК и плазмацитоидных ДК в качестве иммунотерапии [67, 68].
Терапия на основе аутологичных ДК
Клиническое испытание I/II фазы NCT01278940, направленное на оценку вакцины из аутологичных дендритных клеток, трансфицированных опухолевой матричной РНК при меланоме IV стадии, продемонстрировало повышение выживаемости у пациентов с индуцированным иммунным ответом, причём этот показатель оказался выше ожидаемого. Многократное введение вакцины в течение ограниченного временного промежутка (13 доз за 10 мес) не сопровождалось развитием краткосрочной токсичности. Говоря о продолжительном противоопухолевом ответе, стоит упомянуть, что стабильное течение заболевания наблюдалось у 10% пациентов, ЧО был замечен только у 3% испытуемых, без признаков заболеваний у ещё 6%. У остальных 81% участников наблюдались признаки прогрессирующего течения заболевания.
В рамках клинического исследования NCT01622933 оценивалась эффективность АГ-инженерной дендритноклеточной вакцины, направленной на стимуляцию поликлонального CD8⁺- и CD4⁺-Т-клеточного ответа против трёх общих АГ меланомы. Тридцать пять реципиентов вакцины были случайным образом распределены на две группы: одна в течение одного месяца получала высокие дозы ИФН-α, другая — нет. Применение ИФН-α не оказало значимого влияния на иммунный и клинический ответ по сравнению с контролем. Среди пациентов с измеряемым заболеванием ЧО достигнут у 8%, стабильное течение заболевания отмечено у 33%, а прогрессирующее течение заболевания — у 59%. Из 11 пациентов, которым проводилось хирургическое лечение, четверо (36%) оставались без признаков заболеваний при среднем периоде наблюдения 3 года. У большинства вакцинированных пациентов наблюдалось усиление специфического CD8⁺- и CD4⁺-Т-клеточного ответа.
В рамках клинических испытаний ДК-вакцин фазы I/II у пациентов с метастатической меланомой кожи [NCT00053391] были получены стойкие вакцино-специфичные иммунные ответы. ДК получали из моноцитов и культивировали в присутствии TNF-α, ИЛ-1β, ИЛ-6 и простагландина E2, а затем загружали рестриктированными опухолевыми пептидами человеческого лейкоцитарного АГ серотипов А1 и А2, после чего вводили внутрикожно в высоких дозах в течение 2 лет. В результате ИФН-γ-продуцирующие CD4+ и литические полифункциональные CD8+ Т-клетки индуцировались de novo или усиливали своё действие у большинства пациентов. На момент публикации итоговый показатель общей выживаемости у пациентов с нерезектабельной метастатической меланомой составлял 19%, что аналогично данным для терапии ипилимумабом. Длительная ремиссия существенно коррелировала с выраженными реакциями в месте инъекции вакцины и наличием эозинофилии после первой серии введений, что позволяет предположить её связь с ДК-вакцинацией.
В 2024 году были опубликованы результаты завершения клинического испытания [NCT02993315], в ходе которого производилась оценка активной иммунизации пациентов, к которым применяли адъювантную вакцинотерапию с меланомой стадии IIIB и IIIC с использованием натуральных ДК, импульсно обработанных синтетическими пептидами.
В ряде клинических испытаний в качестве промежуточного/окончательного результата были отмечены безопасность применения ДК-вакцин [NCT04335890, NCT01946373, NCT01082198], формирование иммунного ответа [NCT01082198, NCT01331915, NCT00085397], увеличение безрецидивной выживаемости [NCT02993315, NCT02301611] и умеренная дозолимитирующая токсичность [NCT04335890, NCT01082198]. Кроме того, в 2025 году были опубликованы заключительные результаты исследования DENDRON-01 оценки клинической эффективности и безопасности применения аутологичной дендритно-клеточной вакцины CaTeVac у больных меланомой [69].
ТЕРАПИЯ НА ОСНОВЕ МАКРОФАГОВ
Макрофаги — гетерогенная популяция клеток врождённого иммунитета с высокой фагоцитарной активностью в отношении погибших клеток и патогенов; они участвуют в регуляции адаптивной иммунной системы и индукции воспалительного процесса [70].
На данный момент известно о существенно меньшем количестве клинических испытаний, связанных с терапией меланомы с помощью макрофагов. В недавнем исследовании авторы уделили особое внимание подходам к лечению меланомы через подавление или реполяризацию опухоль-ассоциированных макрофагов с помощью различных молекул агонистов и антагонистов рецепторов, блокаторов и активаторов сигнальных путей. Авторы обозначили, что опухоль-ассоциированные макрофаги способствуют неоангиогенезу, лимфангиогенезу и деградации внеклеточного матрикса [71]. Несмотря на обилие подходов, применяемых в описанных клинических испытаниях, в опубликованной статье не было информации о применении изолированных макрофагов против меланомы.
CAR-М терапия
Достижения CAR T-клеточной терапии послужили основанием для расширения исследований в направлении применения CAR совместно с иными клеточными типами. CAR-экспрессирующие клетки рассматриваются как основа клеточной иммунотерапии, позволяющей нацеливать иммунные клетки на опухоль-ассоциированные АГ и инициировать специфический противоопухолевый ответ [72]. Макрофаги, которые, в отличие от Т-клеток, могут проникать в опухоль, являются перспективными кандидатами для генно-инженерной модификации. Такие CAR-макрофаги (САR-M) способны инициировать АГ-специфический фагоцитоз, секрецию цитокинов и уничтожение мишеней, экспрессирующих АГ-мишень [73].
В настоящее время клинические исследования CAR-M-терапии меланомы отсутствуют, однако для ряда других ЗНО проводится испытание фазы I [NCT04660929]. Это первое исследование эффективности трансдуцированных аденовирусом аутологичных макрофагов, сконструированных таким образом, чтобы содержать CAR против рецептора 2 эпидермального фактора роста человека для нацеливания на солидные опухоли со сверхэкспрессией данного рецептора.
ЗАКЛЮЧЕНИЕ
Представленные в обзоре подходы клеточной иммунотерапии меланомы характеризуются значительным потенциалом, однако требуют дальнейшей проработки, включая снижение выраженности побочных эффектов и оптимизацию получения клеточных популяций. Одной из ключевых проблем остаётся обеспечение безопасности, что особенно актуально для ИКТ и CAR T-клеточной иммунотерапии. В то же время отдельные препараты уже получили одобрение FDA для проведения клинических испытаний и прошли регистрацию в России. Согласно результатам исследований, которые приведены в табл. 1 и 2, наибольший интерес представляют TIL-терапия и терапия с использованием ИКТ. Следует отметить, что данные подходы относятся к адъювантным стратегиям и применяются только после основного этапа противоопухолевого лечения.
ДОПОЛНИТЕЛЬНАЯ ИНФОРМАЦИЯ
Вклад авторов. Х.Ч.Б. — определение концепции, визуализация, написание черновика рукописи, пересмотр и редактирование рукописи; Г.А.В. — анализ данных, написание черновика рукописи; М.Ю.П. — визуализация, написание черновика рукописи, пересмотр и редактирование рукописи; Ф.И.Ю. — научное руководство, написание черновика рукописи, пересмотр и редактирование рукописи; К.К.В. — руководство исследованием, написание черновика рукописи, пересмотр и редактирование рукописи; В.В.В. — пересмотр и редактирование рукописи; Р.А.А. — администрирование проекта, написание черновика рукописи, пересмотр и редактирование рукописи; С.В.В. — администрирование проекта, написание черновика рукописи, пересмотр и редактирование рукописи. Все авторы одобрили рукопись (версию для публикации), а также согласились нести ответственность за все аспекты настоящей работы, гарантируют надлежащее рассмотрение и решение вопросов, связанных с точностью и добросовестностью любой её части.
Источники финансирования. Данная работа была выполнена при поддержке Программы стратегического академического лидерства Казанского федерального университета (ПРИОРИТЕТ-2030).
Раскрытие интересов. Авторы заявляют об отсутствии отношений, деятельности и интересов за последние три года, связанных с третьими лицами (коммерческими и некоммерческими), интересы которых могут быть затронуты содержанием статьи.
Оригинальность. При создании настоящей работы авторы не использовали ранее опубликованные сведения (текст, иллюстрации, данные).
Доступ к данным. Все данные, полученные в настоящем исследовании, доступны в статье.
Генеративный искусственный интеллект. При создании настоящей статьи технологии генеративного искусственного интеллекта не использовали.
Рассмотрение и рецензирование. Настоящая рукопись направлена в редакцию журнала в инициативном порядке. В рецензировании участвовали два внешних рецензента, член редакционной коллегии и научный редактор издания.
ADDITIONAL INFORMATION
Author contributions: Kh.Ch.B.: conceptualization, visualization, writing—original draft, writing—review & editing; G.A.V.: formal analysis, writing—original draft; M.Yu.P.: visualization, writing—original draft, writing—review & editing; F.I.Yu.: supervision, writing—original draft, writing—review & editing; K.K.V.: supervision, writing—original draft, writing—review & editing; V.V.V.: writing—review & editing; R.A.A.: project administration, writing—original draft, writing—review & editing; S.V.V.: project administration, writing—original draft, writing—review & editing. All the authors approved the version of the manuscript to be published and agreed to be accountable for all aspects of the work, ensuring that questions related to the accuracy or integrity of any part of the work are appropriately investigated and resolved.
Funding sources: This work was supported by the Strategic Academic Leadership Program of Kazan Federal University (PRIORITY–2030).
Disclosure of interests: The authors have no relationships, activities, or interests for the last three years related to for-profit or not-for-profit third parties whose interests may be affected by the content of the article.
Statement of originality: No previously obtained or published material (text, images, or data) was used in this study or article.
Data availability statement: All data obtained in this study are available in the article.
Generative AI: No generative artificial intelligence technologies were used to prepare this article.
Provenance and peer-review: This paper was submitted unsolicited and reviewed following the standard procedure. The peer-review process involved two external reviewers, a member of the Editorial Board, and the in-house science editor.
[φ] ЛС не зарегистрировано в РФ
1 Cellular immunotherapies for cancer | Irish Journal of Medical Science (1971–). Режим доступа: https://link.springer.com/article/10.1007/s11845-020-02264-w Дата обращения: 03.04.2025.
About the authors
Chulpan B. Kharisova
Kazan (Volga Region) Federal University
Email: harisovachulpan@gmail.com
ORCID iD: 0009-0001-0326-3450
SPIN-code: 7165-8591
Scopus Author ID: 58099614300
post-graduate student, junior research associate, OpenLab Gene and cell technologies
Russian Federation, KazanAnna V. Gorodilova
Kazan (Volga Region) Federal University
Email: anagorodilova@yandex.ru
ORCID iD: 0009-0005-5743-9692
SPIN-code: 5837-7564
Scopus Author ID: 58099760800
master’s student, junior research associate, OpenLab Gene and cell technologies
Russian Federation, KazanYuriy P. Mayasin
Kazan (Volga Region) Federal University
Email: mayasin_yuriy@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-5887-4590
SPIN-code: 4159-7252
Scopus Author ID: 58099904100
master’s student, junior research associate, OpenLab Gene and cell technologies
Russian Federation, KazanIvan Yu. Filin
Kazan (Volga Region) Federal University
Email: IvYFilin@kpfu.ru
ORCID iD: 0000-0002-3661-0527
SPIN-code: 7595-0257
Scopus Author ID: 57220960396
Cand. Sci. (Biology), senior research associate, OpenLab Gene and cell technologies
Russian Federation, KazanKristina V. Kitaeva
Kazan (Volga Region) Federal University
Email: KrVKitaeva@kpfu.ru
ORCID iD: 0000-0002-0704-8141
SPIN-code: 6937-6311
Cand. Sci. (Biology), Assistant Professor, Depart. of genetics; leading research associate, OpenLab Gene and cell technologies
Russian Federation, KazanVictor V. Valiullin
Kazan State Medical University
Email: valiullinvv@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-6030-6373
SPIN-code: 7170-4257
Dr. Sci. (Biology), Professor, Depart. of Histology, Cytology and Embryology
Russian Federation, KazanAlbert A. Rizvanov
Kazan (Volga Region) Federal University; Division of Medical and Biological Sciences, Academy of Sciences of the Republic of Tatarstan
Author for correspondence.
Email: rizvanov@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-9427-5739
SPIN-code: 7031-5996
Dr. Sci. (Biology), Professor, chief research associate, OpenLab Gene and cell technologies
Russian Federation, Kazan; KazanValeriya V. Solovyeva
Kazan (Volga Region) Federal University
Email: VaVSoloveva@kpfu.ru
ORCID iD: 0000-0002-8776-3662
SPIN-code: 8796-3760
Dr. Sci. (Biology), Assistant Professor, Depart. of genetics; chief research associate, OpenLab Gene and cell technologies
Russian Federation, KazanReferences
- Miller KD, Nogueira L, Devasia T, et al. Cancer treatment and survivorship statistics, 2022. CA Cancer J Clin. 2022;72(5):409–436. doi: 10.3322/caac.21731 EDN: WFLXED
- Jin SG, Padron F, Pfeifer GP. UVA Radiation, DNA Damage, and Melanoma. ACS Omega. 2022;7(37):32936–32948. doi: 10.1021/acsomega.2c04424 EDN: YIUWNU
- Sun X, Zhang N, Yin C, et al. Ultraviolet Radiation and Melanomagenesis: From Mechanism to Immunotherapy. Front Oncol. 2020;10:951. doi: 10.3389/fonc.2020.00951 EDN: ECGIKG
- Kciuk M, Marciniak B, Mojzych M, Kontek R. Focus on UV-Induced DNA Damage and Repair-Disease Relevance and Protective Strategies. Int J Mol Sci. 2020;21(19):7264. doi: 10.3390/ijms21197264 EDN: XGEYPM
- Davis LE, Shalin SC, Tackett AJ. Current state of melanoma diagnosis and treatment. Cancer Biol Ther. 2019;20(11):1366–1379. doi: 10.1080/15384047.2019.1640032 EDN: LRWWFJ
- Wang S, Sun J, Chen K, et al. Perspectives of tumor-infiltrating lymphocyte treatment in solid tumors. BMC Med. 2021;19(1):140. doi: 10.1186/s12916-021-02006-4 EDN: HUMCUM
- Wrangle JM, Patterson A, Johnson CB, et al. IL-2 and Beyond in Cancer Immunotherapy. J Interferon Cytokine Res. 2018;38(2):45–68. doi: 10.1089/jir.2017.0101
- Conlon KC, Miljkovic MD, Waldmann TA. Cytokines in the Treatment of Cancer. J Interferon Cytokine Res. 2019;39(1):6–21. doi: 10.1089/jir.2018.0019
- Pillai M, Jiang Y, Lorigan PC, et al. Clinical feasibility and treatment outcomes with nonselected autologous tumor-infiltrating lymphocyte therapy in patients with advanced cutaneous melanoma. Am J Cancer Res. 2022;12(8):3967–3984.
- Hopewell EL, Cox C, Pilon-Thomas S, Kelley LL. Tumor Infiltrating Lymphocytes Streamlining a Complex Manufacturing Process. Cytotherapy. 2019;21(3):307–314. doi: 10.1016/j.jcyt.2018.11.004
- Yao X, Ahmadzadeh M, Lu YC, et al. Levels of peripheral CD4(+)FoxP3(+) regulatory T cells are negatively associated with clinical response to adoptive immunotherapy of human cancer. Blood. 2012;119(24):5688–5696. doi: 10.1182/blood-2011-10-386482
- Jemal A, Siegel R, Ward E, et al. Cancer statistics, 2007. CA Cancer J Clin. 2007;57(1):43–66. doi: 10.3322/canjclin.57.1.43
- Borch TH, Andersen R, Ellebaek E, et al. Future role for adoptive T-cell therapy in checkpoint inhibitor-resistant metastatic melanoma. J Immunother Cancer. 2020;8(2):e000668. doi: 10.1136/jitc-2020-000668 EDN: AGEXIR
- Dudley ME, Yang JC, Sherry R, et al. Adoptive cell therapy for patients with metastatic melanoma: evaluation of intensive myeloablative chemoradiation preparative regimens. J Clin Oncol. 2008;26(32):5233–5239. doi: 10.1200/JCO.2008.16.5449
- Forget MA, Tavera RJ, Haymaker C, et al. A Novel Method to Generate and Expand Clinical-Grade, Genetically Modified, Tumor-Infiltrating Lymphocytes. Front Immunol. 2017;8:908. doi: 10.3389/fimmu.2017.00908
- Hasanov M, Kiany S, Forget MA, et al. Lymphodepletion, tumor-infiltrating lymphocytes, and high versus low dose IL-2 followed by pembrolizumab in patients with metastatic melanoma. Oncoimmunology. 2025;14(1):2546402. doi: 10.1080/2162402X.2025.2546402 EDN: CEVQHL
- Mehta A, Kim YJ, Robert L, et al. Immunotherapy Resistance by Inflammation-Induced Dedifferentiation. Cancer Discov. 2018;8(8):935–943. doi: 10.1158/2159-8290.CD-17-1178
- Zhao Y, Bennett AD, Zheng Z, et al. High-affinity TCRs generated by phage display provide CD4+ T cells with the ability to recognize and kill tumor cell lines. J Immunol. 2007;179(9):5845–5854. doi: 10.4049/jimmunol.179.9.5845
- Rosenberg SA, Yang JC, Sherry RM, et al. Durable complete responses in heavily pretreated patients with metastatic melanoma using T-cell transfer immunotherapy. Clin Cancer Res. 2011;17(13):4550–4557. doi: 10.1158/1078-0432.CCR-11-0116
- Carvajal RD, Butler MO, Shoushtari AN, et al. Clinical and molecular response to tebentafusp in previously treated patients with metastatic uveal melanoma: a phase 2 trial. Nat Med. 2022;28(11):2364–2373. doi: 10.1038/s41591-022-02015-7 EDN: ZEFPZX
- Zhu H, Blum RH, Bjordahl R, et al. Pluripotent stem cell-derived NK cells with high-affinity noncleavable CD16a mediate improved antitumor activity. Blood. 2020;135(6):399–410. doi: 10.1182/blood.2019000621 EDN: YOJYOV
- Dummer R, Corrie P, Gutzmer R, et al. First-Line, Fixed-Duration Nivolumab Plus Ipilimumab Followed by Nivolumab in Clinically Diverse Patient Populations With Unresectable Stage III or IV Melanoma: CheckMate 401. J Clin Oncol. 2023;41(23):3917–3929. doi: 10.1200/JCO.22.02199 EDN: XSGJHJ
- Parkhurst MR, Riley JP, Dudley ME, Rosenberg SA. Adoptive transfer of autologous natural killer cells leads to high levels of circulating natural killer cells but does not mediate tumor regression. Clin Cancer Res. 2011;17(19):6287–6297. doi: 10.1158/1078-0432.CCR-11-1347
- Trefzer U, Weingart G, Chen Y, et al. Hybrid cell vaccination for cancer immune therapy: first clinical trial with metastatic melanoma. Int J Cancer. 2000;85(5):618–626. doi: 10.1002/(sici)1097-0215(20000301)85:5
- Hamid O, Puzanov I, Dummer R, et al. Final analysis of a randomised trial comparing pembrolizumab versus investigator-choice chemotherapy for ipilimumab-refractory advanced melanoma. Eur J Cancer. 2017;86:37–45. doi: 10.1016/j.ejca.2017.07.022 EDN: YJSQVK
- Butterfield LH, Vujanovic L, Santos PM, et al. Multiple antigen-engineered DC vaccines with or without IFNα to promote antitumor immunity in melanoma. J Immunother Cancer. 2019;7(1):113. doi: 10.1186/s40425-019-0552-x
- Gross S, Erdmann M, Haendle I, et al. Twelve-year survival and immune correlates in dendritic cell-vaccinated melanoma patients. JCI Insight. 2017;2(8):e91438. doi: 10.1172/jci.insight.91438 EDN: YVZBUB
- Viaud S, Terme M, Flament C, et al. Dendritic cell-derived exosomes promote natural killer cell activation and proliferation: a role for NKG2D ligands and IL-15Ralpha. PLoS One. 2009;4(3):e4942. doi: 10.1371/journal.pone.0004942
- Vreeland TJ, Clifton GT, Hale DF, et al. A Phase IIb Randomized Controlled Trial of the TLPLDC Vaccine as Adjuvant Therapy After Surgical Resection of Stage III/IV Melanoma: A Primary Analysis. Ann Surg Oncol. 2021;28(11):6126–6137. doi: 10.1245/s10434-021-09709-1 EDN: PJXUSN
- Carpenter EL, Van Decar S, Adams AM, et al. Prospective, randomized, double-blind phase 2B trial of the TLPO and TLPLDC vaccines to prevent recurrence of resected stage III/IV melanoma: a prespecified 36-month analysis. J Immunother Cancer. 2023;11(8):e006665. doi: 10.1136/jitc-2023-006665
- Hennemann B, Rehm A, Kottke A, et al. Adoptive immunotherapy with tumor-cytotoxic macrophages derived from recombinant human granulocyte-macrophage colony-stimulating factor (rhuGM-CSF) mobilized peripheral blood monocytes. J Immunother. 1997;20(5):365–371. doi: 10.1097/00002371-199709000-00005
- Tsimberidou AM, Van Morris K, Vo HH, et al. T-cell receptor-based therapy: an innovative therapeutic approach for solid tumors. J Hematol Oncol. 2021;14(1):102. doi: 10.1186/s13045-021-01115-0 EDN: SNQTRW
- Smith-Garvin JE, Koretzky GA, Jordan MS. T cell activation. Annu Rev Immunol. 2009;27:591–619. doi: 10.1146/annurev.immunol.021908.132706
- Rath JA, Arber C. Engineering Strategies to Enhance TCR-Based Adoptive T Cell Therapy. Cells. 2020;9(6):1485. doi: 10.3390/cells9061485 EDN: ENRFRW
- Zhao L, Cao YJ. Engineered T Cell Therapy for Cancer in the Clinic. Front Immunol. 2019;10:2250. doi: 10.3389/fimmu.2019.02250 EDN: KDXSWA
- Ping Y, Liu C, Zhang Y. T-cell receptor-engineered T cells for cancer treatment: current status and future directions. Protein Cell. 2018;9(3):254–266. doi: 10.1007/s13238-016-0367-1
- Sun Y, Li F, Sonnemann H, et al. Evolution of CD8+ T Cell Receptor (TCR) Engineered Therapies for the Treatment of Cancer. Cells. 2021;10(9):2379. doi: 10.3390/cells10092379 EDN: XOUUCF
- Stadtmauer EA, Faitg TH, Lowther DE, et al. Long-term safety and activity of NY-ESO-1 SPEAR T cells after autologous stem cell transplant for myeloma. Blood Adv. 2019;3(13):2022–2034. doi: 10.1182/bloodadvances.2019000194
- Kaplon H, Chenoweth A, Crescioli S, Reichert JM. Antibodies to watch in 2022. MAbs. 2022;14(1):2014296. doi: 10.1080/19420862.2021.2014296 EDN: QBILXX
- Sterner RC, Sterner RM. CAR-T cell therapy: current limitations and potential strategies. Blood Cancer J. 2021;11(4):69. doi: 10.1038/s41408-021-00459-7 EDN: COPTYW
- Soltantoyeh T, Akbari B, Karimi A, et al. Chimeric Antigen Receptor (CAR) T Cell Therapy for Metastatic Melanoma: Challenges and Road Ahead. Cells. 2021;10(6):1450. doi: 10.3390/cells10061450 EDN: BGLLTI
- Sadelain M, Rivière I, Riddell S. Therapeutic T cell engineering. Nature. 2017;545(7655):423–431. doi: 10.1038/nature22395
- Neelapu SS, Tummala S, Kebriaei P, et al. Chimeric antigen receptor T-cell therapy - assessment and management of toxicities. Nat Rev Clin Oncol. 2018;15(1):47–62. doi: 10.1038/nrclinonc.2017.148 EDN: VCWJCG
- Valiullina AK, Zmievskaya EA, Ganeeva IA, et al. Evaluation of CAR-T Cells' Cytotoxicity against Modified Solid Tumor Cell Lines. Biomedicines. 2023;11(2):626. doi: 10.3390/biomedicines11020626 EDN: AVRQFI
- Hamid O, Puzanov I, Dummer R, et al. Final analysis of a randomised trial comparing pembrolizumab versus investigator-choice chemotherapy for ipilimumab-refractory advanced melanoma. Eur J Cancer. 2017;86:37–45. doi: 10.1016/j.ejca.2017.07.022 EDN: YJSQVK
- Tan R, Nie M, Long W. The role of B cells in cancer development. Front Oncol. 2022;12:958756. doi: 10.3389/fonc.2022.958756 EDN: MTKKVF
- McShane AN, Malinova D. The Ins and Outs of Antigen Uptake in B cells. Front Immunol. 2022;13:892169. doi: 10.3389/fimmu.2022.892169 EDN: HVMJZD
- Gupta SL, Khan N, Basu S, Soni V. B-Cell-Based Immunotherapy: A Promising New Alternative. Vaccines. 2022;10(6):879. doi: 10.3390/vaccines10060879 EDN: ZILSVT
- Bhandaru M, Rotte A. Monoclonal Antibodies for the Treatment of Melanoma: Present and Future Strategies. Methods Mol Biol. 2019;1904:83–108. doi: 10.1007/978-1-4939-8958-4_4 EDN: FZLALJ
- Kravchenko AS. Biological therapy of melanoma. Consilium Medicum. 2020;22(7):29–32. doi: 10.26442/20751753.2020.7.200297 EDN: EWWWFK
- Largeot A, Pagano G, Gonder S, et al. The B-side of Cancer Immunity: The Underrated Tune. Cells. 2019;8(5):449. doi: 10.3390/cells8050449 EDN: DSYXAC
- Gonzalez NK, Wennhold K, Balkow S, et al. In vitro and in vivo imaging of initial B-T-cell interactions in the setting of B-cell based cancer immunotherapy. Oncoimmunology. 2015;4(9):e1038684. doi: 10.1080/2162402X.2015.1038684
- Wennhold K, Weber TM, Klein-Gonzalez N, et al. CD40-activated B cells induce anti-tumor immunity in vivo. Oncotarget. 2017;8(17):27740–27753. doi: 10.18632/oncotarget.7720
- Winkler JK, Schiller M, Bender C, et al. Rituximab as a therapeutic option for patients with advanced melanoma. Cancer Immunol Immunother. 2018;67(6):917–924. doi: 10.1007/s00262-018-2145-9 EDN: FJPEPO
- Fremd C, Schuetz F, Sohn C, et al. B cell-regulated immune responses in tumor models and cancer patients. Oncoimmunology. 2013;2(7):e25443. doi: 10.4161/onci.25443 EDN: EFBHLT
- Franzin R, Netti GS, Spadaccino F, et al. The Use of Immune Checkpoint Inhibitors in Oncology and the Occurrence of AKI: Where Do We Stand? Front Immunol. 2020;11:574271. doi: 10.3389/fimmu.2020.574271 EDN: MDUFBK
- Bogolyubova AV, Efimov GA, Drutskaya MS, Nedospasov SA. Cancer immunotherapy based on the blockade of immune checkpoints. Medical Immunology (Russia). 2015;17(5):395–406. doi: 10.15789/1563-0625-2015-5-395-406 EDN: UKEDOD
- Borst J, Busselaar J, Bosma DMT, Ossendorp F. Mechanism of action of PD-1 receptor/ligand targeted cancer immunotherapy. Eur J Immunol. 2021;51(8):1911–1920. doi: 10.1002/eji.202048994 EDN: JUTYRG
- Shubnikova EV, Bukatina TM, Velts NYu, et al. Immune Response Checkpoint Inhibitors: New Risks of a New Class of Antitumor Agents. Safety and Risk of Pharmacotherapy. 2020;8(1):9–22. doi: 10.30895/2312-7821-2020-8-1-9-22 EDN: EEVXRX
- Chen DS, Mellman I. Elements of cancer immunity and the cancer-immune set point. Nature. 2017;541(7637):321–330. doi: 10.1038/nature21349
- Raedler LA. Opdivo (Nivolumab): Second PD-1 Inhibitor Receives FDA Approval for Unresectable or Metastatic Melanoma. Am Health Drug Benefits. 2015;8(Spec Feature):180–183.
- Bolotina LV, Kaprin AD. Immuno-oncology: new possibilities of drug therapy for solid tumors. P.A. Herzen Journal of Oncology. 2017;6(5):74–80. doi: 10.17116/onkolog20176574-80 EDN: ZNGWVH
- Lyadova MA, Lyadov VK. Immune-mediated adverse events in immune checkpoint inhibitors therapy: literature review. Journal of Modern Oncology. 2021;23(2):319–326. doi: 10.26442/18151434.2021.2.200502 EDN: BKMZKU
- Paul S, Lal G. The Molecular Mechanism of Natural Killer Cells Function and Its Importance in Cancer Immunotherapy. Front Immunol. 2017;8:1124. doi: 10.3389/fimmu.2017.01124 EDN: YIAEBD
- Arai S, Meagher R, Swearingen M, et al. Infusion of the allogeneic cell line NK-92 in patients with advanced renal cell cancer or melanoma: a phase I trial. Cytotherapy. 2008;10(6):625–632. doi: 10.1080/14653240802301872
- Hallett WHD, Ames E, Motarjemi M, et al. Sensitization of tumor cells to NK cell-mediated killing by proteasome inhibition. J Immunol. 2008;180(1):163–170. doi: 10.4049/jimmunol.180.1.163
- Gorodilova AV, Kitaeva KV, Filin IY, et al. The Potential of Dendritic Cell Subsets in the Development of Personalized Immunotherapy for Cancer Treatment. Curr Issues Mol Biol. 2023;45(10):8053–8070. doi: 10.3390/cimb45100509 EDN: BJXFOX
- Filin IY, Mayasin YP, Kharisova CB, et al. T-Lymphocytes Activated by Dendritic Cells Loaded by Tumor-Derived Vesicles Decrease Viability of Melanoma Cells In Vitro. Current Issues in Molecular Biology. 2023;45(10):7827–7841. doi: 10.3390/cimb45100493 EDN: WVCNWB
- Nekhaeva TL, Novik AV, Efremova NA, et al. The Autologous CaTeVac Dendritic Cell Vaccine in Patients with Melanoma: Final Results of the DENDRON-01 Study. Voprosy Onkologii. 2025;71(4):OF–2437. doi: 10.37469/0507-3758-2025-71-4-OF-2437
- Sarbaeva NN, Ponomareva JV, Milyakova MN. Macrophages: diversity of phenotypes and functions, interaction with foreign materials. Genes & cells. 2016;11(1):9–17. EDN: WCLIZL
- Chatziioannou E, Aydin SA, Forchhammer S, et al. Melanoma-associated macrophages-from molecular signals to therapeutic application. Dermatologie (Heidelb). 2022;73(12):915–928. (In German) doi: 10.1007/s00105-022-05077-3 EDN: HBNHVC
- Su S, Lei A, Wang X, et al. Induced CAR-Macrophages as a Novel Therapeutic Cell Type for Cancer Immune Cell Therapies. Cells. 2022;11(10):1652. doi: 10.3390/cells11101652 EDN: TUQRVO
- Sloas C, Gill S, Klichinsky M. Engineered CAR-Macrophages as Adoptive Immunotherapies for Solid Tumors. Front Immunol. 2021;12:783305. doi: 10.3389/fimmu.2021.783305 EDN: CUDGKL
Supplementary files




