ОПРЕДЕЛЕНИЕ СТИМУЛИРУЮЩЕГО И ТОКСИЧЕСКОГО ВОЗДЕЙСТВИЯ НАНОПОРОШКОВ МЕДИ И КОБАЛЬТА НА ПРОРОСТКИ РИСА
- Авторы: Обидина И.В1, Чурилов Г.И1, Полищук С.Д2, Тарара А.Ю1, Гомозова С.С1, Рыбин Н.Б3, Амплеева Л.Е2
-
Учреждения:
- Рязанский государственный медицинский университет им. академика И.П. Павлова
- Рязанский государственный агротехнологический университет им. П.А. Костычева
- Региональный центр зондовой микроскопии коллективного пользования Рязанского государственного радиотехнического университета им. В.Ф. Уткина
- Выпуск: № 2 (2020)
- Страницы: 42-52
- Раздел: Статьи
- URL: https://vestnik.nvsu.ru/2311-1402/article/view/49713
- DOI: https://doi.org/10.36906/2311-4444/20-2/06
- ID: 49713
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Ключевые слова
Полный текст
Введение Нанотехнологии получают бурное развитие, и их влияние на развитие экономики, повышение качества жизни - несомненно. Помимо использования ультрадисперсных порошков (УДП) металлов в качестве новых конструкционных материалов и катализаторов, возрос интерес к применению их в сельском хозяйстве, животноводстве, медицине. По утверждению экспертов, основанному на проведенных за несколько лет исследованиях, нанотехнологии обладают огромным потенциалом. Они меняют взгляд на использование стимуляторов роста растений, подавление патогенной микрофлоры растений и животных, процессы заживления и восстановления [1; 8; 9; 12]. Определены основные направления применения нанопорошков в растениеводстве. Предпосевная обработка семян рапса, вики, свеклы, пшеницы, огурцов, кукурузы, хлопчатника, картофеля, диспергированной суспензией УДП железа повышает урожайность этих культур по сравнению с контрольными образцами. Определение состава питательных веществ в растениях, выращенных из обработанных семян, показывает качественные изменения, в частности, улучшение аминокислотного состава [10]. Многолетние исследования подтверждают высокую биологическую и физиологическую активность нанопорошков [6]. Частицы металлов в ультрадисперсном состоянии способны проникать через клеточные мембраны, принимать участие в окислительно-восстановительных реакциях, изменять содержание микроэлементов [5]. Металлы в ультрадисперсном состоянии пролонгированно воздействуют на минеральное питание, углеводный и азотный обмен, синтез аминокислот, реакции фотосинтеза и дыхания [4]. До недавнего времени интенсивная агрономия предполагала внесение в почву минеральных солей в качестве удобрений. Образующиеся в результате этого в почве анионы солей оказывают негативное воздействие на почвенный состав вследствие их увеличения в составе растений, что в конечном итоге неблагоприятно для потребителей. В этом случае использование УДП для микроэлементного воздействия на растения исключает отрицательное влияние различных анионов. Кроме того, токсичность солей оказалась в 4-10 раз выше токсичности чистых металлов [8]. Научные достижения позволяют детально изучить воздействие наночастиц на качество сельхозпродукции, воды и в целом на среду обитания и здоровье человека. Это связано с малой величиной частиц ультрадисперсных металлов, их способностью проникать в ткани и клетки и вступать в химические взаимодействия. В связи с увеличением коммерческих продуктов при производстве которых используются наноструктурные материалы, оценка токсичности наноматериалов должна получать больше внимания, чем когда-либо прежде, встает вопрос поиска способа обнаружения наноразмерных систем, особенно широко используемых в промышленности. Целью наших исследований является изучение влияния нанокристаллических порошков меди и кобальта на морфофизиологические и биометрические показатели проростков риса, а также изучение их токсического воздействия на исследуемое растение. Материалы и методы исследования Биологическая активность нанопорошков металлов зависит от различных факторов: способа их получения, размера частиц, концентрации раствора. Используемые в нашей работе нанопорошки кобальта и меди получены методом химического осаждения гидроксидов металлов с последующим низкотемпературным восстановлением их в токе водорода. Средний размер частиц составил 30-50 нм. Катионы, образуемые железом, кобальтом, медью, входят в состав карбоксилазы, полипептидазы, аминопептидазы и других биологически активных веществ, необходимых для дыхания клетки, синтеза белков и обмена веществ в целом [11]. Кобальт. Содержание кобальта в земной коре невысокое, около 18 мг/кг. В природных средах он находится в виде растворимых солей, содержащих Со2+ и Со3+, может также образовывать комплексный анион Со(ОН)3-. С увеличением значения рН среды взаимодействие кобальта с минеральными и органическими компонентами почвы усиливается, а доступность микроэлемента для растений снижается. В тканях растений находится в ионной и комплексной форме. Основная функция кобальта связана с его участием в фиксации атмосферного азота. Входит в состав коэнзима кобаламина (витамин В12), метионинсинтетазы (синтез метионина, синтез белка), рибонуклеотидредуктазы (катализатор восстановления рибонуклеотидов до дезоксирибонуклеотидов, синтез ДНК и деление клеток), метил-коэнзим А-мутазы (синтез гема), которые необходимы для симбиотических микроорганизмов, усваивающих азот. Кобальт способствует репродукции листьев растений, влияет на увеличение мезофилла, столбчатой и губчатой ткани. Благодаря переменной валентности кобальт участвует в окислительно-восстановительных реакциях, регулирует цикл Кребса, дыхание, энергетический обмен, биосинтез белка и полинуклеотидов. Стимуляция роста растений объясняется участием кобальта в регуляции баланса фитогормонов: ауксина и этилена. Отмечено влияние кобальта на интенсивность фотосинтеза, а также увеличение содержания аскорбиновой кислоты в растениях. Недостаток кобальта может вызвать нарушения азотистого обмена, уменьшение в листьях количества хлорофилла, каротиноидов, витамина Е. Для риса кобальт наиболее важен на стадии кущения и выметывания метелок. Медь. Медь выполняет роль катализатора в ферментативных процессах или входит в состав медьсодержащих ферментов: регулирует углеводный белковый обмен, катализирует окисление аскорбиновой кислоты, увеличивает процесс фотосинтеза, дыхания, препятствует разрушению хлорофилла в клетках. Медь участвует в регуляции гормонального баланса, входит в состав множества оксидаз, пластоцианинов, церулоплазмина и регулирует большинство окислительно-восстановительных процессов. Она повышает устойчивость растений к полеганию, засухо-, морозо- и жаростойкость [7]. Недостаток меди при выращивании риса вызывает бледность листьев, неполноценный выход метелки из влагалища, что резко снижает урожайность. В качестве объекта исследований был выбран представитель злаковых - рис. Эта культура занимает одно из первых мест по потреблению населением, выращивается в южных областях и играет ведущую экономическую роль. Заинтересованность в изучении влияния нанопорошков на выращивание данной культуры выражают и наши вьетнамские партнеры. Рис имеет большую потребность во влаге, особенно на стадии прорастания. Эта культура широко распространена, ее возделывают и используют с древних времен. Семена риса сбалансированы по аминокислотному составу, отличаются прекрасными вкусовыми качествами и имеют высокую усвояемость. Крахмал, полученный из рисового зерна, является сырьем в текстильной, медицинской и парфюмерной индустрии. В сельском хозяйстве на корм животным используют рисовую солому. Не менее ценно использование ее для изготовления бумаги, картона, веревок, мешков, корзин и других подобных изделий. Урожайность риса, в зависимости от сорта и области выращивания, составляет 69-80 ц/га. Рис. 1. Проростки риса Результаты и их обсуждение Для определения влияния нанопорошков меди и кобальта на всхожесть, прорастание и развитие проростков риса использовали водные суспензии кобальта и меди. Суспензии объемом по 500 мл готовили из расчета каждого УДП на га посевной площади: 1 г/га, 0,1 г/га, 0,01 г/га. Диспергирование нанопорошков металлов готовили в ультразвуковой ванне (Град 13-35). Растворы УДП обрабатывали ультразвуком при максимальной мощности в течение 15 мин. При проведении эксперимента брали партии по 1000 семян риса сорта Длиннозерный. Каждая партия семян выдержана в растворе соответствующей концентрации в течение 15 мин и помещена в грунт, состоящий из смеси почвы и глины в пропорции 1:3. В лотки с грунтом равномерно на расстоянии 1 см распределили обработанные семена, слегка заглубляя. Затем в лотки добавили отстоянной воды до уровня 1-3 мм над грунтом. Лотки с обработанными и контрольными семенами поместили в термостат с температурой 300С. Через 3 дня в каждой партии было подсчитано количество проростков и определена всхожесть и энергия прорастания. С 4-го дня лотки находились в лабораторных условиях на открытой поверхности при температуре 250С и естественном освящении. Через 10 дней проростки были извлечены из почвы, промыты водой, просушены и взвешены. В каждой исследуемой партии определено количество растений с наибольшими и наименьшими показателями, измерены массы надземной и подземной частей, длины зеленой и корневой части проростков (табл. 1, 2). Из приведенных данных следует, что воздействие нанокристаллического кобальта наиболее благоприятно при минимальной концентрации. Под действием УДП меди лучшая всхожесть и энергия прорастания выявлена при максимальной концентрации, а наибольшая длина наземной и подземной частей проростков - при минимальной. Таблица 1 Зависимость биометрических и морфофизиологических показателей ростков риса от воздействия наночастиц Варианты Энергия прорастания, % Всхожесть, % 10-дневные проростки Длина проростка, мм Длина корней, мм Масса надземного ростка, г Масса подземного ростка, г контроль 72,0±0,1 76,1±0,2 86±0,4 100±0,3 0,22±0,004 0,04±0,0041 Cu 1 г/га 83,8±0,2 85,2±0,1 158±0,6 101±0,4 0,29±0,004 0,09±0,004 Cu 0,1 г/га 73,5±0,3 74,0±0,4 100±0,7 80±0,7 0,19±0,009 0,06±0,005 Cu 0,01 г/га 76,5±0,3 75,5±0,1 154±0,4 133±0,6 0,28±0,007 0,09±0,006 Co 1 г/га 63,1±0,2 70,5±0,2 101±0,8 95±0,2 0,25±0,009 0,08±0,007 Co 0,1 г/га 76,1±0,1 76,5±0,3 160±0,3 123±0,3 0,29±0,009 0,08±0,009 Co 0,01 г/га 97,5±0,3 98,5±0,2 120±0,6 127±0,5 0,27±0,002 0,09±0,002 Таблица 2 Соотношение минимальных и максимальных показателей ростков риса при взаимодействии с НП металлов Варианты Процент растений с длиной ниже средней Мин. длина проростка, мм Мин. длина корня, мм Процент растений с длиной выше средней Макс. длина проростка, мм Макс. длина корня, см контроль 20 65±0,72 100±0,74 30 100±0,46 100±0,44 Cu 1 г/га 10 65±0,21 95±0,60 15 220±0,50 100±0,31 Cu 0,1 г/га 15 40±0,52 60±0,37 15 160±0,56 100±0,56 Cu 0,01 г/га 10 51±0,65 32±0,25 25 200±0,69 170±0,39 Co 1 г/га 15 55±0,48 90±0,85 25 130±0,48 150±0,28 Co 0,1 г/га 5 40±0,31 50±0,33 15 200±0,73 110±0,19 Co 0,01г/га 10 40±0,09 30±0,20 20 160±0,19 170±0,22 Наибольший процент растений с максимальными длинами ростка и корня, а также фактическая длина наземной и подземной частей зафиксированы при минимальных концентрациях порошков меди и кобальта. Очевидно, что металлы в наноразмерном состоянии, благодаря малому размеру частиц и способности к диффузии, способны на стадии прорастания семян проникать во внутриклеточные структуры корней и ростков. Увеличение энергии прорастания, всхожести, силы роста и других показателей отражает уровень обменных процессов, протекающих в семенах и проростках. Эффективность предпосевной обработки семян ультрадисперсными порошками металлов определяется на основании регистрируемых закономерностей в ответных реакциях при прорастании и развитии проростков. Металлы в ультрадисперсном состоянии обладают принципиально иными свойствами в сравнении с металлами в их обычном виде. Помимо изменения оптических, электрических, магнитных свойств, параметров решетки наночастицы обладают развитой удельной поверхностью. Они активно вступают в химические взаимодействия с белковыми молекулами, образуют комплексы с органическими соединениями, требующими изучения их свойств и прогнозирования возможного токсического эффекта [2]. Механизм токсического действия наночастиц заключается в развитии комплекса реакций оксидативного стресса, вызванного их проникновением внутрь клетки [5]. Следствием является некроз и апоптоз отдельных клеток, угнетение физиологического статуса в целом. Экспресс-диагностика фитотоксичности наноматериалов основана на доступных методиках оценки биохимических и морфофизиологических показателей и не требует дорогостоящего молекулярно-клеточного анализа [14]. Именно биохимический статус растения является критерием его адаптивной устойчивости. Многокомпонентная антиоксидантная защита, существующая в клетках растений, поддерживает динамическое равновесие между образованием активных форм кислорода (АФК) и их ликвидацией. Наиболее важными высокомолекулярными компонентами клеток растений, непосредственно обезвреживающими АФК, являются ферменты [13]. Оксидоредуктазы, в частности пероксидаза, играют ключевую роль в поддержании молекул в восстановленном состоянии, что является одним из основных условий для нормального существования живых организмов. В связи с этим современные авторы предлагают использовать измерение активности ферментов, как диагностический признак оценки устойчивости растений к действию стрессовых факторов. Для определения активности ферментов проростки каждой партии разделены на три части для получения экстрактов. Навеску растительных образцов массой 800 мг охлаждают и растирают фарфоровым пестиком в ступке с добавлением в 0,5 мл охлажденного экстракционного буфера. Гомогенат помещают в центрифужную коническую пробирку и центрифугируют в течение 30 мин при 15000 g. Пробы помещают в холодильник. Материалом для исследования является супернатант (надосадочная жидкость) полученная из гомогената растительной ткани. Супернатант каждой партии делится на четыре части для проведения измерений по каждому ферменту, каждой концентрации с целью получения статистически достоверных данных. Определение активности супероксиддисмутазы в растительных тканях. Принцип метода: в результате аутоокисления кверцетина в присутствии ТЕМЕД (тетраметилендиамин) в аэробных условиях происходит гиперация супероксидного анион-радикала, который в присутствии СОД подвергается дисмутации. Это проявляется в торможении реакции окисления кверцетина. Реактивы: ЭДТА 0,5 мм раствор, ТЕМЕД 07,05М раствор, бикарбонатный буфер рН 10, крерцетин (97%) 0,5М раствор. холостая проба контроль опыт раствор №1 0,5 мл 0,5 мл 0,5 мл Буфер рН 10,0 0,5 мл 0,5 мл 0,5 мл Дистилированная Н2О 2,0 мл 1,9 мл 1,8 мл Биологический материал - - 0,1 мл Кверцетин 0,5 М раствор - 0,1 мл 0,1 мл Исследования проводились на фотометре при λ = 406 нм. Замеры осуществляли через 10 мин. Таблица 3 Активность супероксиддисмутазы (в усл. ед. акт./г сырой ткани) в корнях и ростках риса под воздействием нанопорошков кобальта (Со) и меди (Cu) Варианты Корни Ростки абс. знач. % к контр. абс. знач. % к контр. контроль 1,46875 - 1,925926 - Cu 1 г/га 1,633333 + 11,21 2,038462 + 5,84 Cu 0,1 г/га 1,548387 + 5,42 2,16 + 12,15 Cu 0,01 г/га 1,507937 + 2,67 1,987897 + 3,22 Co 1 г/га 1,540193 + 4,86 2,211382 + 14,82 Co 0,1 г/га 1,633333 + 11,22 2,02682 + 5,24 Co 0,01 г/га 1,548387 + 5,42 1,981132 + 2,87 Супероксиддисмутаза первой выступает в процессе защиты от окислительных повреждений, обрывая окисление клеточных макромолекул еще на стадии инициирования. Неблагоприятные факторы повышают образование активных форм кислорода, в том числе и радикалов супероксида. Наименьшее приращение СОД к контролю наблюдается при минимальной концентрации наночастиц меди и крайних (наибольшей и наименьшей) концентрациях кобальта (табл. 3). Активность супероксиддисмутазы зависит от стадии развития и физиологического статуса растения, напряженности стрессового фактора. Действие суперокиддисмутазы вызывает образование в клетке пероксида водорода, который в свою очередь угнетает работу фермента и, как следствие, ее эффективность зависит от деятельности других компонентов системы защиты, способных удалять пероксид водорода. Определение активности пероксидазы в растительных тканях. Принцип метода основан на измерении оптической плотности продуктов реакции, образовавшихся при окислении гваякола за определенный промежуток времени (продукт окисления тетрагваякол). Реактивы: 0,15М ортофосфатный буфер рН 5,4, 0,15% раствор перекиси водорода, раствор гваякола (0,05% гваякол в 700С этаноле 12,5 мг в 25 мл). контроль исследуемая проба Буфер рН 6,7 1,5 мл 1,5 мл Биологический материал 0,5 мл 0,5 мл Дистилированная Н2О 0,5 мл - 0,05% спиртовой раствор гваякола 0,5 мл 0,5 мл Исследования проводились на фотометре при λ = 470 нм. Перед началом измерений в каждую пробирку добавляли 0,5 мл перекиси водорода. Замеры осуществляли через 5 минут. Активность каталазы (табл. 5) под действием нанопорошков кобальта и меди уменьшается в корнях и ростках проростков риса, однако характер изменений в данных частях отличается. В ростках активность каталазы, оставаясь ниже контроля, с повышением концентрации нанопорошка кобальта до 1 г/га возрастает и становится выше контроля. От общей закономерности отклоняется показатель активности пероксидазы (табл. 4). С увеличением концентрации кобальта в ростках активность уменьшается, а в корнях возрастает. Таблица 4 Активность пероксидазы (в ед. опт.пл/г сырой ткани • сек) в корнях и ростках риса под воздействием нанопорошков кобальта (Со) и меди (Cu) Варианты Корни Ростки абс. знач. % к контр. абс. знач. % к контр. контроль 0,004615 - 0,010038 - Cu 1 г/га 0,005063 + 9,70 0,011139 + 10,97 Cu 0,1 г/га 0,0048 + 4,00 0,012038 + 19,93 Cu 0,01 г/га 0,004835 + 4,75 0,010175 + 1,36 Co 1 г/га 0,0055 + 19,17 0,010884 + 24,53 Co 0,1 г/га 0,005031 + 9,01 0,011 + 9,59 Co 0,01 г/га 0,0045 - 2,50 0,0125 + 8,44 Определение активности каталазы в растительных тканях. Принцип метода основан на определении скорости разложения перекиси водорода каталазой исследуемого образца с образованием воды и кислорода. Реактивы: фосфатный буфер рН 7,8; 10 мм/л раствор перекиси водорода. контроль исследуемая проба фосфатный буфер рН, 8,7 2,5 мл 2,6 мл Биологический материал - 0,02 мл дистилированная Н2О 0,1мл - Перекись водорода 0,4 мл 0,4 мл Исследования проводились на спектрофотометре при λ = 230 нм. Перекись водорода вносилась перед началом измерений. Замеры осуществляли через 30 сек в течение 5 мин. Таблица 5 Активность каталазы (в усл. ед. акт./г сырой ткани) в корнях и ростках риса под воздействием нанопорошков кобальта (Со) и меди (Cu) Варианты Корни Ростки абс. знач. % к контр. абс. знач. % к контр. контроль 0,004431818 - 0,048068182 - Cu 1 г/га 0,004090909 - 7,62 0,047727273 - 0,71 Cu 0,1 г/га 0,005113636 - 15,38 0,046590909 - 3,07 Cu 0,01 г/га 0,003522727 - 20,51 0,043181818 - 10,17 Co 1 г/га 0,004204545 - 5,13 0,051136364 + 6,38 Co 0,1 г/га 0,003409091 - 23,08 0,038977273 - 18,91 Co 0,01 г/га 0,00375 - 15,38 0,038409091 - 20,09 а б Рис. 2. Активность ферментов: супероксиддисмутазы, пероксидазы, каталазы (в усл. ед. акт /г сырой ткани) в ростках риса под воздействием нанопорошков кобальта (Со) и меди (Cu) а) в ростках, б) в корнях Стрессоустойчивость растительного организма может определяться по работе оксидазной системы клетки: активности пероксидазы и каталазы, которая свидетельствует о жизнеспособности растений. Данные ферменты конкурируют за субстрат - перекись водорода - и взаимозависимы. Повышение активности пероксидазы угнетает активность каталазы. Но данные ферменты имеют различное сродство к субстрату, и при низком содержании пероксида катализатором выступает пероксидаза, а при повышении концентрации катализирует процессы каталаза. На данный момент критерием токсикологической оценки фитотоксичности любых наноматериалов является отклонение показателей на 30% и более. Нанопорошки кобальта и меди, применяемые в нашей работе для обработки семян риса, повысили активность пероксидазы и снизили активность каталазы, но данные изменения не выходили за установленные показатели (рис. 2). Максимальное уменьшение активности наблюдалось у каталазы под воздействием кобальта в концентрации 0,1 г/га и составляло 23%. Микроэлементный состав растений, выращенных из семян, прошедших предпосевную обработку нанопорошками кобальта и меди, определяли с помощью рентгеновского энергодисперсионного анализатора IncaX-Max20 (OxfordInsr., USA) в составе растрового электронного микроскопа JSM6610LV (Jeol, Japan) со следующими характеристиками: ускоряющее напряжение - 15 кВ, низковакуумный режим, давление в рабочей камере - 30 Па, исследуемый сигнал - характеристическое рентгеновское излучение, рабочее (фокусное) расстояние - 10 мм, размер пятна - 60 отн. ед. (рис. 3). Измерения выполнены в лаборатории аналитических исследований Регионального Центра Зондовой Микроскопии коллективного пользования при Рязанском государственном радиотехническом университете. Данное исследование показало изменение концентраций важных макро- и микроэлементов в исследуемых образцах (табл. 6, рис. 4, 5), которое непосредственно повлияло на увеличение биометрических показателей растений, обработанных УДП металлов. Рис. 3. Растровый электронный микроскоп (РЭМ) с энергодисперсионным анализатором и атомно-силовым микроскопом (АСМ) Таблица 6 Элементный состав ростков риса, выращенных в условиях эксперимента элемент % содержания элемента в различных частях проростков риса корень, контроль стебель, контроль корень, обработан 0,1 г УДП кобальта стебель, обработан 0,1 г УДП кобальта корень, обработан 0,1 г УДП меди стебель, обработан 0,1 г УДП меди Si 2,4 6,9 1,5 8,9 1,7 4,5 K 0,8 3,3 1,2 2,6 4,5 4,0 P 0,1 0,5 0,1 0,7 0,1 0,4 Fe 0,7 0,1 0,5 0,3 0,5 0,3 Mg 0,4 0,1 0,9 0,3 0,6 0,2 Na 0,3 0,1 0,6 0,5 0,6 0,2 Рис. 4. Корень риса Рис. 5. Стебель риса Нанопорошки кобальта и меди способствовали увеличению в корнях проростков магния и натрия, тем самым активизируя процессы фотосинтеза и увеличения синтеза углеводов. Превышение над контролем содержания калия и фосфора улучшает транспортную функцию, дыхание и создание энергетического резерва клетки. Выводы Минимальные концентрации, 0,1-0,01 г/га, ультрадисперсных меди и кобальта привели к увеличению всех морфометрических показателей, положительно влияли как на всхожесть, так и на развитие проростков. С повышением активности пероксидазы - активность каталазы снижалась. Совокупность этих изменений определяет стрессоустойчивость и жизнеспособность растений. В целом, изменение активности СОД, пероксидазы и каталазы в ростках и корнях проростков риса под действием нанопророшков исследуемых металлов в концентрациях 0,1 г/га и 0,01 г/га не вызывает стресса и не является токсичным. Синергизм кобальта и меди проявляется в увеличении в корнях и ростках исследуемых растений жизненно важных микро- и макроэлементов. Элементный анализ образца гомогената проростков растений группы, экспонированной наночастицами Cо и Cu размерами 30-50 нм практически не определяет в тканях накопление данных элементов (рис. 4, 5). Биотестирование наночастиц на растительных объектах позволяет, используя экономичные методы исследований, за короткие сроки получить результаты «положительного» воздействия ультрадисперсных суспензий металлов. Чувствительность растений к внешним воздействиям превышает таковую у животных объектов, поэтому на растительных объектах с высокой степенью достоверности можно изучать специфичность воздействия УДП, дозозависимость и экотоксичность.Об авторах
И. В Обидина
Рязанский государственный медицинский университет им. академика И.П. Павлова
Г. И Чурилов
Рязанский государственный медицинский университет им. академика И.П. Павловад-р биол. наук
С. Д Полищук
Рязанский государственный агротехнологический университет им. П.А. Костычевад-р техн. наук
А. Ю Тарара
Рязанский государственный медицинский университет им. академика И.П. Павлова
С. С Гомозова
Рязанский государственный медицинский университет им. академика И.П. Павлова
Н. Б Рыбин
Региональный центр зондовой микроскопии коллективного пользования Рязанского государственного радиотехнического университета им. В.Ф. Уткинаканд. ф.-м. наук
Л. Е Амплеева
Рязанский государственный агротехнологический университет им. П.А. Костычеваканд. биол. наук
Список литературы
- Богословская О. А., Сизова Е. А., Полякова В. С., Мирошников С. А., Лейпунский И. О., Ольховская И. П., Глущенко Н. Н. Изучение безопасности введения наночастиц меди с различными физико-химическими характеристиками в организм животных // Вестник Оренбургского государственного университета. 2009. № 2. С. 124-127.
- Гусев А. А., Акимова А. О. Влияние высокодисперсных частиц различной природы на ранние стадии онтогенеза растений рапса (Brassica napus) // Интернет-журнал Науковедение. 2013. № 5. С. 11.
- Давронов К. С., Усмонов P. M., Кучкаров К. К. Рост и развитие растений хлопчатника под влиянием ультрадисперсных порошков железа и меди // Сельскохозяйственная биология. 2006. Т. 41. № 3. С. 58-61.
- Зотова Е.С. Исследование строения и свойств ультрадисперсных (нано-) порошков на основе меди, магния и железа, обладающих биологической активностью: автореф. дис.. канд. техн. наук. М., 2008. 23 с.
- Короткова А. М., Лебедев С. В., Каюмов Ф. Г., Сизова Е. А. Морфофизиологические изменения у пшеницы (Triticum vulgare L.) под влиянием наночастиц металлов (Fe, Cu, Ni) и их оксидов (Fe3O4, CuO, NiO) // Сельскохозяйственная биология. 2017. Т. 52. № 1. С. 172-182.
- Куцкир М. В. Определение экологической безопасности наноматериалов на основе морфофизиологических и биохимических показателей сельскохозяйственных культур: автореф. дис.. канд. биол. наук. Рязань, 2014. 23 с.
- Максименко Е. П., Шеуджен А. Х. Научные основы применения комплексных микроудобрений в рисоводстве // Политематический сетевой электронный научный журнал Кубанского государственного аграрного университета. 2015. № 107. С. 1102-1125.
- Маслоброд С. Н., Миргород Ю. А., Бородина В. Г., Борщ Н. А. Влияние водных дисперсных систем с наночастицами серебра и меди на прорастание семян // Электронная обработка материалов. 2014. № 4. С. 103-112.
- Паничкин Л. А., Райкова А. П. Использование нанопорошков металлов для предпосевной обработки семян с.-х. культур // Известия Тимирязевской сельскохозяйственной академии. 2009. № 1. С. 59-65.
- Чурилов Г.И., Амплеева Л.Е. Биологическое действие наноразмерных металлов на различные группы растений. Рязань: РГАТУ. 2010.
- Чурилов Г. И., Амплеева Л. Е., Назарова А. А., Полищук С. Д. Влияние кобальта на физиологическое состояние и морфобиохимические показатели крови животных // Российский медико-биологический вестник им. академика ИП Павлова. 2007. Т. 15. № 4. С. 34-42.
- Bellantone M., Williams H. D., Hench L. L. Broad-spectrum bactericidal activity of Ag2O-doped bioactive glass // Antimicrobial agents and chemotherapy. 2002. V. 46. № 6. P. 1940-1945. https://doi.org/10.1128/AAC.46.6.1940-1945.2002
- Kuk Y. I. et al. Antioxidative enzymes offer protection from chilling damage in rice plants // Crop Science. 2003. V. 43. № 6. P. 2109-2117. https://doi.org/10.2135/cropsci2003.2109
- Song H. M., Ye P. D., Ivanisevic A. Elastomeric nanoparticle composites covalently bound to Al2O3/GaAs surfaces // Langmuir. 2007. V. 23. № 18. P. 9472-9480. https://doi.org/10.1021/la700979r